Haemophilus influenzae Flashcards
Morphologie microscopique des Haemophilus influenzae
- Bacilles à Gram négatif polymorphes
- coccobacilles, formes allongées en particulier à l’examen direct à partir d’un échantillon biologique.
- capsulé pour les souches invasives
- non sporulé
- immobile
- aérobies-anaérobies facultatif
- bacille de Pfeiffer
Haemophilus influenzae : Habitat - Source de contamination
- strictement humaine
- commensale des voies aériennes supérieures de l’Homme, pouvant également être présente au niveau vaginal chez la femme, plus rarement au niveau intestinal.
- Contamination endogène ou exogène interhumaine.
Haemophilus influenzae
Pouvoir pathogène - Physiopathologie
- contamination par les aérosols respiratoires
- portage sain fréquent surtout par des souches non capsulées
- agent de surnfection des voies respiratoires lors d’atteinte du système muco-ciliaire (infection virale, BPCO, tabac)
- Principalement agent d’infections ORL (otites, sinusites, épiglottites) et de conjonctivites, surtout chez l’enfant, ainsi que d’infections bronchopulmonaires (communautaires ou nosocomiales, le plus souvent chez l’adulte > 60 ans avec co-morbidités) ; également agent de colonisations/infections du tractus génital de la femme, pouvant être à l’origine d’infections materno-fœtales.
- Infections invasives : méningites chez l’enfant (désormais très rares ; cf. prévention), bactériémies, endocardites, péricardites, arthrites.
Diagnostic : Haemophilus influenzae ?
PRELEVEMENT en fonction du contexte
EXAMEN DIRECT
• Examen microscopique
- petite bacille ou coccobacille à Gram négatif, parfois capsulé
- Morphologie microscopique évocatrice, en lien avec type d’échantillon.
→ Examen du LCR
☞ en cas d’atteinte méningée :
- LCR purulent, pléiocytose à prédominance de polynucléaire neutrophile, hypeprotéinorachie, hypoglycorachie et NORMOchlorurachie
(NB : hypochlorurachie dans le cas de Mycobacterium tuberculosis)
- aspect polymorphe au Gram avec présence de bacilles de formes allongées
CULTURE
- Bactérie exigeante pour sa culture : facteur X (hémine = protoporphyrine) + facteur V (NAD), nécessitant un milieu enrichi en facteurs de croissance + incubation en atmosphère enrichie en CO2 (5%)
↪ gélose au sang cuit ou gélose au sang de cheval (apportent facteurs V et X)
↪ gélose PolyViteX (apporte le facteur X) + gélose au sang de mouton (apport facteur V)
-cap-test sur gélose au sang de mouton : satellitisme autour de stries de S. aureus qui apportent le facteur V)
- faible développement sur milieu au sang frais, où l’on peut cependant observer un satellitisme caractéristique (colonies plus denses et de plus grande taille), autour de colonies d’autres bactéries comme les staphylocoques.
- lecture en 18h : petites colonies grisâtres, translucides, convexes, et non hémolytiques
☞ Caractères biochimiques
- oxydase +
- catalase +
- saccharose -
- Technique des cultures comparées ; distinction entre H. influenza (besoin en facteurs V et X) et parainfluenzae (besoin seulement en facteur V)
- Identification : spectrométrie de masse ou mise en évidence de l’exigence culturale en facteurs X et V (sur gélose non enrichie, avec disques de facteurs X, V et X+V).
SEROTYPAGE : recherche des antigènes capsulaires par agglutination
- Détection d’Ag solubles bactériens dans des liquides biologiques : uniquement type capsulaire B ; relativement peu sensible.
- Possibilité de biotypage (8 biovars, selon uréase, ornithine-décarboxylase ODC, indole) ou de sérotypage (6 types, de a à f, selon spécificité de l’Ag de capsule), dans un but épidémiologique.
Résistance de H. influenzae
→ β -lactamines :
-phénotype sauvage sensible : sensibilité naturelle aux amino-pénicillines telles que amoxicilline (1ère intention dans infections ORL) ;
⚠ acquisition fréquente +++ d’un plasmide TEM bêta lactamase non inductible de bas niveau)
↪ résistance à la pénicilline G et à l’Amoxicilline, sensibilité restaurées par un inhibiteur de β-lactamase:
☞ mise en évidence par le test chromogénique à la nitrocéfine (β lactame - céphalosporine - chromogène qui change de couleur lors de l’hydrolyse par la pénicillines)
=> amoxicilline + acide clavulanique, céfuroxime axétil, cefpodoxime proxétil,
- mutation des PLP (15%) = BLNAR (β lactamase Négative Ampicilline Résistant) = modification de cible
↪ résistance de bas niveau à toutes les βlactamines mais sans impact sur l’activité des céphalosporines de 3ème génération => C3G parentérale (ceftriaxone, céfotaxime) ;
☞ mise en évidence par disque d’Ampicilline ou un disque Céfalotine
→ Fluoroquinolone
-phénotype sauvage sensible
↪ - fluoro-quinolones à visée pulmonaire (lévofloxacine, moxifloxacine - adulte, uniquement)
☞ résistance acquise possible mise en évidence par un disque d’acide nalidixique
Prévention Haemophilus influenzae
PROPHYLAXIE PRIMAIRE
La vaccination est obligatoire pour tous les enfants, combinée avec les vaccins contre la diphtérie, le tétanos et la poliomyélite
Vaccination (injections à 2, 4, rappel 11 mois), en vue de la prévention des méningites à H. influenzae type b (initialement le plus fréquemment impliqué), basée sur la spécificité antigénique du polyoside capsulaire ;
⚠ pas de prophylaxie contre l’otite moyenne aigue ⚠
→ vaccin monovalent ACT-HIB® = vaccin conjugué polyosidique en 2 injections à 2 et 4 mois avec rappel à 11 mois
- protection rapide et efficace
- entre 6 et 12 mois : 2 doses et 1 rappel
- entre 12 et 5 ans : 1 seule dose
→ ou vaccin combiné (ex. INFANRIX HEXA®).
PROPHYLAXIE SECONDAIRE
Rifampicne
-pendant 4 jours chez les sujets non vaccinés
-dans les 7 jours après le diagnostic d’une méningite (dès l’âge de 1 mois)
Facteurs de virulence de Haemopilus influenzae
- Adhérence au niveau des muqueuses, liée à des pili (1 ou 2, aux extrémités) ou fimbriae (plusieurs, sur toute la surface externe) et/ou diverses protéines de surface ;
- échappement aux mécanismes de défense de l’hôte par production d’IgA1-protéases
- facteur majeur de virulence dans les infections invasives = capsule polysaccharidique constituée de Polyribosyl Ribitol Phosphate (PRP) (6 types capsulaires de a à f).
↪ réponse immunitaire protectrice dès 3 ans par développement d’anticoprs anti-PRP neutralisants : risque maximum d’infection entre 3 mois et 3 ans (avant 3 mois, anticorps maternels protègent le nouveau-né)
Formes cliniques causées par Haemophilus influenzae ?
a) méningite purulente
- infection invasive à souche encapsulée (surtout sérotype b)
- contagieuse → éviction scolaire
- touche surtout les enfants < 5 ans (souvent précédé d’infection respiratoires supérieures) et les sujets âgés > 60 ans
- infection rare depuis la vaccination
b) infection des voies respiratoires
→ voies respiratoires supérieures
• Otite moyenne aigue
- 1e germe impliqué et représente 40% des OMA bactériennes
☞ association à une conjonctivite purulente (syndrome otite-conjonctivite) est pathognomonique d’une OMA à H. influenzae
• Sinusites
-2e germe impliqué après le pneumocoque
• Epiglotitte aigue :
-infection invasive à souche capsulée due dans 95% des cas au sérotype b
⚠ Le traitement immédiat d’une OMA ou d’une sinusite à H. influenza est indispensable pour limiter le risque de méningite par contiguité.
→ infection des voies respiratoires inférieures
- EBAC (exacerbation aigue de bronchite chronique) chez l’adulte à risque
- Pneumonie aigue communautaire par sur-infection d’infection virale (grippe +++)
- Broncho-penumonie chez l’enfant < 6 ans
- Pneumopathie néonatale (contamination per partum) responsable d’une détresse respiratoire dans les 48 premières heures (mortalité = 50%)
c) autres
- chez l’enfant : conjonctivite, arthrite, péricardite, cellulite, ostéomyélite
-chez l’adulte : atteintes génitales (prostatite, urétrite, cervicite)
Traitement contre H. influenzae ?
✯ OMA et sinusites purulentes
- Amoxicilline + Acide clav dans le syndrome otite-conjonctivite (3 fois/jour)
- ou
• enfant : cefpodoxime
• adulte : cefpodoxime ou cefuroxime-axétil
(2 fois/jour)
Si contre-indication aux β-lactamines :
• enfant : cotrimoxazole, érythromycine-sulfafurazole chez les < 6 ans ou pristinamycine si > 6 ans
• adultes : pristinamycine ou cotrimoxazole ou lévofloxacine (1 fois/jour) (dernière intention)
Enfants ≤ 2 ans : 8 jours
Enfants > 2 ans : 5 jours
✯ Epiglottite : intubation et C3G IV pendant 10 à 15 jours
✯ Méningite : C3G IV (céfotaxime ou ceftriaxone) pendant 7 jours
