Methode etude clonage Flashcards

1
Q

def

A

insérer un ou des fragment(s) d’intérêt dans l’ADN génomique purifié d’un élément génétique autoréplicatif (virus ou plasmide)

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2
Q

but

A

obtenir un grand nombre de copies absolument pures d’une séquence donnée d’ADN

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3
Q

principe

A

Sélection d’un clone bactérien recombinant (vecteur + ADN) parmi
un ensemble de clones bactériens (banque ou « Library »)

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4
Q

Principe du clonage

organisme donneur et vecteur

A

-> ORGANISME DONNEUR
Purification et coupure de l’ADN en fragments (1 ou plusieurs fragments d’intérêt)
-> Insertion individuelle de chaque fragment d’ADN dans une molécule vecteur
-> VECTEUR
Transporteur d’ADN / Fragment d’ADN capable de réplication autonome

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5
Q

principe clonage

obtention

A

-> Obtention de l’ADN recombinant
Nouvelle combinaison de l’ADN d’un génome donneur avec le vecteur qui peuvent être d’origines complètement différentes
-> Transfert dans une cellule hôte
Multiplication du fragment d’ADN

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6
Q

quels type fragment adn

obtenu comment

A
  • ADN génomique (séquençage complet d’un génome)
  • Séquence d’intérêt dans l’ADN génomique
  • Produit PCR
  • ADNc après transcription inverse des ARNm
    Obtention à partir d’une digestion enzymatique:
  • enzymes de restriction
  • sauf pour insertion « ADNc entier »
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7
Q

propriété vecteur

A
  • réplication active dans la cellule hôte indépendamment de l’ADN de la cellule hôte (de manière épisomale): origine de réplication
  • taille compatible avec insertion de grands fragments et manipulation aisée des recombinants
  • sélection des cellules qui l’ont incorporé: marqueur de sélection
  • stable dans l’hôte
  • sites uniques de coupure par les enzymes de restriction
  • sites multiples de clonage: « polylinker »
  • multiplication sans effet sur l’hôte
  • purification simple
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8
Q

EX vecteur Plasmide

A

ADN circulaires extrachromosomiques (< 3Kb), réplication indépendante dans les bactéries; insert de 0.2 à 4kb (10 max). Il a :

  • une orgine de replication
  • un site d’insertion multiple
  • des marqueurs de selection : gene LacZ et Gene de résistance a l’amplicilline
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9
Q

CHOIX DE LA CELLULE HÔTE

hote bacteriens

A

Avantages: multiplication rapide, faciles à manier, peu coûteux
E Coli = la plus utilisée

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10
Q

CHOIX CELLULE HOTE

hote eucaryote

A

Cellules de Mammifères, levures, plantes…
Intérêt pour la production de protéines devant subir des modifications post-traductionnelles (ex. glycosylations) non réalisées par les bactéries.

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11
Q

differente etape clonage

A
  1. Préparation du fragment d’ADN à cloner
  2. Préparation du fragment d’ADN et du vecteur
  3. Réalisation de l’ADN recombinant: insert + vecteur
  4. Transformation des bactéries
  5. Sélection des bactéries
    5 bis . Sélection des bactéries : système « opéron lactose »
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12
Q

1ere etape clonage

preparation du fragment d’ADN a cloner

A
  • Fragment d’ADN génomique : digestion enzymatique (enzymes de restriction) pour l’obtention du fragment d’ADN => extrêmités cohésives; digestion totale ou ménagée
  • Obtention de l’ADNc par transcription inverse à partir d’ARN
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13
Q
  1. Préparation du fragment d’ADN et du vecteur
A
  • Coupure du fragment d’ADN et du vecteur par la même enzyme : extrêmités
    cohésives compatibles
  • Traitement du plasmide par la phosphatase alcaline :
    => Étape de déphosphorylation des extrêmités
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14
Q
  1. Transformation des bactéries
A

L’ADN recombinant est introduit dans les bactéries traitées spécialement le plus souvent par choc thermique ou par choc électrique (électroporation) ou par lipofection (complexe lipidique cationique = liposomes )

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15
Q
  1. Sélection des bactéries

+ systeme operon lactose

A

Bactéries + plasmide vide : Lac Z sans insert donc beta galactosidase active donc X gal clivé donc colonie bleu

Bactéries + plasmide recombinant :
beta galactosidase inactive donc colonie blanche

Bactéries vides => élimination par ATB (contrairement a ceux avec plasmide qui ont le gene resistant au ATB)

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16
Q

Tranfection transitoire cellule eucaryote

A
  • Pas d’intégration
  • Expression transitoire
  • Pas de transmission aux cellules filles
  • Pas de contrôle de l’expression
  • Sélection par insertion gène rapporteur
  • Manipulation de l’ADN inséré (circulaire)
17
Q

transfection transitoire cell eucaryote

application

A
  • étude KO ou siRNA;

- production de protéine recombinante à faible échelle

18
Q

transfection stable cell eucaryote

A
  • Intégration dans le génome de la cellule hôte
  • ADN linéaire
  • Expression durable
  • Sélection par insertion marqueur de sélection
  • Complexe à réaliser, insertion aléatoire
19
Q

transfection stable cell eucaryote

application

A
  • Production à grande échelle
  • Études de régulation/pharmacologie à long terme
  • Thérapie génique