Base moléculaire de la mucoviscidose Flashcards

1
Q

Mode de transmission de la muco ?

Epidémiologie :

A

Maladie génétique rare autosomique récessive (malades homozygote ou hétérozygote composite).

Incidence de la mucoviscidose :
- En France : 6000 patients atteints, 200 nouvelles naissances par an.
- 70000 individus atteints dans le monde.
- Espérance de vie : en constante augmentation depuis les années 1960 du fait de l’amélioration des traitements de support : 5 ans en 1965, 40 ans en 2020
En France 40% des patients sont majeurs > 18 ans.

Incidence variable selon les régions et les populations :
- Populations caucasiennes: 1/1700 à 1/25000
o Fréquente en Amérique du Nord, Europe, Australie.
o Moins fréquente en Amérique du Sud, centrale et Russie.
- Populations Africaines et Asiatiques : très rares.
o 1/350.000 (Japon), 1/43.000-100.000 (Inde), 1/100.000 (Iran)
Très forte incidence dans de petites populations : Nord Finistère (Plouzévédé) 1/377 ; population Amish de l’Ohio 1/569 ; Saguenay Lac Saint Jean Québec 1/902 ; Sud Ouest de l’Afrique 1/1192.

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2
Q

Comment se définit la forme classique de la mucoviscidose ? (3)

Mucoviscidose atypique ?

Les hétérozygotes sont-ils syptomatiques ?

A

Formes classiques de mucoviscidose :
o Atteinte multi-organe : voies respiratoires, voies biliaires, voies génitales, glandes sudoripares.
o Test de la sueur > 60 mmol/L
o Deux allèles CFTR mutés avec une mutation de classe A

CFTR related disorder (CFTR RD) : formes non classiques (pas la mucoviscidose à proprement parler)
o au moins une caractéristique phénotypique
Ex. : agénésie bilatérale des canaux déférents isolée chez l’homme
dilatation des bronches ou pancréatites récurrentes isolées.
o test de la sueur normal < 30 mmol/L ou borderline
o mutations autres sur les deux allèles de CFTR ou dysfonction du CFR

Les hétérozygotes sont normalement asymptomatiques.

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3
Q

Gène CFTR :

Quel K ?

Combien d’exons ?

A

Situé sur le bras long du chromosome 7, région 7q31.2

  • 188.703 paires de bases
  • 27 exons
  • Transcrit de 6132 nucléotides
  • Protéine de 1480 aa localisée à la membrane apicale de la cellule épithéliale.

2 nomenclatures pour la dénomination des exons (initialement 24 exons identifiés, puis 27) :

  • Ancienne nomenclature 1 à 24.
  • Nomenclature actuelle de 1 à 27.
  • *La mutation doit être rendue dans les 2 nomenclatures** afin d’éviter le risque de confusion.
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4
Q

A quelle famille appartient la protéine CFTR ?

Quels sont les 5 domaines de la protéines CFTR ?

A

Superfamille ABC : la protéine CFTR appartient à la superfamille des protéines ABC ou ATP Binding Cassette. CFTR est aussi appelée ABC-C7.
La structure tertiaire et quaternaire de la protéine est très conservée au sein de la famille ABC et chez les différentes espèces animales.

5 domaines différents :

  • 2 domaines transmembranaires MSD1 et MSD2 (membrane-spanning domain) chacun composé de 6 hélices alpha transmembranaires (= 12 hélices alpha), connectés par de courtes boucles extracellulaires et par de longues boucles intracellulaires.
  • 2 domaines NBD1 et NBD2 (nucleotide-binding domain) capables de lier l’ATP.
  • Domaine R cytoplasmique de régulation, qui est phosphorylable par la protéine kinase AMPc -dépendante.
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5
Q

Quel élément permet de fermer le pore ?

A

La protéine constitue un pore grâce à ses 2 domaines transmembranaires MSD, et la liaison à l’ATP des NBD. Le domaine régulateur obture le pore. Quand celui-ci est phosphorylé, le « bouchon » se déplace et permet l’ouverture du canal.

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6
Q

Structure des domaines NBD 1 et 2 ?

Lequel hydrolyse l’ATP ?

A

Les domaines NBD : 2 sous-domaines NBD1 et NBD2
o 2 sous unités :
- Centrale ou « head » faite de feuillet bêta stabilisé par les hélices alpha,
- « Tail » en hélice alpha avec boucle liant les sous-domaines, impliquée dans le changement de conformation suite à la liaison à l’ATP.
o Lient chacun une molécule d’ATP (billes jaunes) puis
forment un hétérodimère
o Seul NBD2 hydrolyse l’ATP (site canonique). Le site de liaison de l’ATP de NBD1 est dégénéré.

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7
Q

Domaines transmembranaires MSD :

Passage sélectif de quels ions ?

A

Les domaines transmembranaires MSD :
o pore ionique de 5,3 Å
o passage sélectif d’anions (Cl- et HCO3-)

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8
Q

Domaine R “regulator” :

Joue quel rôle ?

Quelle modification du Domaine R va permettre la dimérisatin de NBD 1 et 2 ?

A

Domaine R « regulator » : domaine intracytoplasmique de 195 aa
o Interaction avec les domaines NBD et les extrémités cytosoliques des hélices MDS.
o S’insère entre les NBD1 et 2 et « bloque le canal ».
o Empêche les modifications de conformation des domaines transmembranaires.
o Phosphorylation par les protéines kinases AMPc dépendantes (PKA, PKC, AMPK) : déplacement permettant de nouveau la dimérisation de NBD1 et 2

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9
Q

Décrire le mécanisme d’ouverture du canal : 6 étapes

A

A l’état basal, le domaine régulateur est présent entre les domaines MBD1 et 2 et ferme le canal. Il n’y a pas d’ATP liée.

1/ Phosphorylation du domaine régulateur (non représenté sur le schéma)
2/ Fixation d’un ATP sur un des 2 domaines NBD1
Fixation d’une 2ème molécule d’ATP sur NBD2
3/ Dimérisation de NBD1 et 2 et réarrangement des domaines transmembranaires
4/ Ouverture du canal ionique et passage des anions chlorure ou bicarbonates
5/ Hydrolyse d’une des 2 molécules d’ATP par NBD2
6/ Perte de la dimérisation et fermeture du canal.

Cycles d’ouvertures - fermetures du canal = bursts : rafales d’ouverture-fermeture, assez caractéristiques de ce canal (mesures électrophysiologiques).

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10
Q

Quelles sont les fonctions du canal CFTR ? (6)

A
  • Fonction de canal ionique :
    o sortie d’anions : chlorure (rôle ++ voies respi) et Bicarbonate (dig++)
    o efflux d’anions inorganiques (ex. glutathion ou gluconate.
  • Transporteur de molécules (APT, glutathion…)
  • Inhibe le canal ENaC : donc dans la mucoviscidose, hyperabsorption du sodium et déshydratation du mucus de surface
  • Régule d’autres canaux: canaux chlorures ORCC (canal rectifiant sortant), canal potassique ROMK, CaCC, échangeur CL-/HCO3-, AQP9.
  • Régulation du pH intracellulaire et du pH du fluide périciliaire (Contrôle de la synthèse des sialyl et sulfotransférases).
  • Régulation des mécanismes d’endocytose et d’exocytose (Contrôle de la sécrétion des mucines, du recyclage membranaire).
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11
Q

Transport et marturation (quelle modification ?) de CFTR .?

En Western blot pourquoi y a-t-il deux bandes possibles ?

A
  • La protéine est produite au niveau du réticulum endoplasmique, puis subit une maturation post traductionnelle (glycosylation) au niveau de l’appareil de Golgi, puis est adressée à la membrane pour s’y ancrer.
  • Elle peut subir un phénomène d’endocytose : détruite par les lysosomes ou recyclée à la membrane.
    Il existe un système de dégradation par le protéasome si la protéine est mal conformée (seulement 20% des protéines CFTR sont de bonne conformation et arrivent à la membrane).

En Western Blot :

  • 1 bande de faible poids moléculaire (bande B) : protéine non glycosylée (non mature)
  • 1 bande de haut poids moléculaire (bande C) : protéine glycosylée (mature)
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12
Q

Protocole de dépistage néonatal ? (3 étapes)

A
  • Dépistage néonatal de la mucoviscidose (en France depuis 2002) : Se 95%, Sp proche de 100%
  • *Test de Guthrie à J3** comprenant le dosage de la trypsine immuno-réactive (IRT).
  • Si dépasse le seuil : recherche de mutation CFTR (30 mutations fréquentes).
  • Si une ou 2 mutations identifiées : test de la sueur
  • Si test de la sueur > 60 mmol/L : diagnostic de mucoviscidose posé.
    Permet une PEC précoce en CRMR Mucoviscidose.

Le dosage de l’IRT est recontrôlé à J21 si absence de mutation détectée.

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13
Q

Quelle est la mutation la plus fréquente ?

Autres mutations ?

A

a. Mutation la plus fréquente : p.Phe508del

  • “ΔF508 » terme obsolète : c1521_1523delCTT.
  • Perte d’1 seul AA dans la protéine (1479 AA) sans décalage du cadre de lecture
  • Gradient Nord-Sud (Danemark 87% DF508, Nord 70-80%, France 60-70%, Espagne et Sud de l’Europe ≈ 50%).

b. Un grand nombre de mutations (très) rares
 2ème la plus fréquente p. Gly542* (* = stop) = 2.89% (= fréquente mais reste rare).
 5 mutations de fréquence > 1% (fréquentes)
 11 mutation de fréquence 0.4% à 1%.
La majorité des mutations sont très rares (parfois propres à une seule famille…).

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14
Q

Quels types d’anomalie génétique sont possibles ?

Notion d’allèle complexe ?

A

Tous les types d’anomalies sont possibles :

  • Substitutions majoritairement
  • Délétions, duplications, grands remaniements, répétitions duplications, indels anomalies complexes avec insertions et délétions au même site.
  • *Toutes les régions du gène peuvent être mutées** : exons, introns, promoteurs, 3’UTR.

Notion d’allèles complexes : plusieurs mutations sur 1 chromosome ;
Exemple 1 : la mutation V751M identifiée chez des patients muco, mais pas de csq fonctionnelle
Mais en fait elle est associée sur le même allèle à une délétion complexe, et que la pathogénicité de cette mutation est liée à l’association à cette délétion qui crée le problème.
Exemple 2 : 1907V n’est pas pathogène par elle-même mais est associée à DF508.
 Des patients présentent a priori les mêmes mutations mais ont des phénotypes différents : pourrait être lié à la présence d’autres mutations associées
 L’allèle complexe peut modifier l’effet d’une mutation.

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15
Q

Quelles sont les 6 classes de mutations ?

Lesquelles sont sévères et lesquelles sont modérées ?

A

Mutations de classe I, II et III : « sévères » (avec atteinte extra-respiratoire grave ex. insuffisance pancréatque exocrine)
Mutations de classe IV, V et VI : « modérées »

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16
Q

Mutations de classe I :

A quelle anomalie correspond-t-elle ?

Existe-t-il des traitements ?

A

= Absence de synthèse de protéine CFTR fonctionnelle

  • Mutation :
    * non-sens : aboutit à un codon stop prématurés (ex GLY542*)
    * variant affectant les séquences consensus d’épissage (+/-1 -2) au niveau des introns
    * décalage du cadre de lecture (frameshift)
    * variant faux sens (codon d’initiation de la traduction)

Pas de traitement disponible.
Seule possibilité : thérapie génique (décevante à ce jour) ou protéique (apport de la protéine déficiente).
Essais sur l’ataluren (lève les codons stop).

17
Q

Classe II :

A quelle anomalie correspond-t-elle ?

Quel traitement ?

A

= Absence de maturation de protéine : n’atteint pas la membrane.
- Protéine normale : synthétisée au niveau du REG, puis subit des glycosylations post-traductionnelles au niveau du REG et Golgi assurant son transport à la membrane apicale.
- Protéine mutée : reconnue comme mal conformée (par chaperons HSP70 et HSP90) et pas de glycosylation ; adressée au protéasome et dégradée.
Mais la protéine est (partiellement) fonctionnelle si acheminée.

  • Mutation :
    * faux sens (p.N1303K)
    * délétion sans décalage du cadre de lecture (p.Phe508del)

Traitement : correcteurs pour renvoyer à la membrane

18
Q

Etudes des classe II : 2 exemples :

A

Etude mutation F508del :
o Immunocytochimie sur des cellules : CFTR à la membrane apicale versus retenue dans le REG (signal fluorescent sera autour du noyau et dans le cytoplasme)
o WB : on prend des cellules (ex. cellules épithéliales nasales de patient), avec AC anti-CFTR : 2 bandes
o Bande B (poids moléculaire inférieur) = protéine non glycosylée présente au niveau du REG.
o Bande C PM supérieur = protéine CFTR entièrement glycosylée présentes à la membrane.

Etude mutation F508del :
o Immunocytochimie sur des cellules : CFTR à la membrane apicale versus retenue dans le REG (signal fluorescent sera autour du noyau et dans le cytoplasme)
o WB : on prend des cellules (ex. cellules épithéliales nasales de patient), avec AC anti-CFTR : 2 bandes
o Bande B (poids moléculaire inférieur) = protéine non glycosylée présente au niveau du REG.
o Bande C PM supérieur = protéine CFTR entièrement glycosylée présentes à la membrane.

19
Q

Classe III :

A quelle anomalie correspond-t-elle ?

Quel traitement ?

A

Défaut de régulation de la protéine : synthétisée – glycosylée - à la membrane – mais dysfonctionnelle.

- Mutation :
* Faux sens
* localisées dans le domaine NBD1 ou NBD2 altérant la liaison ou l’hydrolyse de l’ATP : dysfonction d’ouverture du canal.
- Etude : IF : à la mb – WB normal – pb de la fonction (étude électrophysiologique).

- Traitement : potentialisateur = Ivacaftor
Augmente la probabilité d’ouverture du canal même si sain, encore plus si pathologique, permet d’activer la fixation de l’ATP.

20
Q

Classe IV:

Correspond a quelle anomalie ?

A

= Défaut de conduction ionique : la protéine est produite, va à la membrane, est activable par l’ATP, le canal peut s’ouvrir mais les pores ioniques sont mal conformés, flux possible mais moindre.
- Mutation :
* faux sens
* au niveau des domaines transmembranaires (++) MSD1 et MSD2

  • Traitement : potentialisateur.
21
Q

Classe V :

Correspond à quelle anomlaie ?

Quel traitement ?

A

= Réduction de synthèse de protéine fonctionnelle ; anomalie quantitative
Moins de protéine CFTR à la membrane. Patients peu sévères.
- Mutation :
* variant affectant l’épissage : création des sites cryptiques d’épissage (un peu d’épissage se fait, donc un peu de protéine normale produite).
* et des variants faux sens
- Etude : inhibiteurs du protéasome : protéines produites mais dégradées de façon anormale par le protéasome. (Exemple mutation p.A455E)

  • Traitement : amplificateur : augmenter la production de protéines.
22
Q

Classe VI :

Correspond à quelle anomalie ?

Quel traitement ?

A

Défaut de stabilité de la protéine. Durée de vie limitée. Peut donner un tableau sévère.
Protéine instable va à la membrane mais est dégradée plus vite.
Mutation :
- entrainant une troncation de la zone C terminale (+++) Exemple Q1412X

  • Traitement : stabilisateurs interférant avec le protéasome
23
Q

Distribution des variants en fonction des classes :

A
  • Mutation declasse I : 20% des patients, dont la majorité (17%) sont des variants non sens (codon stop prématuré).
  • Mutations de classe II : 90%, dont 85% ont 1 ou 2 mutations F508del.
  • Mutations de classe III beaucoup plus rares : 3% patients.
  • Mutations de classe IV 3.5%, classe V 4%, classe VI <1% (récemment décrites).
24
Q

Résumé des stratégies thérapeutiques fonction des mutations ?

A

Stratégie thérapeutique différente selon les classes de mutation

  • I : pas de protéine… thérapie génique, Ataluren pour variants non-sens (stop)
  • II : défaut de maturation -> correcteurs
  • III : présence à la membrane mais dysfonctionnelle -> potentiateurs
  • IV : défaut d’ouverture du canal -> potentiateurs
  • V et VI : amplificateurs : action au niveau du promoteur pour augmenter la quantité de protéine produite
  • VI : stabilisateurs interfèrent avec le protéasome et évitent la dégradation de CFTR.

2012 NEJM Ivacaftor : n’agit que sur les mutations de classe III (3%)
2014 Lancet Respir Med : Lumacaftor + Ivacaftor : combinaison potentiateur + correcteur (permet de court-circuiter le contrôle de qualité) permettant de couvrir les classe II.
2019 NEJM : trithérapie Elexacaftor+ Ivacaftor + Tezacaftor : potentiateur + 2 correcteurs.