Examen de laboratoire - Dermatologie / Vénérologie Flashcards

1
Q

Quels type d’agent infectieux peut-on trouver avec un prélèvements superficiels ? 4

et ce qu’on cherche à voir ?

  1. 3
  2. 3
  3. 2
  4. 2
A
  1. Agents infectieux mycologiques
    1. Filament mycélien :
    2. Recherche de levures
    3. PMN /spores / Coques et bâtonnets
  2. Agents infectieux bactériens
    1. Flore / pathogènes courants: gram/culture
    2. Gonocoques : gram, culture
    3. Identification tréponème pâle : microscope fond noir, PCR
  3. ​Agents infectieux parasitaires
    1. Gale : test à l’encre, squames
    2. Leishmaniose cutanée : empreinte + MGG
  4. Virus :
    1. Immunofluorescence directe
    2. PCR
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2
Q

Les différents types de prélèvements superficiels (13)

A
  1. Biopsie
  2. Culture
  3. Frottis
  4. Blankophor
  5. PCR : 24-48h
  6. IF directe (recherche virale) : 60 min, assez rapide, bonne spécificité mais sensibilité moins bonne
  7. IF directe (recherche d’autoimmunité)
  8. Sérologie
  9. Immuno-sérologie (recherche d’autoimmunité)
  10. Microscopie électronique
  11. Western Blots
  12. ELISA
  13. Dosage métaboliques …
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3
Q

Examens complémentaires suspicion HSV (2)

A
  1. en premier IF direct –> + rapide env 60min
    si negatif alors :
  2. PCR
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4
Q

Examens complémentaires lésion syphilitique (2)

A
  1. Examen fond noir : via l’exsudat entre lame et lamelle –> mobilité du tréponème visible pour attester lésion syphilitique
  2. PCR Treponema pallidum : via génome, 24-48h —> notamment syphilis primaire encore non bruyante
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5
Q

Examen complémentaire urétrite à gonocoque 3

A
  1. Frottis => Gram
  2. Culture recommander pour antibiogramme
  3. PCR

Diplocoque G- (fuchsia) intracellulaire (PMN)

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6
Q

Examens complémentaires Leishmaniose 2

A
  1. Frottis pour gram - Coloration May Grundwald Giemsa –> microscope
  2. Biopsie déposée sur lame et le reste au formol : coloration spécifique –> corps de Leishman, leucocytes…
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7
Q

Examens complémentaires lésions mycotiques

A
  1. Blankophor : micelles visibles
    + Na2S : dissocie les liaisons disulfutres kératines –> permet au blankophor d’accéder aux champignons
  2. Culture : 8-10j, sur milieu riche
    PUIS 2nd culture pour identification morphologie grâce aux spores –> doit stresser = changer boite
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8
Q

Clinique gale (sarcopte) 2 et EC 2

A
  1. Lésions papuleuse
  2. Prurit généralisé principalement nocturne (épargne le visage)
  3. Encre de chine –> sillon scabieux
  4. Examen direct sur prélèvement de squames avec oeufs
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9
Q

Clinique punaise de lit clinique 4

A
  1. Pique surtout la nuit
  2. avec +/- tâches de sang sur les draps
  3. Prurit érythémateux
  4. Lésions maculo-papuleuses avec point hémorragique
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10
Q

Méthode immunofluorescence directe 3

A
  • Biopsie péri-lésionnelle
  • Coupes congelées, incubée avec un anticorps fluorescent
  • puis examen microscope
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11
Q

But IF directe

A

Mettre en évidence et caractériser les auto-anticorps déposés au niveau de la peau = Ac épidermique in vivo

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12
Q

Exemple d’IF direct : spécificités :

  1. Pemphigus
  2. Dermatite herpétiforme
  3. Lupus
  4. Pemphigoïde
A
  1. dépôt des Ig en maille de fillet (IgG intercellulaire)
  2. dépôt papillaire épidermique (IgA)
  3. dépôt JDE plus granulaire (IgM, IgG, +/- IgE et C3)
  4. dépôt JDE moins granulaire, linéaire (IgG)
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13
Q

Méthode immunosérologie 3

A
  1. IF indirecte (via fluorochrome)
  2. Méthodes enzymatiques :
    1. ELISA,
    2. immunoblot
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14
Q

But immunosérologie

A

Identification, classification, dosage des auto-anticorps circulants = sériques

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15
Q

Méthode IF indirecte

A

Coupe de tissu puis lecture au microscope : consiste en la réalisation sur peau normale clivée = antigène (peau humaine témoin, oesophage de singe, vessie de rat) d’un examen du sérum du patient à la recherche d’autoanticorps circulants dirigés contre la membrane basale de l’épiderme

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16
Q

Méthode ELISA

A

Utilise des antigènes / protéines purifiés ou recombinants comme substrats (BP180 par ex.) sur lesquels est incubé le sérum des patients.

Les anticorps du sérum sont ensuite révélés par un procédé enzymatique.

17
Q

Technique immunoblot

A

Echantillons protéiques sont déposés sur un gel d’électrophorèse séparés selon leurs caractéristiques de migration

Une fois migrées : transférées sur une membrane qui peut être composée de nitrocellulose ou de polyfluorure de vinylidène (PVDF)

Détection : appliquer sur la membrane des anticorps marqués spécifiques des protéines que l’on veut observer. On pourra ainsi observer leur position sur le gel.

18
Q

Types de maladies bulleuses (4) et cible des Ac

A
  • Pemphigus vulgaire : Ag attaqué = desmogléine 3 (entre les kératinocytes) => clivage le plus superficiel
  • Pemphigus foliacé : attaque de desmogléine 1 (aussi entre les kératinocytes)
  • Pemphigoïde bulleuse : attaque de BP180 et 230 à perte de liaison de la lame basale
  • Pemphigoïde cicatricielle : attaque de laminine 5 et collagène 7 –> perte de liaison de la lame basale