Diagnóstico microbiológico Flashcards

1
Q

Medios de agar cromogénicos

A

Estos medios de cultivo contienen sustancias cromógenas que cuando son hidrolizadas por enzimas microbianas específicas producen compuestos coloreados. En la actualidad se comercializan varios medios cromogénicos que permiten la identificación presuntiva de variadas especies bacterianas y de hongos, tales como: cromoagar para vibriones, cromoagar para infecciones de orina y cromoagar para diferentes especies de Candida, entre otros

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2
Q

Batería bioquímica: identificación de bacilos Gram (-)

A

Existen un conjunto de medios de cultivo que son muy usados para la identificación de bacilos Gram (-), principalmente enterobacterias. La siembra de esta batería de pruebas bioquímicas debe realizarse a partir de colonias aisladas. Después de 18-24 horas de incubación se efectúa la lectura y mediante una tabla es posible interpretar los resultados e identificar género y especie (no siempre es posible identificar especie por este método). Las principales pruebas son: agar TSI, agar LIA, medio MIO, agar citrato y agar urea.

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3
Q

TSI (Triple-Sugar-Iron Agar)

A

• Permite estudiar la capacidad de producir ácido y gas a partir de glucosa, lactosa y sacarosa. • Si la bacteria produce H2S se evidencia por la presencia de un precipitado negro. Lo que ocurre en un medio ácido. • Si la bacteria produce gas se observa como burbujas en el fondo del tubo.

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4
Q

LIA (Lysine-iron-agar)

A

• Permite diferenciar los microorganismos que producen descarboxilación o desaminación de la lisina. • Se puede detectar también la producción de H2S y la producción de gas.

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5
Q

MIO (Movilidad-indol-ornitina)

A

• Es un medio semisólido. • Permite evidenciar la movilidad, la producción de indol (derivado de la utilización del aminoácido triptófano) y la descarboxilación de ornitina.

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6
Q

Urea

A

• Contiene urea y rojo fenol como indicador. Si el bacilo Gram negativo posee la enzima ureasa, degrada la urea produciendo amonio el cual alcaliniza el medio y éste vira a rosado.

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7
Q

Citrato

A

• Permite evidenciar el uso de citrato por parte de la bacteria, como única fuente de carbono.

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8
Q

DETECCIÓN DIRECTA MEDIANTE MÉTODOS TRADICIONALES

A

Paciente-toma de muestra y transporte-observación microscópica directa-cultivo-identificación (observación microscópica, pruebas fisiológicas/bioquímicas, serotipificación)-estudio de susceptibilidad antimicrobianos

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9
Q

CATALASA:

A

Es una enzima que contiene un grupo heme como grupo prostético y que, en presencia de peróxido de hidrógeno, cataliza que el H2O2 se desdoble en agua y oxígeno, con el consiguiente desprendimiento de burbujas.

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10
Q

SUSCEPTIBILIDAD A OPTOQUINA (DISCOS DE 5 ug):

A

Esta prueba emplea un antibiótico cuyo empleo es sólo como diagnóstico en el laboratorio. Cepas de Streptococcus pneumoniae son sensibles a este antibiótico.

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11
Q

COAGULASA:

A

Enzima que es capaz de coagular el plasma humano citratado o de conejo. Esta enzima activa la protrombina del plasma produciendo en consecuencia un coágulo de fibrina.

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12
Q

HEMOLISINAS:

A

Enzimas que destruyen los glóbulos rojos (lisis), liberando la hemoglobina. -  hemólisis (total): Ej.: Streptococcus pyogenes -  hemólisis (parcial): Ej.: Streptococcus pneumoniae -  hemólisis (no hemólisis): Ej.: Enterococcus spp.

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13
Q

CRECIMIENTO E HIDRÓLISIS DEL AGAR BILIS-ESCULINA:

A

Interpretación: Streptococcus grupo D y Enterococcus, crecen en un medio con concentración alta de bilis (5%). Por otro lado, se observa su acción sobre la esculina que se transforma en esculetina, la cual reacciona con los iones férricos del medio formando un complejo de esculetina-fierro de color negro o café.

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14
Q

PYR-A:

A

Discos para el diagnóstico rápido de Streptococcus pyogenes y Enterococcus spp. La prueba PYR es positiva para Streptococcus pyogenes y Enterococcus. Positivo: disco color rosado a rojo. Negativo: disco y/o solución color amarillo a incoloro.

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15
Q

Pruebas bioquímicas en formato de galerías multiprueba de lectura visual.

A

Actualmente se pueden realizar un gran conjunto de pruebas bioquímicas en paralelo en un tipo de formato denominado galería de multiprueba. Estas galerías contienen entre 10-50 celdillas con medios de cultivo liofilizados y cada celdilla diseñada para cuantificar una prueba bioquímica diferente. Cada celdilla debe ser inoculada individualmente con un cultivo estandarizado según instrucciones del fabricante.

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16
Q

Pruebas bioquímicas en formato de galerías multiprueba de lectura automatizada.

A

Se basan en equipos especializados que utilizan galerías multiprueba, en las que la inoculación, incubación y lectura se realizan de manera automática. Algunos equipos permiten, además de realizar pruebas de identificación, realizar también pruebas de resistencia.

17
Q

DETECCIÓN DIRECTA DE ANTÍGENO MEDIANTE PRUEBAS INMUNOLÓGICAS

A

Otra alternativa para realizar un diagnóstico directo, se relaciona con la capacidad de su detección completa o algunos de sus componentes, a través de reacciones antígeno-anticuerpo. Estas técnicas son utilizadas generalmente en el diagnóstico de Streptococcus pyogenes, Streptococcus pneumoniae, Legionella, entre otras. Las técnicas más empleadas son inmunocromatografía, enzimo-inmuno-ensayo (ELISA) e inmunofluorescencia directa (la más usada en bacterias) o indirecta

18
Q

Métodos moleculares que detectan ácidos nucleicos

A

Desde el punto de vista asistencial, su aporte se relaciona con el diagnóstico de microorganismos que no crecen “in vitro” o cuyos cultivos existen, pero son poco sensibles o en aquellos agentes infecciosos que requieren medios complejos o cultivos celulares (en general poco accesibles en los laboratorios asistenciales) o microorganismos que requieren un tiempo de incubación prolongada. Ejs. Bordetella pertussis, Chlamydia, Mycoplasma pneumoniae, Mycobacterium (presencia extrapulmonar), entre otros. Una de las técnicas de mayor desarrollo en las últimas décadas ha sido la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Mediante esta técnica se puede amplificar específicamente segmentos genómicos característicos de cada genoma bacteriano, constituyendo de este modo una alternativa promisoria y rápida del diagnóstico tradicional

19
Q

Sistema de PCR de detección múltiple

A

La combinación de variantes o estrategias de la prueba tradicional de PCR (tales como PCR múltiple, PCR en tiempo real, PCR anidada, entre otras) ha sido particularmente exitosa para su uso en el diagnóstico de microorganismos. La moderna técnica de FilmArray TM , una de las más utilizadas, combina las variantes de PCR múltiple y anidada, resultando en un método que permite identificar simultáneamente y rápidamente varios agentes etiológicos (virus, bacterias, hongos y parásitos) directamente desde la muestra. No requiere aislamiento (cultivo) (resultado en 1-2 h).

20
Q

MALDI-TOF

A

Otra técnica de amplio uso es la espectrometría de masas, cuya versión más utilizada en microbiología es el MALDI-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization-Time of Flight) (Figura 9). Requiere aislar (cultivar) previamente el agente sospechoso.

21
Q

DETECCIÓN INDIRECTA DE ANTICUERPOS ESPECÍFICOS EN EL HOSPEDERO (SEROLOGÍA)

A

En algunas oportunidades, es impracticable la detección directa del agente y debemos recurrir a la detección de anticuerpos específicos montados por el hospedero como respuesta a la presencia del antígeno. Este análisis constituye el llamado diagnóstico indirecto. En una infección aguda se puede utilizar una medición de IgM indicando infección reciente, o las determinaciones pareadas de IgG (suero agudo y etapa convaleciente separados por 15 días), en este caso se considera positivo la conversión de negativa a positiva o el ascenso de título en cuatro diluciones. Se utiliza fundamentalmente en el diagnóstico de bacterias no cultivables (ej: Treponema pallidum), o en situaciones de riesgo biológico elevado (ej: Legionella), o técnicas de diagnóstico poco practicables en laboratorio de rutina (ejs: Mycoplasmas, Chlamydia). Hay que considerar que la respuesta inmune varía según el estado del hospedero, la técnica utilizada y el momento de obtención de muestra. Las técnicas más utilizadas son: ELISA, inmunofluorescencia indirecta y Western blot