Cours 9 : Analyse de l'ARN Flashcards

1
Q

Vrai ou faux. Dans tous les organismes, l’ARNm est très instable.

A

Faux. Chez les eucaryotes, l’ARNm est stable. Par contre, chez les procaryotes, l’ARNm est instable et possède une courte demi-vie.

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2
Q

Nommez les modifications post-transcriptionnelles de l’ARNm chez les procaryotes et les eucaryotes.

A

Procaryotes : aucune

Eucaryotes : Coiffe 5’, Queue polyA 3’, épissage : introns/exons

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3
Q

Comment se nomme l’enzyme qui dégrade l’ARN?

A

RNase

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4
Q

Quelles précautions peut-on prendre pour ne pas contaminer l’ARN?

A
  • Matériels RNase-free (Plastique jetable, verrerie à 180° pendant 8h, traitement au DEPC, RNase away)
  • Espace réservé
  • Gants
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5
Q

Quelle proportion de l’ARN total contient de l’ARNm?

A

1-5%

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6
Q

Expliquez le principe d’isolation des ARNm, polyA+

A

Ce principe s’applique aux eucaryotes, qui ont des ARNm possédant des queues polyA en 3’. On peut donc mettre sur des billes, résines ou colonnes une queue poly-T, pour purifier les ARNm et les éluer par la suite.

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7
Q

Nommez les 5 étapes d’une hybridation de type nothern avec de l’ARN

A

1) Extraction d’ARN
2) Electrophorèse (10ug)
3) Transfert sur membrane
4) Hybridation (Sonde)
5) Révélation

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8
Q

Quelles sont les étapes d’une protection à la RNase et le but de la procédure?

A

Le but est de détecter un ARNm spécifique.

1) Hybridation + sonde.
2) Protection : Digestion à la RNase (Si hybridation= protection)
3) Électrophorèse et détection

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9
Q

Quel est l’outil le plus puissant, sensible et quantitatif pour la détection du niveau d’ARN?

A

q-RT-PCR

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10
Q

Lors de l’isolation de l’ARN total, on effectue une centrifugation pour séparer la phase aqueuse de la phase organique. Dans quelle phase se retrouve l’ARN?

A

Dans la phase aqueuse.

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11
Q

Quel ratio A260/A280 va-t-on obtenir en faisant une extraction d’ARN total? (si elle a fonctionné)

A

2.0

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12
Q

Nommez les 6 utilisation de l’ARN.

A

1) ARNm (Sélection de polyA+)
2) Protection à la RNAse
3) Hybridation de type Northern
4) RT-PCR
5) Extension d’amorce : primer extension
6) Transcriptome RNA-seq

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13
Q

Quelles sont les application de l’hybridation de type nothern?

A

Détection : Révéler la présence de molécules d’ARN spécifiques, localiser l’ADN ou sa distribution, détecter les différentes formes d’épissage des ARN

Quantification: Déterminer l’abondance, mesurer l’expression, comparer l’expression

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14
Q

Quel est le but de la protection à la RNase?

A

Détecter un ARNm

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15
Q

Qu’est ce qu’on peut avoir comme information sur l’ARN après la RT-PCR?

A
  • Détection d’un gène à partir de peu de molécules d’ARN

- Expression absolue (courbe standard) ou relative (ratio vs contrôle interne); qualitatif et quantitatif

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16
Q

Qu’est ce qu’on a besoin pour faire une RT-PCR en 1 étape?

A

Tous les réactifs pour la RT et la PCR

1) Amorces spécifiques + RT + ADN polymérase +autres

17
Q

Qu’est ce qu’on a besoin pour faire une RT-PCR en 2 étapes?

A

1) RT : Amorces aléatoires + RT + autres = cDNA

2) PCR : Amorces spécifiques + ADN polymérases + autres

18
Q

Quel est le but de la q-RT-PCR?

A

Quantification d’un ARN dans un échantillon (nombre de copies).

19
Q

Nommez 4 applications de la RT.

A

1) Biologie moléculaire
2) Expression de gènes
3) Quantification
4) Diagnostic

20
Q

Les ARNr et ARNt sont des ARN non codants. Sont-ils régulateurs ou non régulateurs?

A

Non régulateurs

21
Q

Les petits ARN ont-ils un impact au niveau de la transcription ou de la traduction? Quel est cet impact?

A

Activation ou inhibition de la traduction.

22
Q

On dit que les sRNA sont aidés par une autre protéine. Quelle est cette protéine?

A

Chaperone Hfq

23
Q

Expliquez comment fonctionne le processus d’interférence par ARN: ARNi.

A

Le RNAi a une activité de dégradation double brin. Il va se lier au complexe RISC. Ce dernier va scanner l’ARNm, et le dégrade si la séquence du RNAi est reconnue.

24
Q

Pourquoi utiliserais-ton le RNAi?

A

Pour prévenir l’expression de gènes (gene silencing) : Analyse de la fonction d’un gène, outil de recherche, analyse de la voie métabolique, redondance, thérapie…

25
Q

Que veut dire Cas?

A

Crispr associated genes

26
Q

Où peut-on insérer de nouvelles séquences spacer dans le système CRISPR-Cas?

A

Dans la région leader

27
Q

De quoi sont dérivées les séquences uniques dans le génome bactérien?

A

De génomes viraux.

28
Q

Expliquez le mécanisme de CRISPR

A
  1. Les CRISPR sont transcrits en ARN.
  2. Ces ARN sont découpés en ARN plus petits, les unités répétées servant de sites de reconnaissance pour la coupure = crRNA
  3. Certains intervalles (spacers) sont complémentaire d’ADN viraux ou plasmidiques
  4. En s’hybridant avec leur cible (guide RNA) les crRNA déclenchent la dégradation à l’aide des Cas ou un arrêt de la traduction des ARNm du génome étranger..
  5. Cette coupure réduit ou annule le pouvoir infectieux des phages ou plasmides.
29
Q

Nommez les 3 étapes de CRISPR-Cas (expliquez les un petit peu aussi)

A
  1. Adaptation (Phage infecte et on prend un peu de son ADN qu’on va insérer dans les séquences CRISPR : PAM)
    2-Biogenèse (petits crARN vont être transcrits et contiennent l’ARN étranger : seront associés avec Cas)
    3- Interférence (Scan de l’ADN, reconnaissance et clivage)
30
Q

Vrai ou faux. Il n’existe qu’un seul type de CRISPR.

A

Faux! Il y en a plusieurs types

31
Q

Quelles sont les applications de CRISPR-Cas aux bactéries?

A
  • Typage de souches : Évolution

- Vaccination (souches résistante aux phages) Industries alimentaires (lait, fromage, vin)

32
Q

Qu’est ce que l’ARNguide et son utilité?

A

C’est une fusion du tracrARN et du crARN (simple) + Cas9.

On peut donc choisir où on veut couper, même dans les cellules de mammifères!

33
Q

Vrai ou faux. Une coupure double brin est létale chez les bactéries.

A

Vrai.

34
Q

En 2016, quelque chose a été élaborer pour contrer le fait que les cassures doubles brin sont létales chez les bactéries et pouvoir faire de l’édition de génome. Qu’est ce que c’est?

A

On a ajouté une recombinase!

Ainsi, on a Cas9+ gRNA + recombinase + ADN recombinant = édition de génome.

35
Q

En utilisant CRISPR-Cas9 comme antimicrobien, qu’est ce qu’on cible?

A
  • Un gène (résistance ou virulence)
  • Un processus cellulaire
  • Une bactérie spécifique = microbiote intact!