principes; cours 2, examen final Flashcards

1
Q

définir ce qu’est le SDS

A

détergent anionique dont le groupement sulfate possède une charge négative;

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2
Q

nommer les 2 fonctions du SDS

A

peut d’une part: s’associer et dissoudre les molécules hydrophobes, notamment les lipides, et dissoudre les membranes cellulaires

d’autre part; le SDS peut s’associer et solubiliser les protéines,

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3
Q

après le traitement au SDS, qu’auront les protéines comme caractéristiques

A

1) ne conserveront que leur structure primaire; le SDS les dénarure sans briser les liens peptidiques ni les ponts disulfures

2) auront une charge nette négative; elles vont ttes migrer vers le pôle positif en fonction de leur masse lorsqu’elles seront placées dans un champ électrique

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4
Q

décrire comment se fait la dénaturation totale des protéines

A

chauffage dans un tampon contenant du SDS et un agent réducteur (mercaptoéthanol)

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5
Q

quel est le rôle de l’agent réducteur lors de la dénaturation totale des protéines

A

va réduire les ponts disulfure de résidus cystéine pour libérer les groupes sulfhydrile

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6
Q

sur quel critère repose la migration des protéines sur le gel

A

slmt selon leur poids moléculaire;

les effets de la conformation et sa charge intrinsèque s’annulent, n’influencant pas la migration

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7
Q

définir le gel de polyacrylamide et ses composants

A

support gélatineux finement réticulé, fabriqué en mélangeant:

-acrylamide
-bis-acrylamide

réseau avec des mailles variables; se comporte comme un tamis moléculaire

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8
Q

à quoi sert l’acrylamide dans le gel de polyacrylamide

A

il polymérise en donnant des chaines linéaires

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9
Q

à quoi sert le bis-acrylamide dans le gel de polyacrylamide

A

va former des chaines ramifiées

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10
Q

un gel discontinu en concentration de polyacrylamide est utilisé en 2 parties;

nommer les en ordre ainsi que leurs caarctéristiques

A

EN HAUT: gel de compression à 5% en acrylamide à pH 6.8

EN BAS: gel de résolution de 5-20% en acrylamide à pH 8.8

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11
Q

quel élément de chacun des gels va leur conférer leur pH différent

A

le tris-HCl

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12
Q

décrire la composition du gel de compression 5%

A

-eau déionisée

-acrylamide mix 30%

-tris-HCl 1,0M pH 6.8

-SDS 10%

-APS 10%

-TEMED 100%

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13
Q

décrire la composition du gel de résolution 12,5%

A

-eau déionisée

-acrylamide mix 30%

-tris-HCl 1,5M pH 8.8

-SDS 10%

-APS 10%

-TEMED 100%

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14
Q

décrire les composants du tampon de migration à pH 8.3

A

-Tris base 25mM (NaOH)

-glycine

-SDS

-compléter avec H2O

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15
Q

décrire les étapes du principe du gel de compression

A

1) les ions Cl- prennent de l’avance, laissant un vide ionique dans lequel les protéines n’avancent pas

2) les ions glycine avancent un peu, et leur front de migration portent les protéines; la glycine devient leur seul électrolyte dispo, ce qui concentre els protéines en une bande

3) à l’interface des 2 gels, les ions glycine deviennent plus mobiles et le front d’ion dépasse la bande de protéines

4) les protéines ont mtn assez d’électrolyets de part et d’autre, et vont se séparer et migrer dans le gel de résolution selon leur poids moléculaire

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16
Q

quel gel de résolution permet de bien séparer la GFP de la GAPDH

A

gel 12.5% d’acrylamide

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17
Q

comment choisit-on un gel de résolution pour une expérience

A

en fonction de la taille des protéines à séparer

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18
Q

que permet la technique de western blot

A

permet de déterminer, de facon spécifique, le niveau d’expression d’une ou plusieurs protéines

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19
Q

quelle est la première étape nécessaire pour effectuer un western

A

il faut absolument débuter par une migration des protéines sur SDS-PAGE

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20
Q

après la migration et séparation des protéines une fois l’électrophorèse terminée, que faut-il faire pour mieux détecter les protéines d’intérêt

A

il faut procéder à un transfert sur une matrice

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21
Q

à quoi servent les matrices (membranes de nitrocellulose)

A

elles vont lier les protéines de facon hydrophobe et électrostatique

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22
Q

par quel principe les protéines transfèrent sur la membrane

A

après empilement de membranes et papiers filtres entourant le gel;

les protéines sont tjrs entourées de SDS, donc sous l’influence d’un champ électrique, les protéines chargées négativement vont migrer de l’anode vers la cathode

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23
Q

pour quelle raison fait-on un blocage après le transfert des protéines sur une membrane

A

on bloque tous les sites de fixation potentiels de l’anticorps utilisé pour la détection immunologique;

on veut assurer la spécificité de la technique

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24
Q

qu’arriverait-il si l’étape de blocage ne serait pas effectuée

A

l’analyse par image décèlerait une détection des bandes supplémentaires non spécifiques

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25
comment se produisent les signaux observables par utilisation des anticorps
les anticorps sont liés, par leur région Fc, à un enzyme rapporteur, comme la phosphatase alcaline (AP) ou la peroxydase de raifort (HRP) ces enzymes rapporteurs produisent des signaux par rxn avec des substrats pour provoquer des changements d'émission d'une lumière
26
comment peut-on quantifier les changements d'émission d'une couleur
par densitométrie; technique utilisée pour mesurer la densité d'un groupe de protéines en utilisant un logiciel d'analyse d'image pour calculer la densité de chaque bande
27
après avoir calculé les intensités des bandes par logiciel, comment peut-on les quantifier directement
à l'aide de marqueurs de référence ou d'un échantillon contrôle on va les comparer
28
pk l'analyse de l'ARNm peut être tout aussi importante que l'analyse de l'ADN *lorsqu'une protéine est anormale ou en quantité insuffisante
pcq bien que la séquence codante d'un gène puisse être normale, son expression (transcription, maturation de l'ARNm, traduction) peut être déficiente **analyse d'ADN ne montrerait aucune anomalie, alors que ARNm si
29
nommer les 2 méthodes de purification de l'ARN total
par précipitation sur colonne
30
si on veut isoler et analyser slmt l'ARNm, cmt procéde-t-on
il faut isoler ARNm des autres types d'ARN; la purification impliquera alors une colonne d'affinité spécifique à l'ARNm
31
nommer les diverses espèces d'ARN présentes dans ARN total
ARNm ARNr ARNt ARNsn (petits ARN nucléaires) ARNsno (petits ARN nucléolaires)
32
quels principes basent les méthodes d'analyse de l'ARN
-principe de dénaturation réversible des structures secondaires de l'ARN -possibilité d'hybridation avec des molécules de séquence complémentaire soit en ADN ou ARN
33
que fait-on pour hybrider des complexes ADN/ADN, ADN/ARN ou ARN/ARN
des cycles de dénaturation et de renaturation en température ou en pH
34
pk l'isothiocyanate de guanidine (trizol) est utilisé lors d'extraction d'ARN total
il a un fort pouvoir dénaturant qui provoque la lyse des cellules et inhibe en mm temps les RNases libérées
35
lors d'extraction d'ARN total, comment sont lysées les cellules
grâce à une solution monophasique d'isothiocyanate de guanidine (trizol) et de phénol
36
l'ARN, après la lyse de la cellule, est extrait à l'aide du chloroforme que cela entraine-t-il
la séparation du mélange en 2 phases après centrifugation
37
dans quelle phase demeure l'ARN
la phase aqueuse, qui est la phase supérieure
38
que contiennent les phases inférieures à la phase aqueuse-ARN
phase intermédiaire: ADN phase inférieure-organique: ADN génomique et protéines, avec le phénol et chloroforme les deux sont rouges**
39
après qu'on récupère la phase aqueuse, cmt est manipulé l'ARN
ARN est précipité avec un alcool (isopropanolol) froid (va former un culot au fond du microtube) lavé, solubilisé dans l'eau et dosé
40
décrire les étapes de l'extraction d'ARN total sur colonne
-homogéiniser les cellules avec trizol -déposer sur colonne -centrifuger -laver (par centrifugation) -traiter l'ARN au DNase -laver -éluer -doser
41
quel type d'ARN est le plus nombreux
les ARNr; sont plus de 3/4 des ARN d'une cellule
42
quel type d'ARN est le moins commun
ARNm; slmt 1 à 5% des ARN d'une cellule
43
pk les ARNm peuvent être aisément purifiés par chromatographie d'affinité, au contraire des autres types
pcq ce sont les seuls à posséder une queue poly A
44
qcqi va retenir les ARNm sur la matrice utilisée
la matrice sera composée d'une chaine de thymines (oligodT), qui va retenir les queues polyA, et donc les ARNm **grâce à leur complimentarité de séquence A-T
45
pk avant l'hybdridation avec les oligodt, on lave avec du NaCl
pour enlever les restes de ARNr et ARNt
46
quelle est l'utilité de la technique PCR
produire une grande quantité d'un fragment d'ADN précis à partir d'une quantité minime d'un échantillon, contenant l'ADN d'intérêt
47
pour quelles fins est utilisée la PCR
pour le clonage moléculaire la mutagenèse dirigée le marquage de sondes analyse de la chromatine (immunoprécipitation de la chromatine) détecter des agents infectieux établir des empreintes génétiques diagnostiquer des maladies génétiques analyser des variations de séquences
48
nommer les 3 principales étapes de l'amplification d'ADN par PCR
1) dénaturation de l'ADN 2) hybridation des amorces à l'ADN matrice 3) Polymérisation de l'ADN les 3 forment un cycle PCR
49
quel est le but de la dénaturation (première étape de PCR)
elle vise à séparer les 2 brins d'ADN, afin de permettre l'hybridation subséquente des amorces sur l'ADN simple brin
50
comment se fait dénaturé l'ADN dans un cycle PCR
le mélange d'ADN est chauffé à 95 deg; les liaisons H entre les bases azotées des deux brins d'ADN sont brisés à une telle température, et l'ADN se retrouve en forme simple brin
51
en pratique, cmb de temps prend la dénaturation dans une rxn de PCR standard
1 minute
52
comment l'hybridation des amorces se fait lors d'un cycle PCR
après la dénaturation, la température s'abaisse assez pour permettre la renaturation de l'ADN; des amorces, complémentaires aux extrémités de l'ADN à amplifier, sont présentes dans le mélange réactionnel **concentration assez élevée par rapport à l'ADN matrice pour s'assurer et favoriser l'hybridation donc; hybridation entre un fragment d'ADN matrice et une amorce complémentaire
53
pk très peu de molécules d'ADN double brin seront reformées à l'étape d'hybridation lors de PCR, si la température permet la renaturation
pcq les amorces sont placées en excès et en ratio bcp plus élevé que la concentration d'ADN à amplifié, de sorte que l'hybridation entre les 2 est favorisée
54
cmt de temps l'étape d'hybridation des amorces prend dans un cycle PCR
1 minute; permet à l'ensemble du mélange réactionnel d'atteindre la température souhaitée
55
comment la polymérisation se fait lors d'un cycle PCR
après l'hybridation, la température remonte à 72 degrés, afin de permettre l'élongation des amorces appariées à l'ADN matrice, grâce à la Taq polymérase (synthétise l'ADN)
56
quelle est la température optimale de la Taq polymérase
72 degrés;
57
d'où provient la taq polymérase
isolée à partir de thermus aquaticus
58
quel est l'avantage majeur de la Taq polymérase
elle peut être ajoutée au début de l'expérience, et conserve une partie de son activité jusqu'à la fin puisque n'est pas inactivée à 95 degrés
59
cmt de temps l'étape de polymérisation prend dans un cycle PCR
le temps de cette étape dépend de la longueur du fragment d'ADN à amplifier vitesse de la taq= au moins 1 kilobase par minute
60
décrire la recette du mélange réactionnel PCR
-matrice en ADN -amorces -mix de dNTP -polymérase (taq) -ions mg2+ (cofacteurs)
61
quel est le principe de la technique RT-PCR; reverse transcriptase
utiliser les ARNm comme matrice d'amplification de la PCR; puisque ADNc normalement utilisé est en fait une copie d'ARNm obtenu par une transcription inverse effectuée par RT
62
qcq RT
ADN polymérase dépendante de l'ARN; elle utilise une matrice d'ARN pour former de l'ADN
63
de quoi dépend le travail de RT
comme les autres ADN polymérases, elle a besoin des amorces et des matrices
64
à quelles fins est utilisée la RT-PCR
-identifier des virus à ARN -mesurer le niveau d'expression d'un transcrit très faiblement représenté dans un pop hétérogène d'ARNm -construction des banques d'ADNc en vue de clonage moléculaire ou pour quantifier les ARNm qqpart
65
nomm er les étapes d'analyse d'expression génique par RT-PCR
1) amplification par RT-PCR de l'ADN d'un gène de référence 2) séparation des amplicons par électrophorèse sur gel d'agarose, avec des marqueurs de l'ADN (agents intercalants) 3) détection par visualisation de bandes sur des gels sous UV 4) analyse de l'intensité de bandes détectées par densitométrie avec des logiciels d'analyse d'images 5) analyse graphique par ordinateur
66
pourquoi fait-on une amplification par RT-PCR de l'ADN d'un gène de référence
pour controler les variations expérimentales de la quantité d'ARN utilisée dans chaque RT; on utilise ces gènes nommés -domestiques- pour la normalisation des données (B-actine, GAPDH)