Aula 7 - Clonagem E PCR Flashcards

1
Q

Vetores

A

Meio de suporte para o dna a clonar

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2
Q

Plasmideos

A

Moléculas de dna circulares, extracromossomicas e com capacidade de autoreplicação

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3
Q

Enzimas de restrição

A

Endonucleases
Permitem introdução de DNA no plasmideo
Clivam o DNA nos locais de reconhecimento

O corte pode ser feito:
No eixo de simetria: blunt ends
Em escada: sticky ends

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4
Q

Transformação bacteriana

A

Introdução dos plasmideos na bactéria E.coli

Método químico: adução de CaCl2

Eletroporacao: aplicação de campo elétrico que produz buracos na membrana por onde entra o DNA

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5
Q

Annealing

A

Ligação de primers as regiões complementares de DNA molde

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6
Q

Extensão

A

Adição de desoxirribonucleotideos (dNTPs), formando cadeia complementar de DNA com recurso a TaqPolimerase

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7
Q

Temperatura de desnaturação

A

94 a 96

Quebra da dupla cadeia de DNA

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8
Q

Temperatura de annealing/melting

A

50 a 60

Dependendo do primer

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9
Q

Temperatura de extensão

A

72

Temperatura ótima de atuação de Taqpolimerase

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10
Q

Quantos ciclos?

A

30 a 35
A partir do 3 ciclo obtém-se fragmentos que correspondem exatamente a zona de interesse

No fim da extensão a enzima para de adicionar nuc devido à aumento de temp

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11
Q

Fases do PCR

A

Fase exponencial- o produto é duplicado a cada ciclo

Fase linear- diminui velocidade, reagentes vão sendo consumidos

Fase de plateau- sao atingidos 30 ciclos, deteção no end point

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12
Q

Eletroforese (em PCR)

A

Para verificar

Em gel de agarose
Brometo de etidio

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13
Q

Variantes do PCR

A
PCR multiplex
PCR fluorescence
PCR multiplex fluorescence
Real time PCR
PCR Multiplex real time
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14
Q

PCR multiplex

A

Uma única reação

Primers com temperaturas de annealing semelhantes

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15
Q

PCR fluorescence

A

Primers com fluorocromos
Eletroforese capilar (sequenciador automático)
Laser captura fluorescência
Observam-se ricos em vez de bandas

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16
Q

PCR multiplex fluorescence

A

Vários primers marcados com diferentes cores
Separa por tamanhos e cores

Eletroforese capilar: maior resolução ( permite distinguir fragmentos que diferem numa base)
Adiciona-se o standards de tamanhos

17
Q

Single template PCR reaction

A

Um único molde amplifica várias sequências (vários primers)

18
Q

Multiple template PCR reaction

A

Vários moldes amplificados apenas por um conjunto de primers ou por vários primers

19
Q

Metodologia do SYBR

A

SYBR green: marcador fluorescente que se vai intercalar na cadeia dupla de DNA ( absorve azul e emite verde)

Quantidade de luz verde registrada

20
Q

Real time PCR

A

Calcular número de moléculas que vão sendo sintetizadas:

Metodologia SYBR
Metodologia sondas Taq

21
Q

Metodologia sondas Taq

A

Sonda oligonucleotidica que se liga a cadeia de DNA complementar entre primers forward e rever-se

Reporter fluorescence na extremidade 5’
Quencher (supressor) na extremidade 3’

22
Q

Técnica baseada no princípio FRET

A

Sonda intacta: fluorescência emitida por reporter é absorvida por Quencher

Extensão: atividade exonuclease da Taq polimerase 5’->3’ parte sonda, separa repórter e quencher

Deixa de haver transferência de energia

Libertação de fluorescência pelo reporter

Deteção pelo aparelho

23
Q

Real time PCR multiplex

A

Só é possível usando sondas TaqMan

Gene A- sonda tem repórter marcado a verde
Gene B- sonda tem repórter marcado a azul

24
Q

SYRB vantagens e desvantagens

A

Mais economico

Ligação não especifica do corante

25
Q

TaqMan vantagens

A

Maior especificidade
Uma única reação (multiplex)

Desv: ver sebenta pg 83

26
Q

Based line

A

Fluorescência basal que o aparelho registra sempre

Ruido

27
Q

Linha de threshold

A

Linha a partir da qual a fluorescência superior a basal

28
Q

Ciclo de threshold

A

Ciclo a partir do qual houve registro de fluorescência válido