TPs Flashcards
∞ On vous donne un tube contenant un mélange de deux espèces bactériennes (1 Gram + et 1 Gram -). Vous désirez isoler la souche bactérienne Gram - afin de faire des tests d’identifications. Pour ce faire, vous striez le mélange sur une gélose :
a. sang.
b. ordinaire.
c. MacConkey.
d. mannitol sel.
c. MacConkey.
Les Enterobacteriaceae sont généralement des bactéries
a. Aérobiques
b. Anaérobiques
c. Anaérobiques facultatives
d. Hypoxiques
c. Anaérobiques facultatives
Suite à une incubation de 24h à 35°C, vous observez 118 colonies sur une gélose nutritive. Sachant que vous avez étalé 0,2mL d’un mélange bactérien (dilution 10-5) sur cette gélose, quel est le nombre d’unités viables (NUV) par mL du mélange bactérien de départ?
a. 1.18 x 108 UV/mL
b. 2,36 x 108 UV/mL
c. 1.18 x107 UV/mL
d. 5,9 x107 UV/mL
d. 5,9 x107 UV/mL
∞ Un bouillon lactosé est ensemencé avec une entérobactérie inconnue. Après incubation, le bouillon vire au jaune et il y a une bulle dans le tube de Durham. Que signifie ce résultat ?
a. Il n’y a pas eu de fermentation du lactose, mais le mannitol a fermenté, sans dégagement de gaz.
b. Il n’y a pas eu de fermentation du lactose, mais le mannitol a fermenté, avec dégagement de gaz.
c. Il n’y a eu ni fermentation du lactose, ni dégagement de gaz.
d. Il y a eu fermentation du lactose et dégagement de gaz
e. Il y a eu fermentation du lactose, sans dégagement de gaz.
d. Il y a eu fermentation du lactose et dégagement de gaz
∞ À la suite de tests biochimiques sur une souche d’entérobactérie inconnue vous obtenez les résultats suivants:
Bouillon lactosé: Le bouillon est Violet
Gélose sulfure, indole, motilité: Culot noir avec croissance dans le milieu loin de la ligne d’inoculation. L’ajout du réactif de Kovacs produit une anneau jaune/incolore.
Gélose citrate: La gélose est bleue
Gélose à l’urée de Christensen: La gélose est rose bonbon
Gélose phénylalanine désaminase: La pente de la gélose est jaune après l’ajout de FeCl3.
Citrobacter freundii
∞ La gélose mannitol-sel est différentielle pour quel caractère ?
a. L’hydrolysation de l’urée en ammoniac.
b. La présence de la coagulase.
c. La dégradation du mannitol.
d. La fermentation du lactose.
e. La présence de l’enzyme catalase.
c. La dégradation du mannitol.
Que signifie le précipité noir qui peut se former dans la gélose sulfure, indole, motilité (SIM) ?
a. Le tryptophane est dégradé en indole.
b. Il y a production de sulfure d’hydrogène (H2S).
c. La phénylalanine est désaminée en acide phénylpyruvique.
d. Rien, c’est assurément dû à une erreur de manipulation.
e.L’urée est dégradée en ammoniac.
b. Il y a production de sulfure d’hydrogène (H2S).
∞ Une gélose sulfure, indole, motilité (SIM) est ensemencée avec une entérobactérie inconnue. Après incubation et ajout du réactif de Kovacs, un composé rouge vif est formé. Que signifie ce résultat ?
a. La bactérie ensemencée est motile.
b. Le glucose (seule source de carbone disponible) a été utilisé.
c. Aucune de ces réponses.
d. Il y a production de sulfure d’hydrogène.
e. L’indole a été produit à partir du tryptophane disponible.
e. L’indole a été produit à partir du tryptophane disponible.
∞ Quel est l’agent sélectif dans la gélose mannitol-sel ?
a. Le violet de cristal.
b. La haute teneur en NaCl (7,5%).
c. Le lactose.
d. Le mannitol
e. Les sels biliaires.
b. La haute teneur en NaCl (7,5%).
∞ Vous préparez un frottis sur lame d’une souche bactérienne provenant d’une gélose MacConkey. Vous effectuez ensuite une coloration de Gram. Lors de l’observation microscopique à un grossissement de 1000X, vous notez la présence de bacilles de couleur violette. Comment expliquer ce résultat ?
a. L’étape de la décoloration à l’alcool 95% n’a pas été complétée, ce qui empêche la contre-coloration des bactéries Gram négatif à la safranine.
b. La safranine ne colore que les bactéries Gram négatif, c’est donc normal qu’une bactérie ayant poussé sur gélose MacConkey ne soit pas sensible à ce colorant.
c. On a sûrement oublié l’étape de la solution de Lugol, qui permet de mettre la coloration à la safranine en évidence.
d. Le violet de cristal colore toutes les cellules, c’est normal que le frottis soit violet.
a. L’étape de la décoloration à l’alcool 95% n’a pas été complétée, ce qui empêche la contre-coloration des bactéries Gram négatif à la safranine.
∞ Pourquoi est-il important d’effectuer un contrôle négatif lors de toute expérience au laboratoire ?
a. Pour confirmer que les réactifs, produits et techniques utilisés sont adéquats pour répondre à la question expérimentale.
b.
Le contrôle négatif est facultatif, il ne fournit aucune information essentielle.
c. Pour confirmer l’application adéquate des techniques de travail et l’absence de contaminants dans les réactifs utilisés.
d. Pour déterminer le seuil acceptable de contamination dans l’expérience effectuée.
c. Pour confirmer l’application adéquate des techniques de travail et l’absence de contaminants dans les réactifs utilisés.
Quel milieu de culture est-il préférable d’utiliser pour effectuer l’examen de la morphologie coloniale d’une souche bactérienne ?
a. Un bouillon nutritif.
b. Une gélose sélective-différentielle.
c. Une gélose différentielle.
d. Une gélose sang.
e. Une gélose nutritive neutre.
e. Une gélose nutritive neutre.
On doit déterminer le nombre d’unités viables dans une suspension bactérienne concentrée. Des dilutions en série de 10-1 à 10-4 ont été préparées et un volume de 0,1 mL de la dilution 10-4 a été étalé sur une gélose nutritive. Après incubation à 35ºC pendant 24 heures, il n’y a aucune croissance bactérienne. Qu’est-ce qui est la meilleure chose à faire pour déterminer le nombre d’unités viables dans cette suspension bactérienne ?
a. Étaler 0,1 mL de la dilution 10-3 sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Si des colonies bactériennes sont présentes après l’incubation, énumérer le NUV/mL. Sinon, répéter l’opération avec la dilution 10-2.
b. Déclarer que la concentration de la suspension est de 0 NUV/mL.
c. Compter le nombre de colonies dans la suspension bactérienne initiale et diviser cette valeur par son volume afin d’obtenir le NUV/mL.
d. Étaler 0,1 mL de la suspension bactérienne initiale sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Énumérer ensuite le NUV/mL, peu importe le nombre de colonies bactériennes à la surface de la gélose.
a. Étaler 0,1 mL de la dilution 10-3 sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Si des colonies bactériennes sont présentes après l’incubation, énumérer le NUV/mL. Sinon, répéter l’opération avec la dilution 10-2.
Lequel des paramètres suivants peut être utilisé pour caractériser la concentration bactérienne d’un tube de bouillon nutritif ensemencé avec une souche bactérienne ?
a. Le nombre de colonies.
b. Le nombre de colonies, divisé par le volume de la suspension.
c. La turbidité du milieu de culture.
d. Le changement de couleur de l’indicateur de pH.
c. La turbidité du milieu de culture.
∞ Vous recevez une culture pure sur gélose sang d’une souche bactérienne inconnue. Vous observez la présence d’une lyse partielle de couleur verdâtre dans les zone où la croissance bactérienne est abondante. Toutefois, vous ne voyez pas d’hémolyse au niveau des colonies isolées. Que noterez vous dans votre cahier de laboratoire en ce qui concerne le caractère hémolytique de cette souche?
a. Alpha hémolytique
b. Impossible à déterminer
c. Beta hémolytique
d. Gamma hémolytique
d. Gamma hémolytique
