Prot Et Purification 2 Flashcards

1
Q

Principe chromatographie d’affinité ?

A

Utilisa la spécificité de reconnaissence entre un protéine et son ligand
→ inconvénien : nécessite de connaîtrepartenaire / ligand de la protéine

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2
Q

Chromatographie d’affinité = immune absorption ?

A

L anticorps est immobilisé sur un support
Elution à pH acide
Avantage: 1 étape
Désavantage: nécessite une purification préalable
(anticorps dans ce cas)

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3
Q

Chromatographie d’affinité = Les étiquettes (ou tags) ?

A
  • «Tag His-6 » étiquette de 6 histidines
    Interaction spécifique avec le nickel
    Elution par l’imidazole
  • GFP (green fluorescent protein)
  • «Flag peptide» octapeptide
    Interaction spécifique avec un Ac
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4
Q

Principe chromatographie hydrophobe ?

A

Interactions hydrophobes entre la résine et les acides aminés hydrophobes de la protéine

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5
Q

Principe chromatographie d’exclusion de taille ?

A

Les protéines sont séparées selon leur taille (masse moléculaire)
Aussi appelée chromatographie par gel filtration :

  • Les protéines + petites passent dans tous les pores et vont moins vite
  • Les protéines + grosses ne peuvent pas entrer dans les pores et sortent plus vite
  • Une protéine de taille moyenne entre dans une partie des pores
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6
Q

Loi de Beer-Lambert ?

A

A = ε.c.l
A = absorbance à 280 nm
ε = coeff d’extinction M-1.cm-1 ou (g/L)-1.cm-1 on %.cm-1 ( avec % : g/100mL)

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7
Q

On déduit la concentration de protéine dans la solution en fonction de quoi ?

A

en fonction de la quantité de lumière absorbée

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8
Q

Electrophorèse sur gel de polyacrylamide ?

A

­ du % d’acrylamide =>
séparation de molécules de + en + petites
Migration dans un champ électrique

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9
Q

Electrophorèse en gel natif ?

A

Séparation selon la charge et la masse moléculaire (MM)
Les protéines qui migrent le plus sont :
- Chargées négativement
- De faible MM
Coloration des bandes de protéines avec :
* Bleu de Coomassie (+ courant)
* Nitrate d’argent (+ sensible)

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10
Q

Electrophorèse en gel dénaturant et réducteur ?

A

On dénature les protéines avec un détergent : le SDS
En général, on réduit aussi les ponts disulfures
• Toutes les protéines sont chargées négativement.
• Migration uniquement selon le poids moléculaire.

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11
Q

Isoélectrofocalisation ?

A
  • Création d’un gradient de pH dans le gel
  • Séparation des protéines en fonction du pHi
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12
Q

Objectifs d’un protocole de purification ?

A
  • Bon rendement
  • Bon degré de pureté
  • Conserver structure et fonction intactes
  • Utiliser des techniques :
  • reproductibles
  • rapides et faciles à mettre en œuvre

A chaque protéine peut correspondre un protocole différent !

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