Mycologie Flashcards
Cryptococcose : différentes cliniques
Pulmonaire : inaugural
- IC : asymptomatique ou sd pseudo-grippal
- ID : toux, douleur thoracique, hémoptysie, SDRA
Neuro-méningée
- Fièvre résistante aux ATB, céphalées, V
- Sd méningé, HTIC
- Atteinte des nerfs crâniens : paralysie face, tb cse
Cutanée : thorax, ailes du nez, extrémité des membres –> acnéiforme, papuleux
Osseuse : vertèbres, ostéolyse des os courts et plats
Forme disséminée : gg, rate, foie, MO, prostate
C. albicans : caractéristiques
- Levure
- Flore saprophyte résidente : digestive, génitale
- Reproduction asexuée : bourgeonnement pseudomycélium, filament vrai ou levure
- Résistance naturelle : cycloheximide
- Opportuniste
Cryptococcose : ttt
Induction : AmB IV + 5FC 15j Consolidation : 2 mois 1. Fluconazole 2. Itraconazole Entretien : idem, posologies plus faibles, pdt 6 mois-1 an voire plus, jusqu'à ce que CD4 > 200/mm3
Pneumocystose : ttt
Antifongique
- Cotrimoxazole IV ou PO 21j
- Iséthionate de pentamidine IVL ou Atovaquone ou Primaquine + Clindamycine PO 21j
Maintien Bactrim jusqu’à CD4 > 200/mm3
Symptomatique : oxygénothérapie, corticothérapie
Etiologique : trithérapie antirétrovirale
Cryptococcose : diagnostic
Examen direct : LCR, sang, urines, LBA, biopsie
Détection de la capsule
- Liquide : test à l’encre de Chine –> halo clair = capsule
- Biopsie : coloration muci carmin ou bleu alcian –> capsule
Culture : 2 milieux
- Milieu de Sabouraud sans Actidione
- Milieu de Sabouraud + ATB sans actidione
- 37°C, 3-5j et jusqu’à 3 semaines –> colonies crémeuses à muqueuses, beige-ocre
Identification :
- Auxanogramme des sucres
- Cryptococcus : capsule, sensible cycloheximide, uréase +
- neoformans : phénoloxydase +
Indirect : Ag circulant (LCR, LBA, sérum)
- Test d’agglutination sur billes de latex ou TDR par immunochromatographie –> Ag capsulaire GXM
Aspergillose pulmonaire invasive :
- Physiopathologie
- Facteurs favorisants
- Développement fongique dans le parenchyme pulmonaire, les bronches et les vaisseaux
- Facteurs favorisants : immunodépression sévère, chimioT, corticoT, granulomatose septique familiale, ATCD de pathologies pulmonaires
Teignes suppurées
Kérion du cuir chevelu
Wood -
T. mentagrophytes
Aspergillose pulmonaire invasive :
- Clinique
- Radio
- Evolution
Pneumopathie fébrile : fièvre > 39°C, résistance aux ATB large spectre > 4j, douleurs thoraciques, toux, dyspnée, hypoxie
TDM thoracique haute résolution :
- J0-J5 : signe du halo
- J10-J20 : signe du croissant gazeux = facteur de bon pronostic
Evolution : dissémination –> foie, coeur, rein, SNC, peau
Aspergillose infection : diagnostic
Direct :
- Examen direct : coloration au bleu de lactophénol ou MGG ou noir chlorazole –> filaments septés parfois ramifiés
- Culture : milieu de Sabouraud sans Cycloheximide avec ajout ATB (Gentamicine ou Chloramphénicol), 25-30°C
- Identification : Maldi-Tof
- Détection des marqueurs solubles : galactomannane, 1,3-beta-D-glucane par ELISA
- PCR : genre, espèce
- Antifongigramme : E-test
Indirect : Ac spécifiques anti-aspergillus par ELISA ou hémagglutination
Confirmation par WB
P. jirovecii : caractéristiques
Règne des champignons
Pas de culture
Pas d’ergostérol dans la paroi
Paroi riche en 1,3-beta-D-glucane
2 formes :
- Asques : formes infectantes, contient 8 ascospores
- Formes trophiques = végétatives : 2 formes (petite et grande)
Transmission : voie aérienne, interhumaine
Strictement humain
Aspergillome : ttt
- Chirurgie : exérèse truffe aspergillaire ou lobe
2. Si CI chirurgie ou en complément : AmB intracavitaire ou Itraconazole
Teignes tondantes microsporiques
Grandes plaques d’alopécie, cheveux cassés courts
Woods +
M. canis
Dermatophytes : diagnostic
Direct
Prélèvement : zone active des lésions, à distance d’un ttt
Examen direct (cheveux, poil, squame) : éclaircissement (KOH, bleu de lactophénol), coloration au noir de chlorazole –> filaments mycéliens septés arthrosporés + type de parasitisme piliaire
Culture : - Ensemencement sur 2 milieux : Sabour + ATB Sabour + ATB + Actidione - Identification : temps de pousse, aspect macroscopique, aspect microscopique dans le bleu de lactophénol, Maldi-Tof
Aspergillome intra-cavitaire :
- Physiopathologie
- Clinique
- Radio
- Colonisation et développement du champignon dans une cavité pré-existante en communication avec l’arbre aérien jusqu’à former une truffe aspergillaire
- AEG, fièvre résistante aux ATB, hémoptysies, toux, expectorations, douleurs thoraciques
- Signe du grelot
Aspergilloses invasives : ttt
Urgence thérapeutique
Ttt pré-emptif :
- AmB liposomale
- Caspofungine
Ttt curatif :
- Voriconazole ou AmB liposomale
- Caspofungine IV ou Posaconazole PO (si pas d’amélioration à J7)
C. neoformans : caractéristiques
- Basidiomycète
- 3 variétés, 5 sérotypes : Europe –> var neoformans sérotype D
- Saprophyte/tellurique (déjections d’animaux, bois mort), cospomolite
- Levure ronde entourée d’une capsule mucopolysaccharidique (glucuronoxylomannane)
- Reproduction asexuée : bourgeonnement, pas de pseudomycélium
- Opportuniste
- Neurotropisme
- Contamination : inhalation de spores infestantes
- MDO
Aspergilloses : morphologie
Appareil végétatif : moisissure à filaments cloisonnés hyalins –> filaments septés
Appareil reproducteur asexué :
- Conidiophore = tête aspergillaire + stipe
- Tête aspergillaire = vésicule + phialide + phialidospores
C. albicans : diagnostic
Superficielle :
- Prélèvement : grattage lésions, écouvillonnage, ongle
- Diagnostic de genre : examen direct (état frais), culture (Sabouraud + ATB)
- Diagnostic d’espèce : test de chlamydosporulation, test de blastèse, auxanogramme, spectro de masse, biologie moléculaire
Systémique :
- Hémocultures
- Biopsies
- ATFgramme
- Sérologie : Ac et Ag par ELISA
- Spectro de masse
Test de chlamydosporulation
Sur milieu pauvre PCB (PdT, carotte, bile)
Formation de chlamydospore et de pseudomycélium
Test de blastèse
Incubation à 37°C dans sérum de veau foetal
Formation tube germinatif + filaments vrais septés
C. albicans : ttt des candidoses systémiques
Ttt possibles
- Caspofungine ou Micafungine
- AmB liposomale
- Fluconazole
Ttt probabiliste : échinocandine +/- voriconazole si neutropénique
Puis relais par Fluconazole
Dermatophytes
- Morphologie
- Physiopathologie (peau et cheveux)
Morphologie : champignons filamenteux à mycélium septé
Physiopathologie : champignons kératinophiles, toujours pathogènes
- Peau : épidermophytie circinée et intertrigo
- Spores émettant des filaments –> dvpmt circulaire et centrifuge –> lésions arrondies
- Champignon actif sur le pourtour externe : couronne de vésicules ou de squames
- Cheveu ou poil : teignes
- Dvpmt du champignon à partir de l’ostium folliculaire du poil/cheveu
- Progression descendante centripète jusqu’au bulbe pilaire
- Croissance dans le sens de pousse du poil/cheveu
Diagnostic de la pneumocystose
Direct :
- Prélèvement : LBA++
- ED après coloration (association de 2 techniques) : asques/ascospores, formes trophiques :
- -> MGG : formes trophiques et ascospores
- -> Coloration argentique, bleu de toluidine : paroi des asques
- -> Fluorescence (coloration au calcofluor)
- -> IFI : AcMo dirigés contre le champignon
- Biologie moléculaire : ADN par PCR en tps réel
Indirect : antigénémie –> Ag soluble 1,3β-D-glucane
Examens complémentaires : gaz du sang –> hypoxie
P. jirovecii : physiopathologie
- Pneumonotropisme des trophozoïtes : prolifération au niveau des alvéoles
- Inflammation et hyperplasie des pneumocytes I –> exsudat endo-alvéolaire et épaississement de l’interstitium –> hypoxémie –> hypoxie tissulaire
P. jirovecii : clinique chez le VIH+
- Début –> triade : toux sèche + dyspnée fébrile d’intensité croissante + cyanose
- Tardif : sd interstitiel bilatéral péri-hilaire, aspect quasi-opaque en verre dépoli
Différences morphologiques entre les espèces de Dermatophytes
M. canis
- Microconidies : piriformes, rares
- Macroconidies : en quenouille, paroi épaisse échinulée
T. rubrum
- Microconidies : piriformes, en acladium
- Macroconidies : saucisse, paroi lisse
T. mentagrophytes
- Microconidies : rondes en buisson ou piriformes en acladium
- Macroconidies : en massue, paroi lisse mince
- Mycélium septé à angle droit
- Vrilles
Types de parasitismes piliaires + différences
Ecto-endothrix :
- Microsporique (M.canis): petites spores compactes, non dissociables au KOH
- Microïdes (T. mentagrophytes) : petites spores, dissociables au KOH
Endothrix :
- Trichophytiques (T. rubrum) : forte multiplication
- Faviques : faible multiplication
Teignes : ttt
Griséofulvine + topique (imidazolé, ciclopirox)
4-8 semaines
Intertrigos à Dermatophytes : ttt
Topique imidazolé/terbinafine
1-3 semaines
Dermatophytose peau glabre et plis : ttt
Topique imidazolé/terbinafine
2-6 semaines selon la localisation
Onyxis à Dermatophytes : ttt
- Sans atteinte de la matrice : vernis (amorolfine, ciclopirox) 3-6 mois
- Avec atteinte matrice : vernis + terbinafine PO 3 mois pour les mains, 6 mois pour les pieds
Dermatophytes : cliniques
Peau glabre et plis
- Epidermophyties circinées –> mains, lèvres
- Intertrigos –> axillaire, pied d’athlète…
- Dyskératoses
Cheveu et cuir chevelu
- Teignes tondantes microsporiques
- Teignes suppurées
Poil : lésions folliculeuses pustuleuses –> ostio-folliculite, sycosis de la barbe
Ongles : onychomycoses
