Cours 10 - RMN des protéines Flashcards

1
Q

Quelle est la composition d’un atome ?

A

Un atome est constitué d’un noyau central, composé de neutrons (charge neutre) et de protons (charge positive), entouré d’électrons en orbite autour du noyau.

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2
Q

Quelle est l’origine de la RMN et quelle est la formule du moment angulaire nucléaire ?

A

La RMN résulte du moment angulaire du spin nucléaire (P), donné par la formule :

P = h * sqrt[I(I + 1)], où I est le spin nucléaire et h est la constante de Planck divisée par 2π.

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2
Q

Qu’est-ce que l’effet NOE en RMN et que mesure-t-il ?

A

L’effet NOE (Nuclear Overhauser Effect) reflète l’influence des noyaux proches dans l’espace. Il informe sur leur distance (< 5 Å), indépendamment des liaisons covalentes.

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2
Q

Quelles sont les valeurs possibles du spin nucléaire (I) selon les caractéristiques nucléaires ?

A

I = 0 : si le nombre de masse (A) et le numéro atomique (Z) sont pairs

I = entiers × 1/2 : si A est impair

I = entiers : si A est pair et Z est impair

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3
Q

Quels types de noyaux observe-t-on en RMN selon leur spin nucléaire ?

A

I = 0 : noyaux inactifs

I > 1/2 : noyaux avec moment quadrupolaire, relaxation rapide, difficiles à étudier

I = 1/2 : noyaux actifs, comme ¹H, ¹³C, ¹⁵N et ³¹P

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4
Q

Que reflète le déplacement chimique (δ) en RMN ?

A

Le déplacement chimique (δ) reflète l’environnement électronique d’un noyau, influençant sa fréquence de résonance.

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5
Q

Qu’est-ce que le couplage scalaire (J) en RMN et que permet-il d’étudier ?

A

Le couplage scalaire (J) est un effet des noyaux proches dans la structure covalente. Il fournit des informations sur les angles de torsion entre liaisons.

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5
Q

Pourquoi les noyaux ne ressentent-ils pas directement le champ B₀ ?

A

Le champ local B₀ᵢ est modifié par la structure électronique :

B₀ᵢ = B₀ * (1 - σᵢ), où σᵢ est la constante de blindage.

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6
Q

Qu’est-ce que la fréquence de Larmor ?

A

La fréquence de Larmor correspond à la vitesse angulaire à laquelle un moment magnétique nucléaire (comme celui d’un proton) précesse autour d’un champ magnétique externe.

Au lieu de s’aligner directement avec B0, le noyau fait un mouvement de précession : il tourne autour de la direction du champ, comme une toupie autour d’un axe vertical.

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7
Q

De quoi dépend la constante de blindage (σi) et qu’influence-t-elle ?

A

Elle dépend de la densité électronique autour du noyau et des groupements fonctionnels voisins. Elle ne dépend pas de la force du champ magnétique B₀.

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8
Q

Où se situent les déplacements chimiques des protons (¹H) dans les protéines ?

A

Les protons déblindés (moins protégés électroniquement) apparaissent à bas champ (à gauche du spectre), avec des déplacements chimiques plus grands.

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8
Q

Pourquoi les variations de fréquence (Δω) sont-elles petites en RMN ?

A

Parce que les constantes de blindage (σi) sont très petites, donc ωᵢ ≈ ω₀ + Δω, avec Δω très faible.

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8
Q

Pourquoi différents noyaux ont-ils des vitesses angulaires (ωi) différentes ?

A

Car chaque noyau a une constante de blindage (σi) propre, influençant son champ local (Boi) et donc sa fréquence de précession :

ωᵢ = -γ * B₀ * (1 - σᵢ)

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9
Q

Quel est l’inconvénient majeur de l’observation des fréquences de résonance en RMN ?

A

Les fréquences dépendent directement du champ magnétique B₀, ce qui complique les comparaisons entre instruments.

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9
Q

Quelle est l’ampleur typique d’un déplacement chimique pour le proton (¹H) à 500 MHz ?

A

À B₀ = 11.7 T, la variation Δω du ¹H est d’environ 7500 Hz, ce qui est petit par rapport à la fréquence totale.

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9
Q

Comment calcule-t-on le déplacement chimique (δ) en RMN ?

A

δ = ((ν - ν_ref) / ν_ref) * 10⁶, exprimé en ppm, avec ν la fréquence du noyau et νref celle du standard.

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9
Q

Où se trouvent les protons blindés dans un spectre RMN du ¹H en protéines ?

A

Les protons blindés, c’est-à-dire bien protégés électroniquement, apparaissent à haut champ (à droite du spectre), avec un petit déplacement chimique.

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9
Q

Quels facteurs influencent le déplacement chimique du ¹H dans les protéines ?

A

Le déplacement chimique dépend :

  1. de la nature des groupements chimiques associés au proton,
  2. du repliement de la protéine en solution.
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10
Q

Quel est l’avantage majeur de l’observation des fréquences de résonance ν en RMN ?

A

Chaque noyau a une fréquence de résonance unique, ce qui rend la RMN très spécifique et informative.

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11
Q

Comment compense-t-on la dépendance de ν au champ B₀ en RMN ?

A

On utilise le déplacement chimique (δ), exprimé en ppm, ce qui permet une mesure indépendante de B₀.

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12
Q

Quels noyaux sont les plus utilisés en RMN ?

A

Les noyaux les plus utilisés sont : ¹H, ¹³C, ¹⁵N, ¹⁹F et ³¹P, tous ayant I = 1/2 et donc actifs en RMN.

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12
Q

Que représente chaque acide aminé dans un spectre TOCSY ?

A

Chaque acide aminé constitue un ou plusieurs systèmes de spins indépendants, chacun avec ses corrélations internes.

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12
Q

Quel composé est utilisé comme référence pour le déplacement chimique (δ) ?

A

Le Tétraméthylsilane (TMS) est le standard, avec un déplacement chimique de δ = 0 ppm.

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13
Q

Quel est l’ordre des groupes chimiques dans un spectre RMN du ¹H en protéines (de droite à gauche) ? (PAS IMPO)

A

L’ordre croissant du déplacement chimique est : méthyl < aliphatique < alpha < HN chaîne latérale < aromatique < HN chaîne principale.

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13
Comment le déplacement chimique du ¹³C permet-il d’identifier les acides aminés ?
Chaque acide aminé a une distribution spécifique de déplacements chimiques ¹³C, ce qui permet d’identifier facilement le type d’acide aminé.
13
Quelle est la concentration typique d’un échantillon pour une étude RMN de protéine ?
Typiquement, on utilise 1 mM dans 250–500 µL, ce qui représente 3–5 mg d’une protéine de 100 résidus.
13
Qu’est-ce que le couplage scalaire homonucléaire J et que permet-il d’obtenir ?
C’est un effet entre protons proches dans la structure covalente, séparés par ≤ 3 liaisons. Il est lié à l’angle de torsion via la relation de Karplus : ³JAB = C₁ + C₂ * cos(θ) + C₃ * cos(2θ), ce qui donne des contraintes angulaires.
13
Quelles expériences RMN 2D homonucléaire sont utilisées pour l’attribution des résonances ?
Deux expériences principales sont utilisées : - 2D COSY (Correlated Spectroscopy) - 2D TOCSY (Total Correlated Spectroscopy) Ces expériences reposent sur le couplage scalaire (J).
13
Qu’est-ce que l’effet NOE et quelle information fournit-il ?
L’effet NOE (Nuclear Overhauser Effect) est un phénomène entre protons proches dans l’espace, fournissant des contraintes de distance (r), utiles en détermination de structure.
13
À quoi servent les échanges proton-deutérium en RMN ?
En remplaçant H₂O par D₂O, certains protons labiles échangent avec le deutérium, ce qui simplifie les spectres RMN.
14
Quels protons sont remplacés lors des échanges H/D en solution D₂O ?
Les protons des groupes fonctionnels suivants peuvent être remplacés par du deutérium : >NH, >COOH, >NH₂, >NH₃, >OH, >SH.
14
Quelles sont les étapes de la détermination structurale par RMN ?
Les étapes sont : 1. Purification et marquage des protéines 2. Attribution des déplacements chimiques 3. Collecte des contraintes structurales 4. Calcul des structures, corrélées aux fonctions biologiques
14
Quel est le rôle du spectre 2D COSY en RMN ?
Le spectre COSY est l’expérience standard pour détecter les corrélations de couplage scalaire J entre protons.
14
Comment les signaux du spectre 2D COSY sont-ils convertis ?
Les signaux détectés pendant t₁ et t₂ sont transformés en fréquences via deux transformées de Fourier : S(t1,t2) → S(t1,F2) → S(F1,F2)
14
Comment identifie-t-on les acides aminés à partir des spectres COSY et TOCSY ?
Chaque acide aminé produit un patron de signaux caractéristiques dans les spectres COSY et TOCSY, facilitant leur identification.
14
Qu’est-ce qui distingue le spectre TOCSY du spectre COSY ?
Dans TOCSY, chaque ¹H d’un système de spins est corrélé à tous les autres ¹H du même système par couplage scalaire J.
14
Quand observe-t-on un transfert de magnétisation dans un spectre 2D COSY ?
Il y a transfert de magnétisation entre deux protons A et B lorsqu’ils sont séparés par 2 ou 3 liaisons chimiques (Jₐb ≠ 0).
14
Où se trouvent les signaux d’intérêt dans un spectre 2D COSY ?
Les signaux pertinents sont symétriques de chaque côté de la diagonale principale du spectre.
15
Quelles sont les limites de la RMN homonucléaire ?
1. Le transfert de magnétisation par couplage scalaire J (COSY/TOCSY) est inefficace pour les petites valeurs de J 2. Les signaux se recouvrent dans les spectres 3. Cette méthode est limitée aux petites protéines (< 100 résidus)
15
Comment sont disposés les signaux dans un spectre TOCSY ?
Les signaux d’intérêt dans un spectre TOCSY sont disposés symétriquement de part et d’autre de la diagonale, comme dans COSY.
15
Quelle expérience RMN est standard pour étudier les corrélations NOE ?
Le spectre NOESY (NOE Spectroscopy) est l’expérience standard pour étudier les corrélations entre protons proches dans l’espace.
15
Quel impact ont les NOEs sur la conformation de la chaîne peptidique ?
Lorsqu’ils relient des protons éloignés dans la séquence primaire, les NOEs restreignent fortement la conformation globale de la chaîne.
15
Comment utilise-t-on l’intensité des NOEs pour calculer une structure ?
L’intensité est convertie en contrainte de distance, utilisée dans les calculs de structure 3D de la protéine.
16
Comment produit-on des protéines marquées pour la RMN hétéronucléaire ?
Les protéines marquées en ¹⁵N ou ¹³C–¹⁵N sont produites par expression recombinante (bactéries ou levures), permettant l’étude par RMN multidimensionnelle.
16
Dans quelles conditions observe-t-on un transfert de magnétisation dans le spectre NOESY ?
Il y a transfert de magnétisation entre deux protons A et B s’ils sont proches dans l’espace (r ≤ 5,0 Å), indépendamment de leur liaison covalente.
16
Quelles sont les caractéristiques des milieux de culture pour produire des protéines marquées ?
Ils contiennent comme seules sources d’azote et de carbone : NH₄Cl marqué en ¹⁵N et glucose marqué en ¹³C.
16
Quels acides aminés peuvent présenter des patrons RMN identiques en spectres COSY/TOCSY ?
Certains acides aminés ont des systèmes de spin identiques, produisant des patrons similaires : - Cys et Asp - Glu, Gln et Met
16
Comment la RMN hétéronucléaire améliore-t-elle la résolution des spectres ?
Grâce aux corrélations hétéronucléaires et aux spectres multidimensionnels (3D, 4D), elle améliore fortement la résolution des signaux.
16
Quelles contraintes doivent être satisfaites lors du calcul d’un ensemble de structures RMN ?
Les structures doivent respecter : 1.Les contraintes RMN (NOE, J, etc.) 2. La structure covalente de la protéine 3. D’autres contraintes : Van der Waals, électrostatiques, etc.
17
Quels sont les avantages de la RMN hétéronucléaire ?
1. Transfert de magnétisation J plus efficace 2. Meilleure résolution grâce aux corrélations hétéronucléaires 3. Permet l’étude de protéines plus grandes
17
Quels types de spectres RMN sont utilisés pour l’attribution des résonances en RMN hétéronucléaire ?
Des spectres 2D, 3D et 4D corrélant plusieurs noyaux (¹H, ¹³C et ¹⁵N) sont utilisés pour l’attribution précise des résonances.
18
Que sont les NOEs en RMN structurale ?
Les NOEs sont des interactions entre protons proches dans l’espace (r ≤ 5,0 Å) qui reflètent les conformations moléculaires.
18
De quoi dépend l’intensité des signaux dans un spectre NOESY ?
L’intensité est proportionnelle à la distance inter-résidu, permettant une estimation qualitative des distances entre protons.
18
Quelle relation existe entre les angles phi et le couplage ³JNHα ?
Il existe une corrélation forte entre l’angle φ (phi) et la valeur du couplage ³JNHα, utile pour identifier les éléments secondaires.
18
Quels patrons de NOE observe-t-on dans les hélices α et les feuillets β ?
Ces éléments de structure secondaire présentent des patrons distincts de NOE : hélices α montrent des NOEs i→i+3/i+4, tandis que les feuillets β montrent des NOEs entre brins adjacents.
18
Quelles classes de contraintes de distance peut-on déduire des intensités NOE ?
On distingue 4 classes : - Très intense : 1,8–2,7 Å - Moyenne : 1,8–3,3 Å - Faible : 1,8–5,0 Å - Très faible : 3,0–6,0 Å
18
Quels critères permettent de valider une structure calculée par RMN ?
Les structures acceptées présentent une énergie basse et peu de violations des contraintes expérimentales.
18
Qu’est-ce que le diagramme de Ramachandran ?
C’est un graphique qui représente la conformation du squelette des protéines en fonction des angles dièdres φ et Ψ pour chaque acide aminé.
18
Quels sont les avantages de la RMN pour la détermination de la structure des protéines ?
1. Méthode réalisée à l’état liquide 2. Très utile pour les petites protéines non cristallisables 3. Permet d’étudier le repliement des protéines et de cartographier les sites de liaison par changement de déplacements chimiques 4. Fournit des informations sur la dynamique des protéines
18
Comment représente-t-on les structures acceptées par RMN ?
Elles sont superposées pour minimiser la RMSD (root-mean-square deviation) des atomes lourds, ce qui définit la précision du modèle.
18
Quel critère de qualité utilise-t-on avec le diagramme de Ramachandran pour valider un ensemble de structures protéiques ?
Un bon ensemble de structures doit contenir au moins 90 % des acides aminés dans les zones favorables du diagramme de Ramachandran, correspondant aux conformations stables des angles φ et Ψ.
18
Quelles régions favorables identifie-t-on dans le diagramme de Ramachandran ?
Trois zones sont particulièrement favorables, correspondant aux structures secondaires : hélices α, feuillets β et hélices gauches.
18
Quelles sont les limites de la RMN pour la détermination structurale des protéines ?
1. Limitée aux petites protéines (< 30–40 kDa) 2. Nécessite une grande quantité de protéine purifiée 3. Ne permet pas de localiser précisément les molécules d’eau ni les ions métalliques
18
Quelle est l’utilité de l’expérience ¹H-¹⁵N HSQC en RMN des protéines ?
L’expérience ¹H–¹⁵N HSQC établit une corrélation entre le proton amide (¹H) et l’azote (¹⁵N) du même groupe amide, fournissant un spectre sensible et résolu des résidus d'une protéine.
18
Quelle information obtient-on pour chaque acide aminé dans un spectre ¹H–¹⁵N HSQC ?
Chaque acide aminé, sauf la proline (qui n’a pas de proton amide), donne un pic de corrélation entre le ¹H et le ¹⁵N de son groupe amide.
18
Comment le spectre ¹H–¹⁵N HSQC est-il utilisé en découverte de médicaments ?
Il permet la cartographie des sites de liaison sur les protéines : en suivant les changements de déplacement chimique, on identifie les résidus impliqués dans la liaison d’un ligand.
18
Qu’est-ce que la CSP en RMN et à quoi sert-elle ?
La CSP (Chemical Shift Perturbation ou Perturbation de Déplacement Chimique) mesure les changements de position des signaux dans un spectre RMN, permettant de cartographier les interactions entre une protéine et un ligand.
18
Pourquoi la glutamine (Q) et l’asparagine (N) donnent-elles deux signaux dans le ¹H–¹⁵N HSQC ?
Leurs chaînes latérales comportent un groupe amide (–CONH₂) avec deux protons liés à un même azote, ce qui donne deux signaux distincts dans le spectre.
18
Pourquoi les groupes NH₂/NH₃⁺ de la lysine et de l’arginine ne sont-ils pas visibles dans le spectre ¹H–¹⁵N HSQC ?
Les protons des groupes NH₂ et NH₃⁺ échangent trop rapidement avec le solvant, rendant leurs signaux invisibles dans le spectre HSQC.
18
Que se passe-t-il dans un spectre HSQC lorsqu’un ligand se lie à une protéine ?
Seuls les groupes amides (>NH) proches du site de liaison montrent des changements de déplacement chimique. Si la structure de la protéine est connue, cela permet d’identifier le site de liaison.