Gram - Autres Que Les Entérobactéries (2) Flashcards
Indiquer les principales espèces animales atteintes par Francisella tularensis et les réservoirs
Les réservoirs de Francisella tularensis sont les rongeurs, lagomorphes et tiques et les principales espèces animales atteintes sont les lièvres, les lapins et les rongeurs. Les carnivores, ruminants, porcs, et chevaux sont des hôtes accidentels suite à un contact avec la faune sauvage ou à une piqûre de tique. La tularémie est aussi transmissible à l’Homme.
Citer les particularités de résistance du genre Francisella
- Bonne résistance dans l’environnement, surtout l’hiver → résiste 3-4 jours dans les cadavres l’hiver et plusieurs mois dans l’eau et le sol ;
- Très sensible à la chaleur et la putréfaction.
Citer les formes cliniques de Francisella décrites chez les espèces animales sensibles, notamment le lièvre
Chez les animaux sensibles (lièvres, lapins, rongeurs), la tularémie a une évolution aiguë ou subaiguë (« pseudo-peste ») avec une septicémie, une mort en moins d’une semaine et des lésions hépatiques et spléniques (rate en cigare)→peu de symptômes visibles hormis parfois animaux apathiques.
Chez l’Homme, on retrouve une forme ulcéro-ganglionnaire : ulcère au point d’inoculation et adénopathie satellite.
Décrire la morphologie microscopique de la famille des Pasteurellaceae
Bacilles Gram négatifs de petite taille, immobiles et non sporulés. Certaines espèces sont capsulées.
Citer la principale espèce de Pasteurella importante en pathologie
Pasteurella multocida
Citer les habitats possibles du genre Pasteurella
Le genre Pasteurella habite dans les muqueuses nasale et buccale des mammifères et oiseaux→ commensal des muqueuses (essentiellement de l’appareil respiratoire supérieur) des mammifères et oiseaux.
Décrire les trois formes d’infections à Pasteurella chez les animaux
- Septicémie à évolution foudroyante (forme suraiguë): choléra aviaire et septicémie
hémorragique des bœufs et des buffles ; - Rhinites, pneumonies et broncho-pneumonies : chez les ruminants : BPIE (bronchopneumonie infectieuse enzootique), rhinite atrophique chez le porc, pneumonies infectieuses chez les carnivores, coryza chez le lapin ;
- Affections pyogènes : mammites, abcès, arthrites, encéphalites, infections génitales chez les mâles et femelles décrites pour Histophilus somni.
Citer les deux agents bactériens impliqués dans la rhinite atrophique du porc
Association de Bordetella bronchiseptica et Pasteurella multocida.
Expliquer quelle est la principale condition de transmission de P. multocida à l’Homme
Griffures ou morsures par des carnivores ou lapins.
Citer les 3 pasteurelles impliquées dans les surinfections de BPIE
- Mannheimia haemolytica ;
- Pasteurella multocida ;
- Histophilus somni.
Décrire le pouvoir pathogène de Mannheimia haemolytica chez les bovins
Mannheimia haemolytica possède une leucotoxine associée à la gravité des infections (Mannheimia est souvent associée aux cas mortels).
Décrire la morphologie microscopique du genre Bordetella
Petit coccobacille Gram négatif, mobile par ciliature péritriche dégénérée (pour les espèces Bb, Ba) ou immobile (pour les espèces Bp, Bpp ), non sporulé
Citer les habitats possibles du genre Bordetella
Commensales des muqueuses respiratoires (mammifères et oiseaux)
Citer l’espèce du genre Bordetella la plus importante en pathologie vétérinaire
Bordetella bronchiseptica
Citer les formes d’infections à Bordetella bronchiseptica chez le Chien, le Porc, le Lapin et le Cobaye
- chien : trachéobronchite infectieuse canine, syndrome toux de chenil
- porc : rhinite atrophique
- cobaye : rhinite, trachéite, conjonctivite
- lapin : rhinite bénigne le plus souvent
Indiquer les méthodes générales de diagnostic du genre Bordetella
- Diagnostic bactériologique (Bb) : Culture sur gélose au sang (36 à 48 h), Identification par critères biochimiques
- Possibilité de bilan « Toux de chenil » par PCR : pour la détection de virus + bactéries, mais limité car pas d’antibiogramme associé
Citer les espèces animales vaccinées contre Bordetella bronchiseptica
- Chien : vaccin associé au virus Parainfluenza contre la toux de chenil (voie intranasale : vivant atténué ou voie sous -cutanée : inactivé)
- Porc : pour la rhinite atrophique
- Cobaye : Pas de vaccin avec autorisation de mise sur le marché
Citer l’espèce animale atteinte par Taylorella equigenitalis
Cheval
Décrire le pouvoir pathogène de T. equigenitalis et le nom de la maladie associée
Métrite contagieuse équine (métrite purulente) : transmission vénérienne par des étalons porteurs asymptomatiques, très contagieuse, stérilité temporaire
Rang B : Décrire la morphologie microscopique du genre Francisella
Le genre Francisella est un tout petit bacille à Gram négatif, immobile, asporulé et souvent capsulé.
Rang B : Citer les deux principales sous-espèces de F. tularensis responsables de
la tularémie et leur répartition géographique
- F. tularensis tularensis (type A) : virulence élevée → Amérique du Nord
- F. tularensis holartica (type B) : virulence moyenne → Europe
Rang B : Indiquer les principaux modes de transmission de la tularémie
La transmission peut être :
- percutanée (petite taille : peut traverser peau saine, favorisé si lésions) ou via les muqueuses (attention lors de la manipulation de cadavres !) ;
- respiratoire → aérosols lors d’autopsies, poussières de fourrage ;
- conjonctivale → éclaboussures projetées dans les yeux ;
- par ingestion (eau contaminée ou viande peu cuite d’un animal infecté) ;
- par inoculation par griffure, morsure ou arthropodes hématophages (tiques).
Rang B : Décrire les méthodes générales de diagnostic
Les prélèvements (à 4 °C) sont du sang, de la rate, du foie ou des poumons.
Le diagnostic se fait grâce à une PCR (en phase aiguë), une culture fastidieuse sur milieu enrichi (la croissance est lente : les colonies apparaissent en 2 à 6 jours), par voie percutanée (souris, cobaye) pour prélèvements polycontaminés (gibier) ou par sérologie (MAT) à partir de 10-15j PI. De plus, la culture est possible uniquement en BSL3 (P3).
Rang B : Indiquer le support structural des deux antigènes majeurs de Pasteurella multocida et le nom des sérotypes les plus virulents
- La capsule : antigènes capsulaires (polyosides simples et protéines, 5 sérotypes ou groupes capsulaires : A, B, D, E, F), sérotypes les plus virulents : sérotypes A et D (grande quantité d’acide hyaluronique dans leur capsule) ;
- Le soma : antigènes somatiques (12 sérotypes O chez P. multocida), sérotype le plus virulent : sérotype O.
Rang B : Citer les espèces animales atteintes par Pasteurella multocida et le nom des pathologies associées
- Volailles et oiseaux sauvages (dindes+++) → choléra aviaire ;
- Bœufs et buffles → septicémie hémorragique des bœufs et des buffles ;
- Ruminants → Bronchopneumonies infectieuses enzootiques (BPIE) ;
- Porc → rhinite atrophique du porc ;
- Carnivores → pneumonie infectieuse ;
- Lapins → atteinte respiratoire (rhinite (jetage nasal, éternuements), conjonctivite, sinusite,
pneumonie), lésions pyogènes, entérite, septicémie et, en association à Bordetella
bronchiseptica, coryza ;
- Homme → pasteurellose d’inoculation.
Rang B : Décrire les facteurs de pouvoir pathogène du genre Pasteurella
- Capsule : polysaccharidique, résistance à la phagocytose et à l’action du complément. Acide hyaluronique (sérotypes A et D) → adhésion aux cellules épithéliales respiratoires ;
- LPS : complet, nécessaire pour le pouvoir pathogène, induit réponse inflammatoire ;
- Adhésines : pili de type 4 → adhésion aux épithéliums muqueux ;
-
Toxine dermonécrotique (présente chez certaines souches de sérotypes A et D) : mitogène
pour ostéoclastes → rhinite atrophique par destruction du tissu osseux. Elle n’existe pas chez les souches responsables de choléra aviaire, pneumonie et septicémie hémorragique.
Rang B : Indiquer les méthodes générales de diagnostic du genre Pasteurella
- Par bactériologie : culture sur milieu enrichi (identification bactérienne + antibiogramme)
- Par biologie moléculaire : PCR multiplex pour les BPIE
Rang B : Indiquer les particularités des vaccins contre Pasteurella multocida
- Rappels fréquents car immunité conférée médiocre
- Porc : en association avec B. bronchiseptica contre rhinite atrophique
- Veaux : vaccin multivalent (M. haemolytica +/- virus +/- P. multocida +/- H. somni) - Volailles : choléra des poules
Rang B : Citer le nom de la maladie et les signes cliniques associés à l’infection par Actinobacillus ligneresii chez les bovins
Actinobacillose = Maladie de la langue de bois➔lésions suppuratives chroniques, fibrose linguale (diminution préhension des aliments), abcès à différentes localisations
Rang B : Citer l’agent responsable de pleuropneumonie chez le porc et les signes cliniques de la maladie
Agent responsable = Actinobacillus pleuropneumoniae :
- Pleuropneumonie chez le porc (2 à 6 mois)
- Mortalité importante, forme parfois suraiguë
- Baisse de croissance des animaux
Rang B : Citer l’agent responsable du coryza infectieux des volailles et les signes
cliniques de la maladie
Avibacterium paragallinarum
Signes cliniques :
- Coryza infectieux des volailles (poulets +++)
- Inflammation aiguë de l’appareil respiratoire haut : Jetage nasal, râles, détresse respi, conjonctivite, abattement…
Rang B : Indiquer les facteurs de pouvoir pathogène du genre Bordetella et décrire leur implication dans la pathogénie d’une bordetellose
- Synergie Adhésines (fixation bactéries sur le tractus respiratoire) + Toxines (destruction du mécanisme de clairance ciliaire des cellules trachéales, échappement à la phagocytose, destruction des cellules ciliées)
- adhérence aux cils de l’épithélium cilié appareil respiratoire => multiplication bactérienne => induction d’une ciliostase, production et accumulation de mucus => destruction des cellules ciliées (action des toxines) => induction d’une réponse inflammatoire locale
Rang B : Citer les localisations d’infections à Bordetella chez la dinde et l’espèce impliquée
B. avium (bordetellose ou coryza du dindon) chez dinde : appareil respiratoire
Rang B : Décrire la morphologie microscopique du genre Taylorella
Bacille à Gram négatif, immobile, non sporulé, capsulé
Rang B : Citer les habitats possibles du genre Taylorella
Tractus génital des chevaux
Rang B: Indiquer les particularités du prélèvement et du diagnostic de laboratoire de l’infection par Taylorella
- Vétérinaire sanitaire et laboratoire agréé
- écouvillonnage (fosse clitoridienne ou urétrale chez le mâle)
- Mise en culture (gélose chocolat) → 7 j pour résultat négatif
- Immunofluorescence directe → 2 j si négatif, confirmation obligatoire par culture si positif - PCR possible
Les bactéries du genre Pasteurella sont des bacilles Gram négatif mobiles péritriches (V ou F) ?
Faux, elles sont immobiles ( pas de flagelles)
Rang B : Quelle toxine de Pasteurella multocida est impliquée dans la rhinite atrophique du porc ?
La toxine dermonécrotique
B/ Quelles pasteurelles sont fréquemment isolées (seules ou associées) lors de bronchopneumonie infectieuse enzootique chez les bovins (BPIE) ?
Mannheimia haemolytica, Histophilus somni, Pasteurella multocida
B/ Concernant le genre Pasteurella, des sérotypes sont définis sur la base des antigènes de :
Capsule et paroi
B/ Actinobacillus lignieresii est responsable de la langue de bois chez les bovins (V ou F)
Vrai
Sur quelle méthode est basé le diagnostic des Pasteurella ?
il est essentiellement bactériologique, basé sur une culture en milieu enrichi
