Bioch : ACIDES NUCLEIQUES (3) Flashcards

14/10/24 => AUGAGNEUR

1
Q

Que doivent respecter les oligonucléotides antisens pour être utiles en thérapie ?

A

● Être en mesure d’entrer dans les cellules et d’aller dans le noyau éventuellement
○ on l’associe à un dispositif de ciblage :
■ Empaqueter dans des vésicules (=nanoparticules) : ex : vaccins ARN
■ Un ligand pour le type de rc présents sur les cellules cibles désirées
■ Des Ac dirigés contre les molécules de surface des cellules cibles souhaité
● Éviter la digestion par les nucléases plasmatiques (différents moyens)
■ en culture in vitro
■ Intégration dans les génomes : mauvais substrats pour les ADN
polymérases : compliqué
d’intégrer dans le génome
■ Dégradation en molécules toxiques / cancérigènes ( =risque)

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2
Q

Actions possibles des ASO dans le noyau ?

A
  • Se lier à l’ADN
  • Recruter, au niveau de l’ADN, la RNase H
  • Inhiber la formation de la coiffe en région 5 ’=> le ribozyme ne reconnait pas l’ARN
  • Jouer sur épissage : région splicing
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3
Q

Action possible des ASO dans le cytoplasme ?

A
  • Système blocker
  • Système cliver
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4
Q

Intérêt du saut d’exon ?

A

Utile pour pouvoir jouer sur l’épissage d’un ARN messagers

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5
Q

Quelles peuvent être les causes de situations pathologiques causées par un problème au niveau de l’exon ?

A
  • Mutation :
    • Si sur la 3e base du codon : aucun impact en général => Modification de la séquence génétique sans impact sur la séquence protéique
    • Modification de la séquence protéique => Modification d’un AA
    • Modification du cadre de lecture : Génération d’un codon stop plus ou moins tôt en aval par modification de la séquence type => Délétion, Insertion de séquence
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6
Q

Principe du saut d’exon ?

A

on va faire en sorte que l’exon soit considéré comme intron => que s’il y a décalage de lecture et donc
apparition d’un codon stop

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7
Q

Application du saut d’exon en thérapeutique ?

A

Traiter la myopathie de Duchenne :
liée à une anomalie du gène dmd responsable de la production d’une protéine impliquée dans le soutien de la fibre musculaire, la distrophine

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8
Q

A quoi faut-il être attentif lors d’un saut d’exon ?

A

Parfois il est nécessaire d’enlever plusieurs exons pour retrouver un bon cadre de lecture :
Il vaut mieux faire un saut d’exon et perdre quelques AA, que de laisser le codon stop plus tôt, et ne pas avoir la traduction de la fin de l’ARN

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9
Q

Exemple d’ASO utilisés pour le ttt de la dystrophie de Duchen ?

A
  • drisapersen (abandon)
  • eteplirsen
  • SRP-4053
  • Viltolarsen
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10
Q

Quels sont les limites des essais cliniques pour le développement d’ASO pour le ttt de la myopathie de Duchenne ?

A

ASO peuvent être utilisés pour tous les exons, excepté le 1e et le dernier, car il n’y a rien en amont ou en aval
On peut traiter que du 2e au 78e exons

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11
Q

Comment le saut d’exon associé à la thérapie génique est mis en place ?

A

Oligonucléotides antisens, au lieu d’être injectés isolement, sont transportés par un vecteur viral => permet de faire produire par les cellules musculaires elles-mêmes les oligonucléotides antisens
thérapeutiques

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12
Q

Caractéristique du mipomersen ?

A
  • ASO de 2e génération
  • modification de sucre 2’MOE confère une meilleure stabilité au médicament et augmente également l’affinité pour l’ARN cible jusqu’à atteindre une affinité dix fois supérieure
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13
Q

Rôle du mipomersen ?

A

Chaine phosphorothiate réduit la vitesse de dégradation par les nucléases, améliore la distribution aux tissus en se liant aux protéines plasmatiques, et « prend également en charge » l’activité RNase H, du fait d’une faible modification au sein de la molécule.

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14
Q

Utilisation du mipomersen ?

A

Molécule a été développée pour le ttt des hypercholestérolémies en complément des statines. Elle a un effet inhibiteur de la synthèse d’apolipoprotéines B. L’idée est de baisser statistiquement significative des taux de LDL-C

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15
Q

Utilisation des oligonucléotides ?

A
  • Stratégies antisens et ribozymes contrôlent l’expression au niveau traduction
  • Stratégies antigène (blocage d’un gène) et sens (blocage d’un facteur de transcription) : champs
    d’application étendu au niveau transcriptionnel de l’expression génique.
  • Aptamère : oligonucléotides synthétisés aléatoirement et sélectionnés pour leur affinité à une cible
    protéique
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16
Q

Caractéristiques des ribozymes ?

A
  • Centre catalytique constitué d’ARN, ne requiert pas de protéines pour la catalyse
  • structures chimiques et réactions métaboliques associées au mécanisme de catalyse «acide-base» conservé
17
Q

Utilisation de séquences de guidages externes (EGSs) ?

A

Thérapie via le clivage d’ARN cible dérivé de la connaissance de la ribonucléase P

18
Q

Fonctionnement des EGSs ?

A

EGS forme un complexe avec l’ARN cible mimant la structure du pré-ARNt, lequel est reconnue par la RNase P. La RNase P clive l’ARN cible dans sa partie 5’ libérant l’EGS et l’ARN

19
Q

Mécanisme d’action des ECGs ?

A

⇨ Phénomène de catalyse – système de cinétique enzymatique
1) Liaison
2) Reconnaissance comme substrat
3) RNase P coupe la cible sans couper le morpholino. Ainsi le morpholino n’est pas encore dégradé, ainsi il peut se lier à nouveau sur une nouvelle molécule. C’est comme un système de cinétique enzymatique ou le mopholino ne va jamais être dégrader au cours du processus de clivage

20
Q

Quelles sont les modification chimiques réalisables pour améliorer la stabilité et l’internalisation des ECGs ?

A
  • Substitution du ribose par un noyau morpholine
  • Remplacement de la fonction phosphodiester par un phosphorodiamidate => PMO
  • Liaison covalente avec un peptide basique (CPP) => CPP-PMO
    ⇨ Favorise l’entrée dans la cellule
21
Q

Comment voir si l’ECGs fonctionne ?

A

on peut coupler la PMO à un fluorochrome
1. Parasite non traité
2. Parasite traité avec un PMO fluorescent
3. Dès 30 minutes d’incubation on a de la fluorescence dans le parasite
4. À 90 minutes la fluorescence est bien incorporée et est vraiment au niveau du parasite et pas au niveau de l’érythrocyte
- Les conjugués pénètrent rapidement le parasite
- Les conjugués inhibent la croissance de P. falciparum et réduisent l’expression de PfgyrA

22
Q

Principe de la triple hélice ?

A

Se déroule dans le noyau.
1. ADN simple brin qui lie spécifiquement le grand sillon de l’ADN double brin Dans le grand sillon c’est la ou il y a le plus d’espace,
donc c’est la ou la transcription va être lancée
2. Formation d’une triple hélice locale
3. Inhibition de la transcription par impossibilité de séparer les brins

23
Q

Problème de la technique de la triple hélice ?

A

Le problème de cette technique est que l’on est
limitée à des séquences cibles de type oligopurine oligopyrimidine

24
Q

Caractéristiques des leurres à protéines ?

A
  • Petites séquences d’ADN en double brin
  • Reconnues par une protéine tel que facteur de transcription par exemple
  • Inhibition de la transcription des gènes
  • Fonctionne avec des oligodésoxynucléotides phosphorothioates
  • Seule la connaissance de la séquence consensus reconnue est nécessaire
    o Par technique d’emprunte à l’ADNase
25
Q

Utilisation des leurres à protéines dans le VIH ?

A

Activité antivirale d’ON en épingle pour piéger l’integrase du VIH
1. L’oligonucléotides en structure tige-boucle (oligo-IN) mime les
extrémités du LTR reconnues par l’intégrase du VIH
Contrôle : oligonucléotide INC dans lequel la boucle a été placée
à l’autre extrémité de la tige et le dinucléotide CA, essentiel à
l’intégration, a été muté
2. Activité antivirale de ces oligonucléotides, métaboliquement
stables déterminée en dose-réponse sur modèle d’infection de
cellules CEM infectées par le VIH. L’activité comparée à celle d’un
oligonucléotide antisens en simple brin complémentaire du site
d’initiation de la traduction de l’ARNm de TAT (oligo-TAT) et à celle de l’AZT

26
Q

Caractéristiques des aptamères ?

A
  • Pas vraiment un ASO
    o ASO en fonction de l’interaction que l’on va
    avoir avec la cible
    o pas un ASO car interagit avec une proteine au n’importe quelles molécules
  • Séquence simple brin ADN ou ARN de 5 à 70 bases
  • Structure secondaire ou tertiaire avec haute affinité et spécificité
  • Cible variées : protéines, peptides, acides nucléiques, petites molécules organiques (inorganique), cellules intactes → peut cibler à peu près tout
    o On décide quelle est la cible
    o Puis on cherche à designer un aptamère
27
Q

Avantage des aptamères ?

A
  • Facile à synthétiser
  • Identifier dans des banques d’oligonucléotides par le processus SELEX
    o Fabrication de séquences aléatoires
    o Sélection par le processus SELEX : recherche de la séquence qui va taper sur la cible
28
Q

Principe de l’utilisation des aptamères ?

A
  1. Génération de toutes les séquences possibles => fabrication de la banque de façon très aléatoire
  2. Espoir que dans cette banche il y a au moins une molécule qui aie une affinité pour la cible
  3. Elimination par lavage des molécules les molécules les moins affine
  4. Récupération des molécules les plus affine
  5. Système d’amplification de réamplification pour faire de nouveau un cycle de sélection pour n’avoir
    plus qu’une seule molécule à la fin
  6. La séquence de l’aptamère est alors amplifiée par PCR ou RT-PCR
  7. Test pour savoir s’il y a une visée thérapeutique
    ⇨ Stratégie différente des antisens classiques
29
Q

Protéines cibles des aptamères ?

A
  • Thrombine
  • HIV tat
  • HIV rev
  • Factore IX
  • VEGF
  • PDGF
  • Ricin
  • Large glycoproteines such as CD4
  • Anthrax spores
30
Q

Propriétés des aptamères ?

A
  • Anticoagulantes
  • Anti-angiogéniques et antitumorales
  • Antivirales et anti-infectieuses
  • Antiprolifératives
  • Anti-inflammatoires et modulatrices du SI