Valid/vérif et contrôle de qualité Flashcards

1
Q

Nomme les 5 types de méthodes d’analyse et une petite description de chacune.

A

-Routine : courant en laboratoire, simple, + sujette à l’erreur

-Référence : valider méthodes de routine, établir valeur du matériel de référence (ex: calibrateurs commerciaux 2aire)

-Définitive : complexe et peu accessible (ID-MS), déterminer vraie valeur d’un analyte, établir valeur du matériel de référence primaire

-Normalisée : approuvées par Santé Canada, utilisée dans domaine d’application attendue, donné par manufacturier

-Non-normalisée : non-approuvées par santé Canada (in-House) ou normalisées mais utilisées en-dehors du domaine d’application/modification (ex : matrices non-approuvées, modif intervalles de mesure, réactif third party)

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2
Q

Pourquoi faire une évaluation de méthodes?

A

Combler un besoin des cliniciens
Modifier méthode actuelle à cause de plusieurs facteurs:
-délais
-disponibilité
-coûts
-performance
-modif de la formulation d’un réactif par manufacturier

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3
Q

Quels sont les processus d’évaluation de méthodes?

A

1.Caractérisation du besoin clinique (clientèle visée, spécialité médicale, délais pertinents, échantillons, fréquence d’exécution, performance clinique et coûts impliquées)

2.Plannif d’évaluation de méthode (pour définir besoins matériels et objectifs de performance)

3.Mesure des paramètres de performance analytique

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4
Q

Quels sont les principaux éléments à regarder lors du processus d’évaluation de méthodes (paramètres de performance analytique)?

A

-Imprécision
-Exactitude (biais)
-Intervalle de mesure et linéarité
-Détermination sensibilité analytique
-Erreur totale et incertitude de mesure
(+spécificité analytique, susceptibilité aux interférences, objectifs de performance analytique, valeurs de référence)

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5
Q

Nomme et décrit les 3 paramètres à calculer pour déterminer l’imprécision.

A

-Répétabilité : intra-série (within-run), capacité d’obtenir même résultat lors de mesures successives du même échantillon par la même méthode dans les mêmes conditions

-Fidélité intermédiaire : intra-lab (within-lab), capacité d’obtenir même résultat lors de mesures successives sur plusieurs jours du même échantillon par la même méthode dans les mêmes conditions

-Reproductibilité : capacité d’obtenir même résultat lors de mesures successives du même échantillon par la même méthode dans des conditions différentes

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6
Q

Comment déterminer une imprécision lors de validation?

A

20x2x2:
-20 jours
-2 séries d’analyse par jour en duplicata
-2 niveaux de concentration dont 1 proche du seuil de décision clinique
-modifier ordre d’analyse des échantillons entre série
-CLSI EP05-A3

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7
Q

Comment déterminer une imprécision lors de vérification?

A

5x5:
-5 jours
-1 séries d’analyse par jour avec 5 réplicats
-2 niveaux de concentration dont 1 proche du seuil de décision clinique
-modifier ordre d’analyse des échantillons entre série
-CLSI EP15-A3

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8
Q

Quel est le calcul de la répétabilité?

A

Sr= √ ( (∑(d=1)^D x ∑(r=1)^n x〖(Xdr-Xmoy)〗^2 ) / (Dx(n-1)) )
D= nombre de jours
n=nombre de réplicats
Xdr=résultat du réplicat r sur journée d
Xmoy = moyenne de tous les réplicats sur jour d

à faire pour chaque niveau de concentration

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9
Q

Quel est le calcul de l’imprécision intra-lab ou intra-instrument?

A

St = √(〖Sdd〗^2 +〖Srr〗^2 +〖Sr〗^2)
St = écart-type intra-lab ou intra-instrument
Sdd = écart-type inter-jour
Srr=écart-type inter-routine
Sr = répétabilité

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10
Q

Qu’est-ce que l’évaluation de l’exactitude?

A

-Comparaison résultats de la méthode en évaluation avec méthode de référence pour plusieurs échantillons de concentrations variées
-Analyse de matériels pour les valeurs sont certifiées

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11
Q

Nomme les étapes pour faire une étude de récupération/vérification.

A
  1. 2 pool de sérum avec conc différente (échantillons base)
  2. préparation d’une solution concentrée de l’analyte
  3. à chacun des pools de base, on ajoute solution concentrée
  4. dose différentes solutions et calcul % récupération (moy 4 par solution)
  5. calcul de la récupération moyenne de tous les niveaux de concentration pour déterminer biais et nature de l’erreur systématique (constante ou proportionnelle)
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12
Q

Quels sont les étapes pour déterminer une exactitude avec une méthode reconnue.

A

1- minimum 40 échantillons au total analysés en duplicata sur au moins 5 jours
2- inverser ordre analyse des échantillons entre chaque série
3- analyse avec nouvelle et ancienne méthode (délai max 4 heures entre les 2 méthodes)
4- distribution homogène des niveaux de concentration idéalement 50% à l’extérieur des valeurs de référence
5- déterminer coefficient de corrélation de la droite de régression et des paramètres de la droite (pente, ordonnée à l’origine, écart-type)

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13
Q

À quoi sert chacun des paramètre de la droite de régression dans la détermination de l’exactitude avec une méthode reconnue?

A

-Coefficient de corrélation (r): doit servir qu’à valider l’analyse par régression linéaire (r ≥ 0,975 est correct)

-Pente: donne une estimation du biais systématique proportionnelle

-Ordonnée à l’origine: donne un estimé du biais systématique constant

-Droite de régression (y=ax+b): peut être utilisé pour déterminer biais systématique à un niveau donné de concentration

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14
Q

Qu’est-ce qu’une étude de corrélation?

A

-Régression linéaire où x= mesures de référence et y = mesures de la méthode en évaluation
-Donne un graphique de corrélation avec pente, ordonnée à l’origine, droite de régression et coefficient de corrélation.

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15
Q

Est-ce qu’un coefficient de corrélation de 1 indique que la régression est bonne?

A

Non
-r=1 indique seulement que la corrélation est parfaite, peu importe où sont les points sur la droite (ex : tous les résultats sont systématiques le double)
-N’indique rien en ce qui concerne l’erreur systématique entre les deux variables (indique seulement le degré d’association)

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16
Q

Quelles sont les faiblesses de la droite de régression et comment faire pour pallier à ces problèmes?

A

-Coefficient de corrélation très sensible à l’intervalle des valeurs étudiées
-Plus intervalle grand et plus r sera élevée
-Pour palier ont fait graphique de différences (Bland-Altman)

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17
Q

Qu’est-ce que le coefficient de détermination?

A

Mesure de la proportion de la variation de y qui s’explique par la variation de x dans l’équation de régression y=ax+b

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18
Q

Qu’est-ce que l’écart-type résiduel et comment le calculer ?

A

-ET entre valeurs mesurées et valeurs prédites par la droite de régression (décrit distribution/dispersion des points autour de la droite)
-plus résiduel élevé = plus on varie autour de la droite
-Ex : 68,3% des points seront localisée à l’intérieur de Ŷ ± SYX

Syx= √ ( ( ∑〖(MoyY-Yp)〗^2 ) / (N-2) )
MoyY = moyenne des résultats mesurées en duplicata
Yp= valeur prédite selon la régression linéaire

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19
Q

Nomme les différents types de régression linéaires et les décrire.

A

-Régression linéaire simple : assume qu’il n’y a pas d’erreur de mesure en x et que l’erreur en y est constante sur l’ensemble de l’intervalle de mesure.

-Régression Deming : méthodes x et y assujetties aux erreurs, méthodes comparées sont semblables et sans données aberrantes (outlier), méthodes de choix

-Régression Passing-Bablok : méthode x et y sont sujettes aux erreurs, régression non-paramétrique plus résistante aux outiliers

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20
Q

Qu’est-ce que le graphique de différences Bland-Altman et comment peut-il être fait?

A

-Met en évidence la différence qui existe entre chacune des paires de données x et y

-Différence peut être en absolue ou relative

-Calculée par rapport à x ou par rapport à la moyenne obtenue par les deux méthodes (si aucune des deux n’est la méthode de référence)

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21
Q

Qu’est-ce que permet le graphique de Bland-Altman?

A

-Permet d’observer l’erreur systématique de la méthode en évaluation
-Permet aussi de détecter facilement les erreurs aléatoires contrairement au graphique de corrélation

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22
Q

Que permet de déterminer les études de comparaison/corrélation?

A

-Permet de déterminer biais moyen analytique entre deux méthodes que l’on peut ensuite comparer à des cibles de performance déjà établies (littérature, maufacturier, biais acceptable selon variabilité biologique)

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23
Q

Qu’est-ce que l’intervalle de mesure et linéarité? Comment est-ce déterminé?

A

-Intervalle de concentration ou il y a une relation directement proportionnelle entre signaux mesurées par une méthode et sa concentration
-Déterminé par dilutions sériées d’un échantillon de concentration très élevé ou par mélange en diverses proportions d’un pool haut et bas (en duplicata).

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24
Q

Comment techniquement faire une intervalle de mesure et comment détecter la linéarité?

A

-Pour vérification : 5-7 concentration à l’intérieur de l’intervalle de mesure connu

-Pour validation : 7-11 concentrations dépassant 20-30% l’intervalle de mesure anticipée

-Faire graphique concentration en fonction du signal (absorbance) et déterminer la linéarité par inspection visuelle

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25
Q

Qu’est-ce que la détermination de la sensibilité analytique? Elle dépend de quels facteurs?

A

-Déterminer le seuil de concentration en deçà duquel le résultat sera rapporté étant plus petit que x.

-Dépend de 2 facteurs : intensité signaux analytiques témoins (blanc) et précision des mesures témoins

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26
Q

Qu’est-ce que la limite du blanc (LOB) et comment l’obtenir?

A

-Concentration statistiquement la + élevée que peut être observé par le blanc

-20 mesures du blanc (60 pour valid) et pas plus de 5% des résultats ne devraient excéder la limite du blanc connue.
-Si gaussienne = limite blanc = moyennebl + 1,65 x ETbl.
-Si pas gaussienne, place valeurs en ordre croissant et on prend la valeur qui correspond au 95e percentile.

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27
Q

Qu’est-ce que la limite de détection (LOD) et comment l’obtenir?

A

-+ petite concentration qui peut être détectée de manière fiable (max 5% des mesures en bas de la limite du blanc)

-Analyse échantillons (vérif=20 et valid=60) avec concentration au plus 4 fois la limite du blanc
-95% devraient être plus élevé que la limite de blanc connue
- Si gaussien = limite de détection = limite de blanc + 1,65 / (1-1/4F) x ET
(ou F= nombre de résultats-nombre d’échantillons)
-Si pas gaussienne, place valeurs en ordre croissant et on prend la valeur qui correspond au 95e percentile

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28
Q

Qu’est-ce que la limite de quantification (LOQ) et comment l’obtenir?

A

-+ petite concentration qui peut être détectée de manière fiable et que l’erreur totale rencontre l’exactitude requise

-Analyse quelques échantillons (vérif = 25 et valid =40) ayant concentration similaire à limite de quantification proposée.
-95% devraient être dans la limite de l’erreur totale

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29
Q

Qu’est-ce que la sensibilité fonctionnelle?

A

-+ petite concentration pour laquelle la répétabilité ne dépasse pas les normes établis
-Habituellement: CV ≤ 15-20% (≤10% pour troponine)

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30
Q

Qu’est-ce que l’erreur totale et comment la calculer?

A

-Attribuable aux erreurs systématiques ET erreurs aléatoires
-Combinaison de l’erreur de biais et de l’erreur d’imprécision
-Assume qu’on peut mesurer l’erreur entre la mesure et la vraie valeur

TE = %biais + Z x CV = biais + 1,65 x imprécision
TE = (Z x √[(CVbiol.intra)^2+(CVbiol.inter)^2]) + 1.65 x (0,5 x CVbiologique intra)
ensuite, comparer valeur avec un objectif de performance analytique

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31
Q

Qu’est-ce que l’incertitude de mesure et comment la calculer?

A

-Quantification du degré de doute ou d’incertitude qui accompagne un résultat
-Définie l’étendue requise pour avoir un degré de confiance de 95% autour d’une mesure (ex : 40+-2 = résultat réel entre 38 et 42)

-Approche CQI/CQE
u(c) = √ (u^2(CIQ) + u^2(EEQ) )
u^2(CIQ) = variance liée aux contrôles internes
u^2(EEQ) = variance liée aux contrôles externes

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32
Q

Nomme d’autres caractéristiques de performance qui peuvent être analysés.

A

-intervalle de référence
-équivalence des matrices
-concordance clinique
-seuils de positivité
-spécificité analytique
-interférences
-stabilité des réactifs
-variations inter-lots
-stabilité des analytes
-robustesse des méthodes

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33
Q

Qu’est-ce que la gestion/contrôle de la qualité?

A

Ensemble mesures mises en œuvre qui permet de s’assurer que la réalisation d’un examen de laboratoire soit exempte d’erreurs portant atteinte à sa qualité (normes pré-établies et uniformité).

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34
Q

Nomme des sources d’erreurs qui peuvent affecter la qualité (pré-analytique, analytique et post-analytique).

A

-Pré-analytique : prescription médicale, préparation du patient, obtention de l’échantillon, transport de l’échantillon et manipulation de l’échantillon

-Analytiques : étalons, réactifs, instruments et technique (si manuelle)

-Post-analytiques : Calculs, transcription, interprétation et communication du résultat

35
Q

Quels erreurs sont les plus facilement dépistables en gestion de qualité?

A

Erreurs analytiques plus facilement dépistable que pré- et post-analytique qui sont seulement identifiées par l’attention du personnel

36
Q

Quelle est la définition de la qualité analytique?

A

Aptitude à représenter l’état physiologique du patient et à déceler une variation, que celle-ci soit normale ou pathologique

Qualité analytique =
-précision (capacité à obtenir les mêmes résultats sur le même échantillon)
-exactitude (capacité à atteindre valeur réelle)

(Précision = prérequis de l’exactitude)

37
Q

Nomme les différents types d’erreurs analytiques (4).

A

-grossière
-aléatoire
-systématique
-totale

38
Q

Qu’est-ce que les erreurs grossières?

A

Provient de l’inattention, de la négligence ou de la non-observation des procédures de travail (erreur humaine). Erreurs évitables.

39
Q

Qu’est-ce que les erreurs aléatoires et à quoi il porte atteinte?

A

Syn: fortuite, inhérente
-Si on analyse 100 fois même échantillon, aucun système ne va donner 100 fois le même résultat.
-Résultat imprégné d’un degré d’incertitude, mène à des divergences dans la répétition des résultats, et entraîne une dispersion des résultats autour d’une valeur centrale moyenne.
-Porte atteinte à la PRÉCISION.

40
Q

L’écart-type permet de déterminer quoi et il est préférable de le transformer en qu’elle valeur et nomme un désavantage.

A

-ET permet de mesurer l’imprécision (grand ET = grande imprécision).

-Mieux de mettre l’ET en coefficient de variation (CV) puisque mesure plus intuitive et comparable de l’imprécision (avantage) mais peut causer un faux sentiment de sécurité (désavantage).

41
Q

Quelles sont les équations pour mesurer l’imprécision (moyenne, ET, CV)? Et quels sont les % associés à ± 1s, 2s et 3s?

A

Moyenne (μ) = μ = (∑ n) / N
Écart-type (s) = s = [ ∑ (n - μ)2 ] / (N-1)
Coefficient de variation (CV) = s/μ * 100
μ ± 1s = 68,3% de la distribution
μ ± 1,65s = 90,0% de la distribution
μ ± 2s = 95,4% de la distribution
μ ± 2,58s = 99,0% de la distribution
μ ± 3s = 99,7% de la distribution

42
Q

Qu’est-ce que les erreurs systématiques et à quoi il porte atteinte?

A

-Déviation de tous les résultats dans une même direction = biais entre la valeur réelle et valeur mesurée
-Porte donc atteinte à l’EXACTITUDE.

43
Q

Comment mesurer l’inexactitude?

A

-A.analyse de récupération

-B.validation des résultats par méthode de référence (valeur indépendante instruments + réactifs, non-accessible aux labo cliniques, pas de méthodes de références pour tous les paramètres)

-C.comparaison inter-laboratoire (plus accessible, valable que si plusieurs labo participe et compare à un matériel de contrôle à valeur consensus)

44
Q

Est-ce que le biais reflète toujours la qualité des résultats? Si ce n’est pas le cas, que faire?

A

-Biais ne reflète pas toujours qualité des résultats (5% glucose = ok mais 5% sodium = pas ok)

-utilisation de l’indice d’écart-type (SDI)

45
Q

Quel est le calcul de l’indice d’écart-type? Pourquoi utiliser ce calcul? Nomme des exemples.

A

SDI = (x - MOYgroupe) / (ETgroupe)

En divisant le biais par l’écart-type du groupe, on corrige pour la difficulté de la méthode:
-l’ET du sodium est très similaire entre labo donc, pour avoir un bon SDI, notre moyenne doit être proche de la moyenne du groupe.
-Pour bilirubine, exactitude est moins bonne donc ET du groupe plus élevé. Notre moyenne pourra s’éloigner de celle du groupe sans que notre SDI en souffre.

46
Q

Quels sont les écart (SDI) pour avoir une bonne exactitude, une exactitude acceptable et une exactitude inacceptable?

A

-1 < SDI < +1 (68% des labos) = bonne exactitude

± 1 < SDI < ± 1,5 (18% des labos) = exactitude acceptable

SDI > ± 1,5 = inexactitude est inacceptable

47
Q

Qu’est-ce qu’un programmes de contrôle de qualité interne ? Que faut-il définir lors de CQi?

A

Analyse répétée en même temps que les échantillons de patients, d’aliquotes d’un lot de matériel de CQ stable.

Résultats à l’intérieur du laboratoire.

Doit définir :
-fréquence
-type de contrôle + matrices
-nombre de niveau et concentrations voulues
-mode opératoire du lab en lien avec les contrôles (ex: batch vs flo continu)

48
Q

Quels sont les avantages de l’utilisation d’un programme de contrôle de qualité interne?

A

-permet de valider immédiatement les données
-appréciations instantanée de la précision (normalité de la dispersion des résultats) + exactitude (stabilité de la moyenne et comparaison avec groupe pair) en utilisant un graphique Levey-Jennings ou Youden.

49
Q

Combien de temps faut-il pour atteindre une moyenne et CV stable dans nos CQi et quels sont les paramètres qui changent durant cette période?

A

Nécessite 3 mois.
Paramètres:
-Différents lots de réactif
-Différents lots d’étalons
-Entretien des appareils
-Changements de pièces (pigeurs, lampes)

50
Q

Qu’est-ce qu’un programme de contrôle de qualité externe ?

A

-analyse occasionnelle d’échantillons de valeurs inconnues provenant d’un manufacturier ou d’échange inter-laboratoire
-retour du résultat à l’envoyeur qui compile les résultats inter-labo (comparaison)
-doit couvrir chaque matrice et chaque analyse
-évaluation en fonction d’un groupe
-appréciation exactitude grâce au SDI et biais par rapport à la méthode de référence si valeur connue

51
Q

Quels sont les types de programmes de CQe?

A

Essais d’aptitude :
-analyse occasionnelle d’échantillons inconnus provenant d’un organisme de contrôle
-évaluation du résultat par rapport au groupe ou à une norme pré-établie
-appréciation de l’exactitude

Proficiency testing :
-assistance technique, formation ou prise de sanctions si performance jugée insuffisante. Fait au Québec par LSPQ

52
Q

Quels sont les objectifs de performance analytique au niveau de l’exactitude? Dans quels situations l’exactitude est nécessaire ou est moins nécessaire?

A

-idéal = 100%
-long terme : > 97% si référence existe
-court terme : SDI < 1,5
-essentielle pour paramètres avec des seuils de décision médicale (ex : glucose, cholestérol, calcium, médicaments).
-moins importants pour paramètres dont valeurs de références dépendent de la méthode et ne sont pas universelles.

53
Q

Dans un optique d’objectif de performance analytique, nomme 3 méthodes pour évaluer l’imprécision?

A
  1. Jugement clinique (anciennement)
  2. Meilleures méthodes couramment disponibles
  3. Variabilité biologique
54
Q

Comment identifier l’imprécision par jugement clinique? Quels sont les désavantages?

A

-anciennement
-exemple: si valeurs de référence = entre 15-30, indiquer la valeur plus faible en haut de 30 qui incitera à poursuivre investigation
-en fonction des réponses = calcul de l’imprécision maximale dérivée de la variation qui entraîne une réaction chez 50% des cliniciens

Désavantages :
-clinicien ajoute à la variation analytique, la variation pré-analytique et variation biologique
-CV trop grand pour constituer des objectifs analytiques
-objectifs d’imprécision peut varier en fonction de la concentration et de la situation clinique

55
Q

Comment peut-on se servir de meilleures méthodes pour déterminer nos objectifs de performance analytique par rapport à l’imprécision? Quels sont les contraintes?

A

-Objectifs de précision dérivés de programmes de contrôles de qualité externe dans lesquels les méthodes plus performances sont identifiées
-ces objectifs varient dans le temps avec l’amélioration des méthodes

-contraintes d’instrumentation

56
Q

Qu’est-ce que la variation biologique intra-individuelle et comment permet-elle d’évaluer les objectifs de performance en ce qui concerne l’imprécision? Quels sont les avantages de déterminer cette valeur en lab?

A

Variation biologique autour d’une valeur moyenne. Tout dosage chez un individu varie au hasard autour d’un point homéostatique proche à ce sujet. Peut être exprimée statistiquement.

Permet de fixer des objectifs de précision analytiques puisqu’un paramètre qui varie beaucoup exige peu de précision pour que 2 valeurs successives soit significative (l’imprécision analytique acceptable doit être inférieure à la moitié de la variabilité biologique)
CVanal ≤ 0,5 x CVbiol.intra

Avantage :
-faible nombre de sujets requis
-court laps de temps nécessaire
-indépendance des méthodes/instruments
-pas affecté par l’âge
-peu affectée par plusieurs maladies

57
Q

Quel est le calcul du CVtotal?

A

CVt = √ [ CVanal^2 + CVbiol.intra^2 ]
si CVa = 0,5 x CVb ⇒ CVt = 1,12 x CVb = 1,12 x CVbiol.intra

58
Q

Qu’est-ce que le RCV et comment on le calcul?

A

degré de variation entre deux prélèvement successifs pour avoir différence significative (on retire le biais ici)

= K √ [ CVa^2 + CVb^2 ] = 2.77 x √ [ CVa^2 + CVb^2 ]
ou
= Z x √2 x √ [ (CVanal)^2 + (CVbiol.intra)^2 ]
*K = 1,96 x √2 = 2,77 pour p ≤ 0,05
= 2.77 x √ [ (CVanal)^2 + (CVbiol.intra)^2 ]

59
Q

Quel est le calcul de l’imprécision et quelle est le % de contribution à la variabilité pour les performances optimale, désirable et minimale?

A

f x CVbiol.intra

f = 0,25 = 3% variabilité (optimale)
f= 0,5 = 12% variabilité (désirable)
f= 0,75 = 25% variabilité (minimale)

60
Q

Quel est le calcul de l’exactitude (biais) et quelle est le % de contribution à la variabilité pour les performances optimale, désirable et minimale?

A

= f x √ [ CVb^2 + CVg^2 ]
= f x √[ (CVbiol.intra)^2+(CVbiol.inter)^2]

f = 0,125 =optimale
f = 0,250 = désirable
f = 0,375 = minimale

61
Q

Calcul de l’erreur totale acceptable

A

Erreur totale acceptable = 1,65 x imprécision acceptable + inexactitude acceptable

Cours stats:
TEa = biais + 1,65 * imprécision
TEa = (facteur x √[(CVbiol.intra)^2+(CVbiol.inter)^2]) + 1.65 * (0,5 x CVbiol.intra)

62
Q

Nomme et décrit les différentes règles de Westgard. Permettent-elles de déterminer des erreurs aléatoires ou systématiques et intra- ou inter-test?

A

1.2s : Alarme face à une possible perte de contrôle, nécessite l’examen des données de contrôles à l’aide d’autres règles pour valider ou rejeter la série

1.3s : Symbolise la règle selon laquelle une série d’essai est rejetée parce que 1 contrôle plus grand que 3ET. Règles particulièrement sensible à l’erreur ALÉATOIRE mais dépiste aussi les erreurs SYSTÉMATIQUES importantes. Puisque probabilité qu’un résultats excède 3SD = 0,3% donc, 99,7% que le système analytique soit problématique.

2.2s : Symbolise règle selon laquelle une série d’essai est rejetée parce que 2 résultats consécutifs de contrôle excèdent la même limite de moy +/- 2ET. 1 Série d’essai inter-niveau ou 2 série d’essai intra-niveau. Sensible aux erreurs SYSTÉMATIQUES qui touchent un niveau de concentration ou l’ensemble de l’intervalle de concentration entre les 2 niveaux.

R.4s : Règle selon laquelle une série d’essai est rejetée par ce que l’écart des contrôles bas et élevé d’une même série excède 4ET. Sensible aux erreurs ALÉATOIRES.

4.1s : Règle série rejetée parce que 4 résultats consécutifs excèdent 1ET. Intra-niveau ou inter-niveau. Sensible aux erreurs SYSTÉMATIQUES.

10.x : Règle série rejetée parce que 10 résultats consécutifs se situent du même côté de la moyenne. Intra-niveau ou inter-niveau. Sensible aux erreurs SYSTÉMATIQUES.

63
Q

Lorsqu’on rejette une série, faut-il reprendre tous les échantillons?

A

Non, ça dépend de la situation.

64
Q

Quels sont les étapes à faire lors d’un rejet d’une série d’essai?

A

1- Mise en quarantaine des résultats
2- Déterminer type d’erreur selon la règle (aléatoire: 13S et R4S et systématique: 22S, 4S, 10X et 13S)
3- Identifier et corriger la cause d’erreur selon le type d’erreur (aléatoire: pipetages, mélange ou systématique: calibrateurs, réactif, température)
4- Ré-analyser contrôles pour vérifier la normalisation de la situation
5- Déterminer si résultats de patients doivent être repris ou s’ils peuvent être rapportés
6- Certaines situations justifient de rapporter des résultats de série rejetée (problème dû au contrôle, interversion contrôles, problème limité à un niveau de concentration et reprise sélective, erreur analytique petite relativement à l’utilisation clinique du résultat)

65
Q

Idéalement, que devrait donner les règles de CQ?

A

-Une règle de CQ devrait toujours donner un signal de rejet si présence d’erreurs ou donner un signal d’acceptation si absence d’erreurs.
-En pratique, on utilise les probabilité pour caractériser la performance d’une règle de CQ (Ped et Pfr)

66
Q

Qu’est-ce que le Ped et Pfr? Si on utilise la règle 1.3s, quel serait le Pfr?

A

Ped : probabilité de détection d’erreurs (idéal = 1)
Pfr : probabilité de faux rejet (idéal = 0)

Si règle 1.3s:
-Pfr = 3/1000 = 0,3% puisque 99,7% des échantillons sont à l’intérieur de 3ET

67
Q

Quel serait le Ped si une erreur systématique déplace la moyenne de 2ET?

A

Ped = 16% = 0,16

68
Q

On peut calculer les performances de différentes règles de CQ à l’aide de simulation par ordinateur vis-à-vis quel paramètres? Comment on peut les représenter?

A
  • types d’erreurs (systématique et aléatoire)
  • selon l’ampleur de l’erreur (∆SE et ∆RE)

On représente sous forme de graphiques de puissance.

69
Q

Qu’est-ce qui augmente (rend meilleure) la performance d’une règle de CQ?

A

-Plus Pfr est basse
-plus Ped est élevée
=meilleure performance

70
Q

Comment le taux de détection d’erreur et la probabilité de faux rejet varie en fonction du nombre de contrôles/série d’essais?

A

Ped = proportionnel à l’ampleur de l’erreur
Pfr = proportionnel au nombre de contrôles / série d’essai

71
Q

Est-ce préférable d’avoir un Pfr bas ou un Ped élevé?

A

-Ped peut potentiellement être haut à cause de haut taux de fausses alarmes
-Critère de Pfr basse prime sur la Ped pour des raisons de productivité et d’économie
-Effectivement, si trop de fausse alarme, il y a un risque de non réaction aux vraies alarmes

72
Q

Des analyses statistiques poussées ont regardé l’effet des règles 1.2s et 1.2SX3 sur le PFr. Quels sont les conclusions?

A

Règles 1.2s : taux de fausses erreurs élevée même si sensible à l’erreur vraie

Règes 1.2sx3 (reprise du 2s suivie d’une reprise additionnelle avec nouvelle bouteille si tjrs en haut de 2s) : élimine taux de fausses erreurs mais au dépend de la détection de vraies erreurs donnant une moins bonne sensibilité

Donc 1.2,5s = bon compromis

73
Q

Que se passe-t-il si on augmente la limite utilisée par la règle de CQ? Que serait un bon compromis?

A

Faire attention puisque plus la limite utilisée par la règle de CQ augmente, plus la Pfr diminue, mais aussi la Ped diminue.

Meilleure règle compromis : Règles 1.2,5S avec Pfr de 2,4% et Ped un peu plus élevé que Westgard. Très bon si simplicité est requise et se compare avantageusement aux règles de Westgard.

74
Q

Est-ce qu’il existe une règle avec un pouvoir discriminatoire absolu entre 2 règles?

A

Non, enfreindre un type de règle oriente vers un type ou l’autre d’erreur (SE, RE).

75
Q

Comment l’individualisation pour le choix d’une règle est fait et que permet-il?

A

-Fait pour chaque paramètre (SE et RE) en tenant compte du TEa selon l’utilisation clinique.
-Grâce à TEa, possible de déduire l’erreur systématique (ΔSEC) ou aléatoire critique (ΔREC).

76
Q

Qu’est-ce que le degré de qualité dans un contexte acceptable médicalement?

A

Exprimé en TEa médicalement.
exemple: un degré de qualité de 95% signifie que 95 résultats sur 100 n’excèdent pas TEa. Habituellement, 95% est satisfaisant.

77
Q

Qu’est-ce que l’erreur systématique critique (ΔSEC) et l’erreur aléatoire critique (ΔREC)?

A

-ΔSEC est le niveau de biais maximal à ne pas dépasser pour que 95% des résultats soient plus petit que TEa
-ΔREC est le niveau d’imprécision maximal à ne pas dépasser pour que 95% des résultats soient plus petit que TEa

78
Q

Que permet une règle de CQ individualisée?

A

Permet de déterminer ΔSEC et ΔREC critique pour indiquer quand résultats ne rencontrent plus les objectifs de qualité prédéterminé.

79
Q

Quel est le calcul du ΔSEC?

A

ΔSEC = TEa/ s - 1,65 (pour 95%)

Exemple avec le sodium:
-Si TEa = 4,0 mmol/L et s = 0,67 mmol/L
-ΔSEC = (4,0 / 0,67) – 1,65 = 5,97 – 1,65 = 4,32

80
Q

Quel est le calcul du ΔREC?

A

ΔREC = TEa/ 1,96 x s (pour 95% dont 2,5% à chaque extrémité)

Exemple avec l’urée:
-Si TEa = 1,12 mmol/L et s = 0,32 mmol/L
-ΔREC = 1,12 / (1,96 · 0,32) = 1,79

81
Q

Est-il plus facile de détecter les RE ou les SE?

A

Plus difficile de détecter les RE que les SE.

Exemple:
-si l’ampleur de l’erreur = 3,0
-avec la règle du 12,5S
-Ped SE = 0,85
-Ped RE = 0,60

82
Q

Nomme une méthode qui permet de choisir une règle appropriée en fonction des SE et RE critique? On préfère que la courbe soit vers la gauche ou la droite?

A

-Sélection par OPSpecs Chart : permet de choisir la règle la plus appropriée

-Plus on est à gauche, et plus elle est performante
-Plus on est à droite, et plus la méthode se dégrade.

83
Q

Quel est le calcul de TEa pour 6 sigma?

A

TEa ≥ Esystématique + (6s)

84
Q

Que signifie le nombre de sigma et comment le calculer?

A

Plus il est élevé, meilleure sera la qualité de l’analyse. Si 5 à 6 atteint, indique que de petits changements de la qualité du processus peuvent être tolérés sans augmenter le taux d’erreur de façon significative.

Calcul du nombre de Sigma :
= (TEa –biais) / s
= (%TEa – %biais) / %CV