tema 10 Flashcards
¿qué características de las enzimas nos permiten usarlas en análisis?
su especificidad y su eficiencia
¿qué podemos analizar con enzimas en torno a análisis?
- determinar presencia/cantidad de un analito sin necesidad de separar
- determinar la presencia/actividad de enzimas en una mezcla
- determinar la presencia/cantidad de otras sustancias mediante reactivos marcados con enzimas: enzimoinmunoanálisis
análisis para determinar la presencia/cantidad de un analito sin necesidad de separar
Ej.: determinación de la [glucosa] en sangre
en una mezcla compleja: sustrato + producto + enzima, donde el producto es medible, podemos conocer la cantidad de sustrato
si el producto no es medible, utilizamos reacciones acoplada donde un producto sea medible
el analito es el sustrato
análisis para determinar la presencia/actividad de enzimas en una mezcla
Ej.: ensayo enzimático acoplado de glucosa oxidasa
[reacciones]
el método analítico usado es el ensayo espectofotométrico, donde sabemos que ABS+ absorbe la luz a 415nm, pudiendo observar el aumento/disminución de la absorbancia a dicha longitud
el analito es una enzima
análisis para determinar la presencia/cantidad de otra sustancia mediante reactivos marcados con enzimas: enzimoinmunoanálisis
- ELISA
- Wester Blot
analito es una proteína
define enzimoinmunoanálisis
técnica que combina la especificidad de los anticuerpos con la sensibilidad de un ensayo enzimático
las enzimas que suelen estar asociadas/acopladas a un anticuerpo suelen ser la peroxidasa de rábano o la fosfatasa alcalina
se usa para mediar cuantitativa/cualitativamente la cantidad de un antígeno/anticuerpo
define placa de ELISA
placa multipocillo de poliestireno, el cual reacciona con proteínas fuertemente y hace que se adhieran al pocillo de este material
Técnica ELISA
técnica para determinar la cantidad/presencia de una molécula mediante reactivos marcados con enzimas
se realiza en placas de ELISA
se requiere de:
- antígeno: proteína que nos interesa
- anticuerpo primario: tiene alta especificidad por el antígeno que nos interesa
- anticuerpo secundario: su parte invariable es específica con el anticuerpo primario y tiene asociado una enzima
Proceso de la técnica ELISA
Técnica Weter Blot
técnica para determinar la cantidad/presencia de una molécula mediante reactivos marcados con enzimas
se realiza en placas de poliacrilamida
se requiere de:
- antígeno: proteína que nos interesa
- anticuerpo primario: tiene alta especificidad por el antígeno que nos interesa
- anticuerpo secundario: su parte invariable es específica con el anticuerpo primario y tiene asociado una enzima
Proceso de la técnica de Wester Blot
enzimas usadas en laboratorio
- Endonucleasas/Enzimas de restricción
- ADN ligasa
- Taq polimerasa
- Reversotranscriptasa
características de enzimas de restricción/endonucleasas
- reconocen secuencias cortas de ADN bicateriano (4-12 pb)
- hidrolizan enlaces fosfodiester del ADN
- cada enzima reconoce una secuencia específica
- reconocen secuencias palíndromas
funcionamiento de la endonucleasa/enzima de restricción
el lugar de reconocimiento/corte se denomina diana de restricción, y cada enzima tiene solo una diana de restricción
cuando se produce la hidrólisis del ADN se producen 2 cadenas de ADN distintas:
- cadena hidrosilada en 3’
- cadena fosforilada en 5’
pueden producir moléculas de ADN con extremos:
- adhesivos: hidrolizan distintos enlaces de las cadenas, dejando aminoácidos desapareados en extremos cohesivos
- extremos romos: hidrolizan mismo enlace en las dos cadenas
los extremos cohesivos son más fáciles de clonar
descubrimiento de la endonucleasa/enzima de restricción
- 1970: Hamilton Smith y Kent Wilcox: descubren la primera endonucleasa: HinD II
proviene de Haemophilus Influenzae
las enzimas de restricción son producidas por los microorganismos para protegerse del ADN exógeno - 1971: Daniel Nathans y Kathleen Danna: primera vez que se mapea el genoma con enzimas de restricción
- muchas endonucleasas están comercializadas: New England BioLab