Methode etude biologie moléculaire Flashcards

1
Q

hybridation

A
  • Propriété fondamentale des acides nucléiques (ADN ou ARN) simple brin à s’apparier ou s’hybrider avec un brin anti-sens pour former une molécule double brin
  • Basée sur la complémentarité des bases G-C et A-T
  • Obtention d’une information (présence, taille) sur une séquence cible au sein d’une population complexe de molécules d’ADN d’une cellule ou d’un extrait biologique
  • Détection par une molécule complémentaire à la séquence cible appelée sonde
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

denaturation

A
  • Réversible

* Chaleur, pH, solvants organiques (urée, formamide)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Notion de Tm

A

temperature ou 50 % des ADN sont dénaturé

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

appariement

A
  • duplex formé: ADN/ADN, ADN/ARN, ARN/ARN
  • homoduplexes/hétéroduplexes
  • complémentarités ≠ 100%
  • support solide/liquide
  • stringent : favorable a appariement homo
  • pas stringent pas favorable a appariement homo
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

Enzymes de restriction

A
  • Fragmentation de l’ADN double brin
  • Coupure spécifique et reproductible
  • Site de restriction : soit a bout franc soit aux extremité cohesive
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

SOUTHERN BLOT

A

Analyse qualitative et semi-quantitative de séquences d’ADN génomique :
principalement mise en évidence des grands remaniements
1- Isolement ADN
2- digestion enzymatique
3- separation fragments en fonction de leur taille
4- denaturation
5- transfert sur support solide gel-> membrane
6- Hybridation
7- Revelation

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

NORTHERN BLOT

A

. Détection de molécules d’ARN spécifiques dans un mélange d’ARN à partir de tissus ou de cellules
. Purification des ARN totaux ou ARN polyA+
. Séparation par électrophorèse en fonction de la taille: conditions dénaturantes
. Destruction des structures secondaires

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

Nothern blot

application

A

analyse qualitative (taille, nature des transcrits en fonction du stade du développement, spécificité tissulaire…; intermédiaires de maturation; anomalies d’épissage) et semi-quantitative des ARN

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

PCR

A

. Obtention d’une séquence cible délimitée par un couple d’amorces
spécifiques de l’ADN d’intérêt (taille des amorces)
. Comprend 3 étapes répétées durant n cycles (en général 30-40):
étape1 : dénaturation ≈ 95°C
étape 2 : hybridation des amorces ≈ 50-60°C
étape 3 : extension (ou élongation) par l’ADN polymérase ≈ 72°C

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

PCR propriete

A

réaction enzymatique en chaîne
spécifique
exponentielle => 2^n copies (n= nb cycles)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

Trois premiers cycles de la PCR :

A

Amplification exponentielle des fragments d’ADN dont les extrêmités correspondent aux
séquences des amorces (= produits PCR ou amplicons):
- Spécificité de la réaction liée aux amorces : une amorce ou primer s’hybride sur le brin sens de la matrice, l’autre amorce s’hybride sur le brin anti-sens (forward/reverse)
- L’orientation des amorces respecte le sens de l’élongation par l’ADN polymérase (5’ -> 3’)
- Amplification exponentielle des
fragments d’ADN

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Technique de Sanger

but

A

Déterminer l’ordre d’enchaînement des nucléotides d’une séquence d’ADN

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

technique sanger

a partir de quoi

A
  • Réalisation à partir d’un fragment d’ADN qui servira de brin matrice pour la synthèse du brin complémentaire : obtention du brin matrice par PCR (ou clonage)
  • Taille des fragments séquencés: environ 500 pb et < 1000 pb
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

technique sanger mecanisme

A

• Incorporation aléatoire de ddNTPs (radioactifs, fluorescents) ce qui provoque l’arrêt de l’élongation et qui permet le marquage de l’extrêmité 3’ du brin d’ADN
en cours de synthèse
• Le marquage de l’extrêmité du fragment synthétisé par le ddNTP permet d’identifier le nucléotide
• Lecture de la séquence: correspond en réalité à la lecture du dernier nucléotide incorporé
• Reconstitution de la séquence après électrophorèse des fragments synthétisés en fonction de leur taille

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

interpretation Sanger

A

Mutation hétérozygote
2 pics sur la même position

Mutation homozygote
Un seul pic avec changement de
base

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

RT PCR « reverse transcription PCR »

A
ARN 
->Transcriptase inverse
Amorces aléatoires ou spécifiques ADNc 
-> ADN polymérase / dNTPs / Amorces spécifiques
Produit PCR
17
Q

RT PCR application

A
  • RT PCR en temps réel
  • Séquençage
  • Clonage dans des vecteurs d’expression
18
Q

Restriction Fragment Length Polymorphism

« PCR RFLP »

A

recherche d’une mutation qu’on connait
on applique enzyme de restriction qui coupe sur l’endroit de la mutation
ex : mutation qui abolit site de restriction
si ADN sauvage = ca coupe
ADN muté = ca coupe pas
sauvage : coupe pareil sur les 2 brins => 2 bandes en southern
heterozygote => 3 bandes
homozygote => 1 bande

19
Q

Analyse de fragments

permet

A

Mise en évidence de courtes ins/del

  • détection d’un polymorphisme = nombre de répétitions d’un dinucléotide
  • analyse des microsatellites dans les tumeurs
20
Q

Analyse de fragment

etape de réalisation

A
  • amplification de la région à analyser (contenant le site polymorphe)
  • utilisation d’amorces fluorescentes
  • électrophorèse en gel capillaire
  • détection des fragments marqués dans un séquenceur => pics
  • possibilité d’analyser plusieurs sites polymorphes en même temps
21
Q

(RT) PCR en temps réel

A

A chaque cycle une fluorescence est émise
Le résultat d’une PCR en temps réel
est représenté graphiquement sous forme de courbes sigmoïdes.
Chaque courbe correspond à un échantillon
Elle représente la mesure de la
fluorescence (Sybr green©) de cet échantillon à chaque cycle de PCR.

22
Q

PCR temps reel cycle seuil

A

cycle seuil au moment où le signal s’écarte significativement de la valeur du bruit de fond; Ct inversement proportionnel à la quantité d’ADN (ou ADNc) de départ

23
Q

Application PCR temps réel

A

PCR quantitative
ADN= Détermination du nombre de copies d’un gène (délétion, duplication, amplifications
géniques)
ARN= quantification des transcrits (relative ou absolue => gène de référence ou gamme étalon)

24
Q

PCR en temps réel et mutations

A
discrimination allélique par sondes 
fluorescentes: mise en évidence de 
mutations connues grâce à deux
sondes fluorescentes spécifiques de la séquence non mutée 
(« sauvage ») ou mutée

détection des signaux de fluorescence spécifiques du
génotype au cours de la PCR : chez les individus hétérozygotes on observe les 2 types de fluorescence

25
Q

PCR en temps réel avantage

A
Méthode de génotypage 
- rapide
- ciblée 
- adaptée pour un nombre limité 
de mutations dans un gène donné
- très utilisée en diagnostic