cours 10 mcb2399 Flashcards

1
Q

différence entre clonage directionnel et non directionnel

A

non directionnel: utilisation de la même enzyme de restriction: pas de sens à l’insert

directionnel: 2 enzymes de restrictions différentes: oriente insert d’une certaine façon

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2
Q

quel est l’avantage du clonage directionnel

A

obtention de insert dans sens désiré permet bonne expression pcq dans bonne orientation selon promoteur

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3
Q

quel problème peut causer les 2 orientations du clonage non-directionnel

A

seulement 1/2 va pouvoir être transcrit pcq pas dans la bonne orientation selon le promoteur

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4
Q

que doit-on tenir en compte quand on fait une digestion double

A

2 enzymes: 2 conditions de réactions différentes qui doivent être prises en compte

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5
Q

que se passe-t-il si on adapte pas les conditions de réactions des 2 enzymes de restrictions

A
  • digestion partielle
  • activité étoile
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6
Q

peut-on faire un clonage directionnel avec deux enzymes différentes qui génèrent des bouts francs

A

possible mais ne donnera pas un clonage directionnel, bouts pas spécifiques

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7
Q

peut-on faire clonage directionnel avec 1 enzyme qui fait bout franc et l’autre qui fait bout cohésif?

A

oui pcq donne deux bouts différents

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8
Q

peut-on faire un clonage non-directionnel avec 2 enzymes de restrictions différentes

A

oui: 2 enzymes peuvent générer le même bout cohésifs sans couper exactement la même séquence

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9
Q

comment choisir ses enzymes de restriction pour un clonage

A
  • souvent veut 2 enzymes différentes qui font des bouts cohésifs
  • vérifier pas site restriction dans insert
  • vérifier conditions des 2 enzymes
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10
Q

quoi faire si un des deux enzyme possède un site de restriction dans insert

A
  • mutagénèse dirigée pour enlever le site
  • faire clonage non directionnel
  • utiliser autre enzyme
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11
Q

comment s’assurer de l’efficacité des digestions

A

faire digestion simple de chaque enzyme avec le vecteur de clonage:
devrait être linéaire
sur gel:
- en haut: circulaire
- milieu: linéaire
- en bas: surenroulé

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12
Q

quelle est l’étape entre la digestion et ligation

A

inactivation/élimination enzymes de restriction par chaleur ou purification ADN digéré

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13
Q

que fait la ligase T4

A
  • lie extrémité 5’P et 3’OH
  • besoin ATP
  • inactivé par chaleur
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14
Q

pourquoi faire la ligation à 16°C alors que la ligase fonctionne mieux à 37°C

A

à 37: extrémités sont moins stables donc ligation plus difficile même si l’enzyme fonctionne mieux

16: enzyme fonctionne toujours (mais moins bien) et les extrémités sont plus stables

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15
Q

comment lier efficacement des bouts francs

A

efficacité faible:
dépend de la probabilité de contact moléculaire selon mouvement brownien et concentration ADN

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16
Q

pourquoi doit-on avoir un ratio entre insert et vecteur pour la ligation

A

pcq étape la moins efficace:
pour optimiser besoin ratio insert/vecteur 3:1
(selon nombre de molécules)

17
Q

que se passe-t-il si le ratio insert:vecteur 3:1 est diminué vs augmenté

A

diminué exemple 1:1: vecteur se recircularise sans insert

augmente 9:1:
plusieurs inserts dans un vecteur

18
Q

comment s’assurer que la ligation a bien été effectuée

A

patron sur gel différent: vecteur circularisé va être plus haut que vecteur linéaire digéré avec même enzyme

19
Q

comment réduire la probabilité de sélectionner vecteur parental après la transformation

A
  • purifier vecteur digéré sur gel
  • déphosphorylation vecteur par phosphatase
  • digestion avec enzyme de restriction dans insert parental
20
Q

comment se fait la purification sur gel du vecteur digéré

A

éliminer le vecteur parental digéré: va former 2 fragments et ne sera pas capable de recirculariser à cause des bouts cohésifs non compatibles

21
Q

comment éviter de prendre le vecteur parental avec la technique de déphosphorylation du vecteur

A
  • après digestion: déphosphoryle 5’P pour empêcher la recircularisation si on a utilisé clonage non directionnel
  • déphosphorylation par phosphatase provenant crevette et est inactivée par chaleur
22
Q

qu’est-ce que la transformation d’ADN

A

insert ADN extracellulaire dans une cellule

23
Q

qu’est-ce que la compétence bactérienne

A

capacité d’une cellule à recevoir ADN extracellulaire

24
Q

comment induire la compétence cellulaire et la transformation

A

lavage avec chlorure de calcium/rubidium et incubation sur glace

25
Q

comment le chlorure de calcium/rubidium rend les cellules compétentes

A

sels avec cations divalents qui neutralisent les charges des acides téichoiques ou LPS des bactéries

26
Q

comment les chocs thermiques permettent la transformation

A

changement de température déstabilise enveloppe bactérienne
glace-42°C-glace-milieu riche (permet récupération)

27
Q

qu’est-ce que l’électroporation et à quoi ça sert

A

pour transformation par courant électrique: forme pores dans enveloppe bactérienne

lavages au glycérol et incubation sur glace pour éliminer sels (pcq diminue efficacité électroporation)

28
Q

quelle est la méthode la plus efficace pour la transformation bactérienne

A

électroporation

29
Q

efficacité de la transformation est meilleure avec de l’ADN surenroulé ou non

A

surenroulé

30
Q

comment vérifier que la transformation a bien été effectuée

A

étalement sur milieu sélectif avec antibiotiques

31
Q

comment confirmer la construction moléculaire

A

PCR ou digestion
puis: séquençage

32
Q

quels sont les problèmes qui diminuent les chances d’un bon clonage moléculaire

A
  • mauvaise qualité ADN
  • faible efficacité digestion ou activité étoile
  • faible efficacité ligation
  • faible efficacité transformation
  • sélection vecteur parental après transformation
33
Q

qu’est-ce qu’un plasmide navette

A

plasmides qui peuvent se reproduire et être sélectionn dans plus d’un organisme
bactérie à levure ou bactérie à cellule mammifère