CAP-Biomarqueurs mammaires Flashcards

1
Q

Quels sont les marqueurs devant être rapportés en contexte de carcinome mammaire infiltrant?

A
  • ER
  • PR
  • HER2
    • IHC
    • FISH
  • Ki-67
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2
Q

Quels sont les critères de positivité pour l’ER/PR?

A
  • ER :
    • Négatif : <1% de noyaux tumoraux marqués
    • Positivité faible : 1-10% de noyaux tumoraux marqués
    • Positif : >10% de noyaux tumoraux marqués
    • Il faut également mentionner l’intensité globale du marquage (faible, modérée ou forte)
  • PR :
    • Négatif : <1% de noyaux tumoraux marqués
    • Positif : 1% ou plus de noyaux tumoraux marqués
    • Il faut également mentionner l’intensité globale du marquage (faible, modérée ou forte)
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3
Q

Quels sont les éléments devant être mentionnés en association avec l’analyse des marqueurs ER/PR?

A
  • Pourcentage de cellules marquées
  • Intensité moyenne du marquage
  • Contrôle interne
    • Présente (et marquent de façon appropriées)
    • Absente
  • Type de test
    • Approuvé par la FDA
    • Test développé en laboratoire
    • Approuvé par un autre organisme
  • Anticorps primaire utilisé
  • “Scoring system”
  • Temps d’ischémie froide
  • Temps de fixation
  • Bloc sur lequel le test a été effectué
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4
Q

Quel est le score utilisé pour caractériser le marquage immunohistochimique pour HER2?

A
  • Négatif (0)
  • Négatif (1+)
  • Équivoque (2+)
  • Positif (3+)
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5
Q

Quels sont les éléments devant être mentionnés en association avec l’analyse du marqueur HER2 par IHC?

A
  • Pourcentage de cellules marquées
  • Intensité moyenne du marquage membranaire
  • Contrôle interne
    • Présente (et marquent de façon appropriées)
    • Absente
  • Type de test
    • Approuvé par la FDA
    • Test développé en laboratoire
    • Approuvé par un autre organisme
  • Anticorps primaire utilisé
  • Temps d’ischémie froide
  • Temps de fixation
  • Bloc sur lequel le test a été effectué
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6
Q

Quels sont les éléments devant être mentionnés en association avec l’analyse du marqueur HER2 par FISH?

A
  • Nombre d’observateur
  • Nombre de cellules tumorales invasives évaluées
  • Méthode :
    • Sonde double
    • Sonde unique
  • Type de test :
    • FDA ou autre
  • Type d’anticorps utilisé
  • Temps d’ischémie froide
  • Temps de fixation
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7
Q

Nommez des variables pré-analytiques et analytiques pouvant affecter les résultats d’un test immunohistochimique pour ER/PR/HER2?

A
  • Temps ischémique
  • Temps de fixation
  • Type de fixatif utilisé
  • Traitement particulier du tissu (décalcification)
  • Statut des contrôles internes/externes
  • Adéquation du tissu pour l’évaluation
  • Clone d’anticorps primaire utilisé
  • Statut de régulation du test
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8
Q

Nommez des causes pouvant expliquer un résultat faussement négatif pour les récepteurs ER/PR?

A
  • Écrasement du spécimen
  • Exposition des cellules tumorales à la chaleur
  • Sur/Sous-fixation
  • Temps ischémique prolongé
  • Type de fixatif utilisé
  • Décalcification
  • “Antigen retrieval” non-optimisé
  • Type d’anticorps utilisé
  • Contre-coloration d’hématoxyline trop foncé qui obscurcit des noyaux faiblement positifs
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9
Q

Nommez des causes pouvant expliquer un résultat faussement positif pour les récepteurs ER/PR?

A
  • Réaction croisée avec un autre marqueur
  • Mauvaise interprétation de cellules bénignes entrapées par la tumeur
  • Usage d’un logiciel d’analyse d’image qui surévalue les noyaux marqués
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10
Q

Quelles sont les 3 principales méthodes permettant de limiter les faux-positifs/négatifs en contexte d’analyse des marqueurs ER/PR?

A
  • Prêter attention aux contrôles internes
  • Prêter attention aux contrôles externes
  • Corréler les résultats avec le type histologique et le grade de la tumeur
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11
Q

Quels sont deux scores pouvant être utilisés pour caractériser le marquage ER/PR d’un carcinome mammaire.

A
  • Score d’Allred
  • Score H
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12
Q

Nommez des causes de faux-positifs en contexte d’évaluation du récepteur HER2 par IHC.

A
  • Artéfact de périphérie (edge), les bordures marquant souvent plus intensément que le centre des carottes
  • Positivité cytoplasmique
  • Sur-marquage par mauvaise titration de l’anticorps (à suspecter si les cellules normales sont positives)
  • Confondre un foyer de DCIS (souvent +) pour un foyer de carcinome infiltrant
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13
Q

Nommez des causes de faux-négatifs en contexte d’évaluation du récepteur HER2 par IHC.

A
  • Temps ischémique prolongé
  • Hétérogénéité tumorale (répéter sur la tumeur si la biopsie est négative)
  • Mauvaise titration de l’anticorps (concentration trop faible)
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14
Q

Quelles sont les 2 principales méthodes permettant de limiter les faux-positifs/négatifs en contexte d’analyse des marqueurs ER/PR?

A
  • Prêter attention au contrôle externe (pas de contrôle interne)
  • Corréler avec le type histologique et les autres résultats de biomarqueurs
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15
Q

Quels sont les catégories de marquage pour HER2?

A
  • Score 0 (négatif) : absence de marquage ou marquage membranaire incomplet et faible dans 10% ou moins des cellules tumorales
  • Score 1 (négatif) : marquage membranaire incomplet et léger dans >10% des cellules tumorales
  • Score 2 (équivoque) : marquage membranaire complet faible à modéré de >10% des cellules tumorales OU marquage membranaire complet et intense, mais de moins de 10% des cellules tumorales
  • Score 3 (positif) : marquage membranaire complet et intense de >10% des cellules tumorales
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16
Q

Quelles sont les groupes obtenus lors de l’utilisation d’une double sonde (HER2/CEP17) en contexte de carcinome mammaire?

A
  • Groupe 1 : ratio HER2/CEPT17 de 2 ou plus et 4 signaux HER2 ou plus par cellules
    • Résultat positif
  • Groupe 2 : ratio HER2/CEPT17 de 2 ou plus et <4 signaux HER2 par cellules
    • Résultat positif si IHC 3+
    • Résultat négatif si IHC 0-1-2+
  • Groupe 3 : ratio HER2/CEPT17 de <2 et 6 signaux HER2 ou plus par cellules
    • Résultat positif si IHC 2-3+
    • Résultat négatif si IHC 0-1+
  • Groupe 4 : ratio HER2/CEPT17 de <2 et 4-<6 signaux HER2 par cellules
    • Résultat positif si IHC 3+
    • Résultat négatif si IHC 0-1-2+
  • Groupe 5 : ratio HER2/CEPT17 de <2 et <4 signaux HER2 par cellules
    • Résultat négatif