Différenciation I Flashcards

1
Q

différenciation

A

acquisition par une cellule de caractères morphologiques originaux aboutissant à une spécialisation fonctionnelle

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Q

mécanismes moléculaires de la différenciation

A
  • nécessité de la ralentir la prolifération via des signaux reçus par la cellule
  • signaux extérieurs émanant des cellules d’un même tissu ou d’un autre tissu
  • arrêt du cycle cellulaire: arrêt en G1

expression ou repression de gènes spé au lignage permet la différenciation cellulaire

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3
Q

≠ signaux pouvant induire la différentiation

A
  • modif dans l’expression ou la répression de gènes spé
  • induction par ∑ ligand-récepteur
  • contacts directs entre cellules d’un même type
  • intéractions entre cellules de ≠ feuillets primitifs: épithélium, mésenchyme
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4
Q

intéraction L-R

A

certaines intéractions médiées par FdC ou les hormones et leurs récepteurs:

  • R à tyrosine kinase
  • hm liposolubles et R nucléaires: acide rétinoïque, hm stéroïdes, thyroxine
  • R couplés aux prot G: acétylcholine, sérotonine

régulation génique par l’intermédiaire de ≠ voies de signalisation intracell

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5
Q

intéractions c-c dans un même tissu

A

intervention des cadhérines ou caténines

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6
Q

intéractions entre feuillets ≠ ou avec la MEC

A

médiées par ≠ types de molécules:

  • GAG se lient aux prot pour former protéoglycanes
  • prot fibreuses structurale → collagène et l’élastine ou prot d’adhérence → fibronectine ou laminine
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7
Q

méthodes de reprogrammation

A

fusion cellulaire
utilisation d’extraits cellulaires
reprogrammation w/ FdT (Oct4, Sox2, myc, klf4)

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8
Q

transdifférenciation

A
  • changement irréversible d’une cellule différenciée en un autre type de cellule différenciée
  • processus de dédifférenciation et de prolifération est un stade de transition nécessaire mais pas obligatoire dans tous les cas
  • peut ê obtenue par ajout d’additif de culture (dexamethasone) / modification génétique de la cell d’origine (FdT Pdx1)
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9
Q

transdifférenciation directe

A

capacité à reprogrammer une cellule somatique en une autre cellule somatique sans passer par une cellule pluripotente

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10
Q

sources de CSM

A
moelle osseuse (63%)
tissu adipeux (10%)
gelée de Wharton (cordon ombilical 17% )
placenta (2%)
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11
Q

CSM propriétes

A

auto renouvellement

différenciation: adipocyte, chondrocyte, ostéocyte (spé mésodermique)

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12
Q

l’expansion avant la différenciation

A
échantillon biologique + bio réacteurs
→ milieu de culture + additifs:
- cytokines (IL2,4)
- FdC (GM-CSF, EPO...)
- aa
- suppléments: insuline, transferrine, sérum de veau, lysat plaquettaire
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13
Q

ex d’additifs pour induire différenciation

A
  1. Adipogenique
    milieu de culture = dexamethasone, insuline
    coloration = oil red
  2. Osteogenique
    milieu de culture = dexamethasone, beta-glycérolphosphate, acide ascorbique, BMP, TGF beta
    coloration = Alizarine Red S
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14
Q

rôle dexamethasone (corticoïde)

ex différenciation osseuse

A

induit expression de FdT spé Runx2, ostérix

induit ∑ de prot spé: BMP

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15
Q

rôle acide ascorbique (Vit C) et beta-glycérolphosphate

ex différenciation osseuse

A

favorisent la ∑ de collagène de type I

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16
Q

rôle TGF beta et BMP

ex différenciation osseuse

A

activent voie Runx2: favorisent ∑ ostéocalcine: ostéopontine

17
Q

impact différenciation

A
  • modif morphologie
  • modif du phénotype: comprend l’ensemble des marqueurs mb ou intracell exprimés par la cellule
  • modif du profil d’expression génique: évolution des FdT
  • modif facteurs sécrétés
18
Q

modif profil d’expression génique adipocytes et ostéocytes

A

CSM → adipocytes FdT: PPAR gamma

CSM → ostéocytes FdT: RUNX2/ Osterix

19
Q

RUNX2

A

impliqué dans la maturation des ostéoblastes

contrôle de la maturation des ostéoblastes et maturation en ostéocytes

20
Q

Ostérix

A

rôle dans l’orientation vers la lignée ostéoblastique

21
Q

facteurs sécrétés par CSM

A

FGF, TGF-beta
IL10, IL6
prostaglandines
métalloprotéases

22
Q

facteurs sécrétés par ostéocytes

A
TGF beta
IL6, IL-11
PTH
1,25 Vit D
TNF
23
Q

facteurs sécrétés par adipocytes

A
IGF, FGF, EGF
cytokines
prostaglandines
retinol, leptine, oestrogènes
TNF
24
Q

pour induire différenciation in vitro → choix bon additifs de culture

A
  • fixation sur des R cellulaire
  • induction d’une voie de signalisation
  • ∑ d’un FdT
  • activation gènes et ∑ des prot caractéristiques de la cellule que l’on souhaite obtenir
25
Q

pour induire différenciation in vitro → tenir compte de l’environnement natif de la cellule que l’on souhaite obtenir

A

culture en 2D ou 3D
dureté du support
contraintes mécaniques

26
Q

dureté du support pour l’adipocyte

A

10-50 Pa

27
Q

dureté du support pour le neurone

A

0,1-1 kPa

28
Q

dureté du support pour le myocyte

A

8-17 kPa

29
Q

dureté du support pour l’ostéocyte

A

25-40 kPa

30
Q

matrice peu élastique

A

forces nécessaires pour rompre l’adhésion à la matrice sont élevée
augmentation de myosine et actine
formation de PF
→ différenciation osseuse

31
Q

matrice élastique

A

forces nécessaires pour rompre l’adhésion à la matrice sont faibles
internalisation de R nécessaire à la différenciation osseuse
→ différenciation en cellules nerveuses

32
Q

le flux sur la différenciation

A

augmente activité et viabilité des ostéoblastes

33
Q

la compression sur la différenciation

A

accroit le dépôt de matrice minéralisée

34
Q

la pression hydrostatique sur la différenciation

A

accroit la différenciation chondrogénique des CSM

35
Q

la tension sur la différentiation

A

accroit la prolifération et fabrication de fibres de collagènes par les fibroblastes du tendon