Considérations Pour L'anesthésie D'un Chient Brachycéphale Ou Lors De Dyspnée Inspiratoire Flashcards

Question

Préopératoire: stratégie « phénothiazines » A. Quelle molécule est utilisée? B. Quel est son ses effets? C. Comment peut-elle présenter un risque? D. Vû ce risque, quelle est la contre-indication? E. Quelle est la recommandation pour en faire utilisation?

Answer 1

A. Acépromazine (5-20 ug/kg, IV, SC, IM), seule ou en association avec un morphinique B. Effets - bonne valeur sédative (mais pas analgésique) - moyorelaxant (détend les muscles de la langue donc possiblement problématique pour la respiration du brachycéphale) - poïkilothermisante C. Risque d’aboutir à un coup de chaleur si administrée dans une atmosphère chaude, en raison de l’impact sur la thermorégulation (poïkilothermisant, c.a.d. l’animal se met à la tempérture ambiante). D. Ne pas administer à un animal qui est déjà en coup de chaleur (il est en état de choc et on ne veut pas le vasodilater davantage) E. Possible de l’utiliser, mais il faut surveiller l’animal.

Answer 2

A. Seulement chez un animla hémodynamiquement stable et normotherme, soit ASA 2 maximum (donc chez le brachycéphale que chez l’ASA 2, puisqu’il n’est jamais ASA 1). On ne l’utilise plus dès qu’il y a moindre instabilité. B. Molécules: utilisées seules ou en association avec des benzodiazépines (ex. Midazolam ou Diazépam), voir morphinique fort pour faire une analgésie - Médétomidine (2-10 ug/kg IV, SC, IM) - Dexmédétomidine (bolus 1-5 ug/kg IV, SC, IM ou perfusion continue 0.5-2 ug/kg/h CRI-IV) C. Perfusion continue (Dexmédétomidine) recommandée au réveil, prévient l’excitation de l’animal au réveil.

Answer 3

Ne pas utiliser les benzodiazépines sueles pour tranquiliser les animaux, car on risque d’avoir au contraire un phénomène de désinhibition.

Answer 4

A. Objectifs: soit corriger, soit prévenir le déficit en O2 B. On majore la franction inspirée en O2 (FiO2), tout en évitant au maximum le stress. C. Utiliser la méthode d’oxygénothérapie que l’animal tolère le mieux: - flow-by - lunettes (en pratiques difficiles à mettre sur l’animal brachycéphale) - sonde D. Méthodes d’oxygénothérapie à proscire - masque facial: utile que si parfaitement étanche, risque de ré-inhalation de CO2 ou si l’animal vomit dans le masque - cage: « four à brachycéphale » car augmente la vapeur d’eau dans le milieu hygrométrique, donc de la chaleur -> risque de coup de chaleurs - collier élisabéthain

Answer 5

A. Complication les plus rencontrées, à envisager: régurgitations et inhalations (bronchopneumonies par fausse déglutition) B. Anticipation des régurgitations et inhalations - intubation précoce (remonter la tête) - décubitus sternal (dès l’induction) - mise à jeun si possible C. Molécules pour anticiper les régurgitations et inhalations - métoclopramide (0.2-0.5 mg/kg IV, SC) - mantoprazole (0.5-1.0 mg/kg IV) - macropitant (1.0 mg/kg IV, SC) D. Autres complications - inflammation des voies aériennes: administration d’AIS tels Dexaméthasone (0.1 à 0.2 mg/kg en IV, SC, IM) et/ou Fluticasone par voie inhalée (125-500 ug/CN local) - saignements: acide. Tranéxamique (anti-fibrinolytique, 10 mg/kg IV TID)

Answer 6

A. Le décubitus sternal est valable poru tous les animaux qui ont un estomac plein au moment de l’anesthésie. Ils vont forcément vomir, le décubitus sternal évitera les fasses routes. B. La durée recommandée de jeune pour les animaux est de 4-6h. Cependant, les brachycéphales ont une vidange gastrique plus lente que les autres chiens, don on allonge le temps de mis à jeun.

Answer 7

A. Intuber le plus rapidement possible B. Induction par intraveineuse C. Large choix de médicaments narcotiques - propofol - alfaxalone - combinaison PPF (propofol/kétamine) D. Éviter les dissociatifs (kétamine) qui provoquent une hypersécrétion salivaire, gastrique et respiratoire et qui ne facilitent pas l’intubation et peuvent gêner la ventilation.

Answer 8

A. L’intubation est indispensable B. Rôles de l’intubation - dégager les voies aériennes supérieures - éviter les fausses déglutitions C. Utiliser un laryngoscope à lame plate (aussi appelé lame de Miller)

Answer 9

A. Bannir les sondes trop petites, qui donne le « syndrome de la paille », i.e. on envoie un certain volume courant qui ne va jamais ressortir à cause du diamètre trop petit de la sonde. B. Le larynx est l’élément limitant car plus petit que la trachée, c’est cette taille qui nous intéresse pour le choix de la sonde. C. Untiliser une « grosse sonde » d’environ taillon 6 à 6.5, pour assurer le débit d’air et la bonne vidange des espaces morts. Donc choisir la juste taille, ni trop grosse pour ne pas « râper le larynx », ni trop petite pour ne pas générer un « syndrome de la paille ». D. L’idéal est l’intubation en décubitus sternal. On peut intuber l’animal en décubitus dorsal pour mieux éviter le voile du palais, mais il faut faire attention à l’hypoventilation.

Answer 10

A. L’utilisation d’halogénés est la façon la plus simple de maintenir la narcose, mais on peut très bien aussi utiliser le Propofol ou l’Alfaxalone. B. On ne maintient pas l’anesthésie en gazeuse si l’animal hypoventile C. But de ventilation uniquement: une bonne sédation suffit, on utilise un a2-agoniste associé au propofol ou l’alfaxalone. (C’est comme une anesthésie mais en moins fort) D. On peut utiliser un curare (vécuronium), rarement, qui permet d’arrêter complètement la ventilation et donc de prendre le relai en la contrôlant mécaniquement et précisément.

Answer 11

Surveillance instrumentale des paramètres - PA: les médicaments de l’anesthésie sont souvent vasodilatateurs - capnographie: renseigne sur la ventilation et ses potentiels problèmes - oxymétrie pulsée: non invasive, renseigne sur les conséquences hémostatiques d’un AG

Answer 12

A. Problème de matériel B. Valeur observable sur l’appareil de monitoring

Answer 13

A. Période à risque puisque l’animal est désorienté, il stress et il ya des risques de régurgitation/broncho-inhalation et d’inflammation locale. B. Incidence élevée de régurgitations: >30-40% C. Lutter contre les régurgitations: utiliser un anti-émétique si on ne l’a pas déjà fait à l’induction - macropitant - métoclopramide - pantoprazole D. L’extubation doit ni se faire trop tôt (l’animal n’est plus correctemetn ventilé), ni trop tard (l’animal stress et on risque de le blesser), d’où l’importance de bien surveiller son animal. On conseille de dégonfler complètement le ballonnet. E. Animal en décubitus sternal (position qui favorise le mieux la ventilation) et on peut ouvrir la bouche avec des lacettes que l’on fixe à l’extérieur (facilite la ventilation et la surveillance). F. Risque d’étouffement au réveil. On prépare au cas où un agent de la narcose pour réintuber si nécessaire. G. Surveillance des paramètres au réveil - température - perméabilité des voies aériennes supérieures - capnométrie H. Oxygéner l’animal avec une méthode non stressante: lunettes, sonde naséale, naso-trachéale ou naso-pharyngée, flow to nose.

Answer 14

A. Éviter le stress - environnement calme et silencieux - température confortable - sédation si nécessaire (acépromazine, dexmédétomidine, méthadone) B. Surveiller l’animal, notamment sur son analgésie

Answer 15

A. L’inflammation peut être dûe à la technique chirurgicale si opération sur les voies aériennes (ex. Lame froide), ou à l’intubation (ballonnet). B. Gestion de l’inflammation: dépend vraiment du réveil - mettre la tête au-dessus de l’horizontale - glucocorticoïdes si nécessaire, par voie parentérale (dexaméthasone) ou locale (fluticasone) - corticothérapie par voie orale sur les jours qui suivent l’opération.