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Cours A2020 > Hématologie - Cours 1 Prélèvements > Flashcards

Hématologie - Cours 1 Prélèvements Flashcards

1
Q

Quelle est la différence entre un patient inscrit, un patient admis et un patient enregistré?

A
  • Inscrit : N’occupe pas de lit, présence temporaire (Ex : Chirurgie d’un jour)
  • Admis : Occupe un lit (hospit)
  • Enregistré : Patient recevant un service de type externe, qui se présente au centre de prélèvement
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Q

Nommer les différentes étapes du circuit schématique des échantillons

A
  1. Question clinique
  2. Requête d’analyses
  3. Prélèvement du patient
  4. Envoi au labo
  5. Réception et identification
  6. Analyse
  7. CQ
  8. Recueil des résultats
  9. Interprétation des résultats
  10. Compte rendu (rapport d’analyse)
  11. Dx si possible
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3
Q

Quel est le temps réponse attendu pour un échantillon :

  • STAT?
  • Urgent?
  • Routine?
  • Patient?
A
  • STAT < 1h
  • Urgent < 3h
  • Routine < 8h
  • Patient < 20h
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Q

Nommer les différentes étapes du préanalytique (jusqu’à l’étape analytique)

A
  1. Demande d’analyse
  2. Préparation du patient
  3. Prélèvement
  4. Acheminer échantillon au labo
  5. Gestion de l’échantillon jusqu’à l’analyse
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5
Q

Nommer les 5 erreurs pré-analytiques les plus fréquentes

A
  • Volume insuffisant dans le tube
  • Erreur d’idenfitication du patient
  • Mauvais tube/contenant utilisé
  • Erreur de test prescrit sur les requêtes
  • Tube vide ou manquant
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6
Q

Nommer des considérations à prendre en compte lors du pré-analytique

A
  • Vérification de l’identité du patient (double ID)
  • État du patient (+/- jeûne)
  • Prélèvement (type de contenant à utiliser)
  • Intégrité du spécimen (centri lumiète, T°)
  • Étiquettage des échantillons prélevés
  • Vérification des recommandations pré-prélèvement (arrêt de Rx, consommation d’aliments, …)
  • Distribution et enregistrement des demandes (envoi au labo)
  • Au labo : centri, aliquot, pré-Tx
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7
Q

Vrai ou faux : Lorsque les analytes ont une variation cyclique prévisible aux >3 jours ont parle d’une variation dite ultradienne

A

FAUX

  • Variation > 3 jours = infradienne
  • Variation ultradienne = sécrétion épisodique (< 20h)
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8
Q

Que veut-on dire par une variation circanuelle?

A

Un analyte qui a une variation cyclique et prévisible d’environ 1 an (+/- 2 mois). Ex : Vit D

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9
Q

Donner un exemple de cycle circadien, circanuel, infradien et ultradien

A
  • Circadien : Cortisol
  • Circanuel : Vitamine D
  • Infradien : Cycle menstruel
  • Ultradien : Hormone de croissance
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10
Q

Vrai ou faux : La position du corps a un effet sur le dosage de certains analytes étant donné que la pression oncotique est plus élevée en position debout qu’en position couché

A

VRAI

Les protéines et l’hématocrite est significativement plus élevé (plus concentré) lorsque le prélèvement est pris en position debout qu’en position couché.

Ceci est dû à la redistribution du sang de la partie suppérieure du corps vers les membres inférieurs (0,5-1L)

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11
Q

Nommer des variables reliées au patient qui sont contrôlables avant le prélèvement

A
  • Stress
  • Position/posture
  • Alimentation
  • Tabagisme
  • Alcool
  • Rx
  • Herbes naturelles
  • Exercice
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12
Q

Nommer quelques analyses qui sont affectées par la prise d’un repas (diminution de leur concentration)

A
  • Phosphore/phosphate
  • Potassium
  • Chlorures
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13
Q

Nommer quelques analyses qui sont affectées par la prise d’un repas (augmentation de leur concentration)

A
  • CHOL
  • TRIG
  • pH
  • gastrine
  • glucose
  • GH
  • Insuline
  • Ca ionisé
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14
Q

Nommer quelques analyses qui sont affectées par le jeûne (augmentation de leur concentration)

A
  • Corps cétoniques
  • Acides gras libres
  • glycérol
  • TRIG
  • Cholestérol
  • Lipolyse, cétogenèse
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15
Q

Nommer quelques analyses qui sont affectées par le jeûne (diminution de leur concentration)

A
  • Glucose
  • Insuline
  • pH
  • HCO3
  • urée
  • GFR
  • Cortisol urinaire
  • pCO2
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16
Q

Nommer des variables non-contrôlables reliées au patient

A
  • Âge, sexe, ethnie, obésité
  • Stress, fièvre, cycle menstruel
  • Grossesse, cécité
  • Transfusion ou infusion de liquide (soluté)
  • Facteurs environnementaux (soleil, altitude, T° ambiante)
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17
Q

Qu’elle est la définition d’un additif? Nommer un exemple

A

Ingrédient ajouté dans le tube de prélèvement pour faciliter la fonction prévue

Ex : anticoagulant, inhibiteur de la glycolyse

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18
Q

Vrai ou Faux : Un activateur de caillot est un matériau utilisé pour inhiber le mécanisme de coagulation

A

FAUX.

Matériau utilisé pour initier la coagulation

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19
Q

Quelles conditions atomosphériques assume-t-on lors des tests?

A
  • Température ambiante (20°C)
  • 101 kPa (760 mmHg)
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20
Q

Vrai ou Faux : La date d’expiration correspond à la date après laquelle le produit ne devrait plus être utilisé, peu importe les conditions de stockage.

A

FAUX

Date valide seulement si les conditions de stockage recommandées ont été respectées

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21
Q

Vrai ou Faux : La taille de tube correspond à la description du diamètre extérieur approximatif et de la longueur du tube en millimètres

A

FAUX

Diamètre INTÉRIEUR et longueur en millimètre

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22
Q

Comment appelle-t-on le matérieu inerte qui subit un changement temporaire de viscosité pendant la centrifugation? Quel est le principe de fonctionnement ?

A

Gel séparateur thixotrope.

Les propriétés physiques du gel changent selon si le tube est au repos ou s’il est centrifugé

  • Repos : gel solide
  • Centri : gel liquide

Densité du gel thixotrope intermédiaire aux cellules/caillots et au plasma/sérum

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23
Q

Vrai ou faux : L’intérieur du tube correspond aux surfaces intérieures du tube qui entrent en contact avec l’échantillon de sang (incluant la fermeture/bouchon).

A

VRAI

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24
Q

Nommer différents types d’échantillons sanguins

A
  • Capillaire
  • Artériel
  • Veineux
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25
Q

Nommer différents types d’échantillons urinaires

A
  • Aléatoire
  • Collecte (8, 12, 24h)
  • Première urine du matin
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26
Q

Nommer différents types de liquides pouvant être prélevés (5)

A
  • LCR
  • Liquide synovial
  • Salive
  • Sperme
  • Sueur
  • Lait maternel
  • Amniotique
  • Sucs gastriques
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27
Q

Nommer d’autres matrices pouvant être prélevées et analysées

A
  • Cheveux
  • Ongles
  • Moelle osseuse
  • Biopsie
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28
Q

Décrire la technique de prélèvement chez l’enfant/l’adulte

A
  1. ID patient
  2. Gants
  3. Choisir veine
  4. Appliquer le garrot
  5. Désinfecter le site de ponction, laisser sécher
  6. Aiguille à un angle de 30°, piquer 1 cm en dessous de la saillie veineuse
  7. Déserrer le garrot (évite hémolyse)
  8. Remplir les tubes dans le bon ordre et adéquatement
  9. Inverser délicatement les tubes (5x)
  10. ID les tubes (idéalement au début)
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29
Q

Décrire la technique de prélèvement chez le nouveau-né (talon)

A
  1. Artérialisation (linge chaud 3 minutes)
  2. Nettoyer surface de la peau avec gaze 70% isopropanol
  3. Prélèvement à 2 personnes
    • Une qui stabilise la jambe du bébé
    • L’autre qui fait le prélèvement
  4. Profondeur < 2,5 mm sur les côtés extérieurs du talon
    • Aiguille 22-23 G
  5. Essuyer la première goutte
  6. Remplir le microtube rapidement
    • Éviter coagulation
    • Éviter bulles d’air
  7. ID tubes (idéalement au début)
30
Q

Dans quel ordre les tubes doivent-ils être prélevés?

A
  • Hémoculture
  • Bleu
  • Jaune
  • Rouge
  • Vert
  • Vert
  • Lavande
  • Gris

Hé Boy Jean-Rodrigue Viens Voir Le Garrot

31
Q

Nommer les différents anticoagulants utilisés comme additifs dans les tubes de prélèvement

A
  • EDTA (di ou tripotassiques)
  • Citrate
  • Héparine (sodium ou lithium)
32
Q

Dans quelles circonstances la collecte 24h des urines est-elle indiquée?

A
  • Lorsque la concentration sérique est trop faible
  • Lorsqu’un prélèvement ponctuel ne permet pas d’avoir un bon reflet de l’analyte
33
Q

Quelles sont les étapes à suivre avant une collecte 24h d’urine (pour le labo) ?

A
  • Donner la procédure au patient
  • Mentionner l’arrêt de certains Rx
  • Fournir une liste de produits à éviter avant et pendant la collecte
  • Si c’est pour un enfant, donner quelques sacs supplémentaires
34
Q

Quelles sont les étapes d’une collecte 24h d’urine?

A
  • Jour 1 : Éliminer la première urine du matin
  • Récolter toutes les urines suivantes dans un contenant prévu à cet effet
    • +/- agent de conservation
    • Possible d’utiliser un contenant intermédiaire pour le transfert dans le contenant original
  • Jour 2 : arrêter la collecte avec la première urine du matin
  • Le patient doit s’assurer que le contenant est bien identifié : nom, dates/heures de début et de fin
  • Le patient doit venir porter la collecte à l’endroit prévu dans la procédure
35
Q

Dans quelles conditions une urine 24h doit-elle être conservée pendant la collecte?

A

Pendant toute la durée de la collecte :

  • Maintenir le contenant fermé
  • Température : 2-8°C
  • Conservation à l’abris de la lumière (certaines collectes)
36
Q

Vrai ou faux : Il est conseillé d’uriner directement dans un contenant d’urine 24h pour éviter de perdre une partie de l’urine

A

FAUX

Certaines collectes contiennent des agents de conservations qui peuvent éclabousser le patient s’il urine directement dans le contenant. Il est conseillé d’utiliser un contenant propre et de transvider dans le contenant de collecte

37
Q

Quelles sont les indications d’un prélèvement de liquide synovial?

A
  • Thérapeutique
    • Ponction du liquide d’une articulation gonflée (douleur et instabilité de l’articulation)
  • Diagnostic
    • Arthrite inflammatoire ou non-inflammatoire
    • Arthrite infectieuse ou arthrite micro-cristalline
38
Q

Quels sont les rôles du liquide synovial?

A
  • Lubrifiant
  • Source de nutrition pour le cartillage articulaire (glucose, O2)
  • Élimination des produits métaboliques provenant du cartillage articulaire (lactate, CO2)

**Cartilage articulaire non vascularisé

39
Q

Quelle est la composition du liquide synovial?

A

Composition chimique identique à celle du plasma sanguin + mucopolysaccharides

  • Eau
  • Sels minéraux
  • Petites molécules (glucose, acide urique, bilirubine)
  • Protéines (13 g/L)
40
Q

Quel est le composé le plus important séctéré par les cellules synoviales?

A

Hyaluronate

  • Donne la texture visqueuse au liquide synovial normal
  • Utilisation de hyaluronidase pour éliminer visquosité avant de passer l’échantillon sur les multianalyseurs
41
Q

Quelle est la procédure de prélèvement du liquide synovial?

A
  1. Échographie nécessaire pour les articulations profondes
  2. Stériliser le site de ponction
  3. Ponction faite “à l’aveugle” à partir des points de repères anatomiques
    • Seringue 18, 20 à 22 G selon le site
  4. Volume d’aspiration varie en fonction du type d’articulation et de l’accumulation du liquide
  5. Après l’aspiration, identifier le volume de liquide
42
Q

Vrai ou faux : Un liquide synovial envoyé en microbiologie doit être dans un tube hépariné

A

FAUX

Hépariné ET STÉRILISÉ!!

43
Q

Vrai ou faux : Les prélèvement de liquide synovial sont envoyé habituellement au laboratoire pour le décompte de cellules, la culture bactérienne et la recherche de cristaux

A

VRAI

44
Q

Vrai ou faux : Les anticoagulants crée des artéfact en microscopie lors de la recherche de cristaux dans les liquides synoviaux

A

VRAI (anti-coagulants en poudre)

45
Q

Quel tube doit être utilisé pour prélever un liquide synovial qui sera envoyé pour un décompte cellulaire?

A

Tube hépariné ou avec EDTA

46
Q

Qu’est-ce que le LCR?

A

Le LCR est le liquide circulant dans les ventricules du SNC et dans l’espace subarachnoïdien

47
Q

Comment le LCR est-il formé à partir du plasma?

A

Le LCR est issus de la filtration du plasma au niveau des plexus choroïdes

  • Plexus formé de capillaires semi-perméables
  • Les capillaires sont entourés d’une couche de cellules épendymocytes qui agissent comme un filtre
    • Bloque le passage des protéines et du glucose
    • Contrôle la réabsorption d’ions
  • Le plasma peut fuir vers les cavités, les ventricules de l’encéphale
48
Q

Qu’est-ce que l’espace subarachnoïdien?

A

C’est l’espace entre 2 membranes méningées : pie-mère et arachnoïde

49
Q

Quelles sont les fonctions du LCR?

A
  • Fournir des nutriments au système nerveux
  • Éliminer les déchets métaboliques
  • Absorbe les chocs pour protéger le cerveau et la moelle épinière contre les traumas
50
Q

Quelle est la composition du LCR?

A

Ressemble partiellement à la composition du plasma sanguin

  • Liquide clair et incolore
  • pH 7,32
  • 99% d’eau
  • Beaucoup moins de protéines et de sucres
  • 3 à 5 lymphocytes/cm3
  • Un peu plus de Na+, Cl-, H+
  • Un peu moins de Ca2+ et K+
51
Q

Quel est le site de ponstion du LCR?

A

Dans l’espace L3-L4 ou L4-L5

Si la ponction est faite en haut de la L3, risque de lésions médullaires

52
Q

Quelle est la procédure de prélèvement du LCR?

A
  • Position assise, au bord du lit ou couché sur le côté
  • Désinfection de la peau par le MD
  • Introduction de l’aiguille jusqu’au canal rachidien et aspiration du liquide
    • Volume varie selon si enfant ou adulte
  • Prélever 3 tubes stériles
    • ID selon l’ordre de prélèvement
    • Dosage STAT si possible
53
Q

Quel est l’ordre des tubes à respecter pour le prélèvement de LCR?

A
  1. Biochimie et sérologie
    • Moins affecté par contamination bactérienne et le sang
  2. Microbiologie
  3. Décompte cellulaire
54
Q

Décrire les étapes préparatoires à une collecte de salive

A

Modifier la routine le moins possible, mais :

  • 24h avant : pas d’exercice ou de stress intenses
  • 12h avant : pas d’alcool
  • 3h avant : À jeun (eau permise en quantité modérée)
    • Pas de tabac, gomme, activité physique
  • 1h avant : ne pas se brosser les dents
  • 10 mins avant : Se rincer la bouche avec de l’eau

Ne pas stresser le patient (mesure du cortisol…)

55
Q

Décrire la procédure de collecte de salive

A
  1. Identifier la salivette (nom, DDN, #dossier)
  2. Laver les mains à l’eau savonneuse
  3. Ouvrir la salivette, retirer le tampon/cotton
  4. Mettre le tampon sous la langue
    • Ne pas toucher avec les doigts
    • Ne pas mastiquer
    • Faire rouler sous la langue 2-3 mins (jusqu’à ce qu’il soit plein de salive)
  5. Remettre le tampon dans le contenant initial
    • Touche le moins possible avec les doigts
    • Remettre le bouchon
  6. Écrire date/heure de prélèvement sur l’étiquette
    • Heure en système 24h
56
Q

Quelles sont les étapes à respecter avant la collecte de sperme?

A
  • Chaque laboratoire détermine le contenant accepté pour la collecte
    • Idéalement en polypropylène, stérile, étanche, grande ouverture
    • Attention, certains nettoyants ou matériaux entrant dans la conception des contenants en polypropylène peuvent être toxiques pour le sperme
  • Donner un récipient pré-pesé
  • L’intervalle souhaitable entre 2 analyses de sperme est de 4 à 6 semaines
  • 2 à 5 jours d’abstinance sont recommandés
57
Q

Quelle étape importante doit être suivie lorsqu’une collecte de sperme effectuée à domicile?

A

L’échantillon doit être conservé en contact avec la peau pentant le trasport. Une fois arrivé au laboratoire, l’échantillon doit être analysé immédiatment

  • Temps et température de conservation critiques
58
Q

Quelles informations devrait contenir un questionnaire pré-analytique lors d’une collecte de sperme?

A
  • Nombre de jours d’abstinance
  • Est-ce que l’échantillon a été recueilli au complet
  • Est-ce que l’échantillon a été transporté conformément aux instructions?
  • Heure de prélèvement et d’arrivée de l’échantillon
  • Nom de la conjointe
  • Interventions médicales ou chirurgies subies
59
Q

Nommer les 2 types de prélèvements de selles qui peuvent être analysés par le laboratoire

A
  • Collecte de selle
  • Évaluation ponctuelle (spot)

Le pot de collecte est différent selon le type de collecte

60
Q

Décrire la procédure à suivre avant un prélèvement de selle

A
  • Fournir la documentation au patient (procédure du prélèvement)
  • Fournir la liste des produits à éviter avant et pendant la collecte
    • Informer le patient des Rx qu’il doit arrêter, le cas échéant
  • En cas d’évaluation de la stéatorrhée, le patient doit suivre une diète recommantée
61
Q

Décrire les conditions à respecter lors d’une collecte de selles

A
  • Doit être effectuée dans un contenant fourni par le laboratoire
  • Doit être dépourvue de contaminants (urine, eau de toilette)
  • Éviter de contaminer l’extérieur du contenant
  • Conserver à la température spécifiée (2-8°C)
62
Q

Quelles sont les proportions du sang (RBC, plaquettes, WBC et plasma)?

A
  • 55% Plasma
  • 45% RBC
  • 1% Plaquettes + WBC
63
Q

Quelle est la différence entre le sérum et le plasma?

A

Le sérum contient pas de fibrinogène et de facteurs de coagulations

  • Contenu protéique plus faible que le plasma
64
Q

Quels aspects du transport des échantillons sont importants pour les prélèvements?

A
  • Délai d’acheminement au laboratoire
  • Températude de conservation pendant le transport
65
Q

Discuter des effets d’une mauvaise conservation d’un échantillon pour un test de glucose

A

DIminution du glucose de 0,6 mmol/L par heure si la concentration initiale est entre 4,1 et 5,6

66
Q

Discuter des effets d’une mauvaise conservation d’un échantillon de gaz sanguin

A
  • PCO2 augmente 1 mmHg / heure (si 7,35-7,45)
  • PO2 diminue 2 mmHg / heure (si > 80 mmHg)
  • pH diminue 0,03 / heure (si 25-45 mmHg)
67
Q

Nommer différents prétraitements que peuvent subir les échantilllons lors de leur arrivée au laboratoire

A
  • Centrifugation
  • Décantation (séparation)
  • Aliquotage
  • Extraction
  • Précipitation
  • Ajustment du pH
68
Q

Quelles sont les conditions de centrifugation pour un tube sérum avec gel?

A
  • 100-1300 RCF
  • 10 mins, 10°C
  • Avec frein
69
Q

Quelles sont les conditions de centrifugation pour une urine à faire en microscopie?

A
  • 400 RCF
  • 5 mins
  • sans frein
70
Q

Nommer différentes interférences pré-analytiques en lien avec le prélèvement par le personnel soignant

A
  • Garrot :
    • Stase prolongée augmente certains analytes (protéines, fer, lactate)
  • Soluté du patient :
    • Dilution de l’échantillon si prélevé dans la ligne de soluté (normalement flush 2 tubes avant)
    • Interférence associée à la composition du soluté
  • Hémolyse de l’échantillon
    • Mauvaise technique de prélèvement (LDH, K+ augmentés)
    • Hémolyse in vivo
  • Récipient incorrecte pour l’échantillon
    • Transfert de tube
  • Échantillon avec volume insuffisant
    • Dilué si additif dans le tube
    • Volume insuffisant pour effectuer toutes les analyses demandées

(*) aussi délai de manipulation de l’échantillon et conservation des échantillons (plus pour le labo)

Cours A2020 (27 decks)

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