7 - croissance et division cellulaire 2 Flashcards

1
Q

qu’ont permis d’identifier des études génétiques du cycle celR

A

identification de gènes régulateurs

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Q

2 types enz régulatrices

A

kinases et phosphatases (enlève P)

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3
Q

cdk1 (4)

A
  • intégrateur de signaux
  • influence capacité division de cell
  • point de contrôle pour progression à travers CDC (cycle de division celR)
  • présence cycline = 1 des signaux intégrés
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4
Q

que permettent de voir les mutants ds cycle celR

A

quelle(s) prot essentielles pour division celR = composants essentiels ou éléments régulateurs

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5
Q

gènes isolés chez S.pombe : impliqués ds CDC (6)

A
  • cdc 2 : S/T kinase cycline-dépendante (cdk1, M-cdk)
  • cdc13 : cycline de phase M (cycline B)
  • cdc25 : Tyr phosphatase, substrat = cdc2
  • wee1 : Tyr kinase, subtrat = cdc2
  • Rum1 : inhibiteur de CDK
  • Cak1 : prot kinase activateur de cdc2-cdc13
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6
Q

cdc25 et wee1 (5)

A
  • wee1 = Tyr kinase -> phosphorylation + inhibition M-cdk, sans frein -> CDC trop rapide
  • cdc25 -> Tyr phosphatase -> déphosphorylation + act° M-cdk
  • act° cdc25 par M-cdk => positive feedback loop (inact° wee1 en même temps que act° cdc25)
  • seuil Qt cycline pdt mitose = boucle rétroaction positive -> compt interrupteur
  • signal envoyé par ADN en réplication -> phosphorylation + inhibition cdc25 == inhibiteur de formation de MPF + passage par Chk1 (check point kinase)
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7
Q

les CKI (inhibiteurs des kinases cycline dépendant) (3)

A
  • Rum1 et Sic1 (homologue Rum1 ds levure) -> inhibition S-cdk + M-cdk MAIS pas G1/S-cdk
  • régulation du système
  • act° Sic1 par déphosphorylation qd APC inactive CDK en fin phase M -> assurance aucune M-cdk active en G1
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8
Q

les CAK (cdk activating kinase)

A

Cak1 = prot kinase -> act° M-cdk par phosphorylation de sous-unité kinase

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9
Q

CDK intègre pl. signaux (4)

A
  • présence de cycline
  • absence inhibiteur (CKI)
  • absence phosphate inhibiteur (ajouté par Wee1)
  • présence phosphate activateur (ajouté par CAK)
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10
Q

gènes causant transformation (modèle cancer) (4)

A
  • peuvent être des régulateurs de CDC
  • défaut ds mécanisme contrôle du CDC -> prolifération anarchique cells
  • act° Ras par facteurs de croissance (PGDF) ou par intégrines (via FAK)
  • E2F = FT pour gènes dont produits utilisés pour réplication ADN
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11
Q

caractéristiques cells “transformées” (3)

A
  • exigence réduite aux facteurs de croissance
  • indépendantes de ancrage sur MEC
  • morphologie sphérique (anormale)
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12
Q

oncogène (3)

A
  • gène avec potentiel de causer 1 cancer, dérivé d’1 gène régulateur normal du CDC
  • via virus -> promotion mutations
  • mutations “gain de fonction” = changement propriété, mutant dominant (1 copie suffit) ou récessif (2 copies)
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13
Q

transformation : v-Src (3)

A
  • dérivé de c-Src (Tyr kinase ds voie signalisation des intégrines)
  • actif en permanence = cell don’t need ancrage
  • gain de fonction -> attachement indépendant des intégrines
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14
Q

transformation : v-ErbB (2)

A
  • dérivé de c-ErbB, RTK de famille récepteurs d’EGF
  • tronqué + actif en permanence -> cell don’t need facteurs de croissance
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15
Q

transformation : v-Ras (2)

A
  • encode 1 Ras active en permanence
  • effet de synergie entre surexpression Myc et présence v-Ras
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16
Q

transformation : Rb (rénitoblastome) (2)

A
  • résultat mutation ds 2 copies de prot Rb
  • prot Rb = suppresseur de tumeur + subtrat du SPF
17
Q

transformation : p53 (3)

A
  • mutation ds tous cancers humains
  • suppresseur de tumeur -> induit synthèse d’1 CKI qd activé
  • empêche réplication génome endommagé
18
Q

par quoi peut être compromise la mitose (3)

A
  • par comportement des MT
  • contrôle -> rôle MPF + (dé)phosphorylation substrats
  • mvmt -> compt MT + moteurs protéiques dynéine et kinésine
19
Q

prophase (9)

A
  • condensines + prot assos aux MT parmi substrats
  • MPF (kinase) -> phosphorylation condensines
  • MAPs -> polymérisation / catastrophines -> dépolymérisation
  • aug° instabilité dynamique en phase M -> act° prot acc aux MT par phosphorylation
  • moteurs protéiques -> stabilisation fuseau mitotique + séparation pôles
  • ancrage MT aux sites précis -> éloignement pôles
  • monomère kinésine-14 dirigé vers ext - -> rapprochement pôles
  • dimère kinésine-5 dirigé vers ext + -> éloignement pôles
  • création tension + écartement MT
20
Q

prométaphase (7)

A
  • lamines nucléaires + filaments intermédiaires phosphorylés pour être désassemblés
  • liaison kinétochores de chq chromatide aux MT d’1 des pôles du fuseau mitotique
  • kinésine-4, 10 -> kinétochores vers coté +
  • dynéine -> kinétochores vers coté -
  • => tension pr alignement chr
  • renfo interactions entre MT et kinétochores -> act° prot Ndc80
  • kinétochores non attachés -> liaison + act° prot MAD2 -> inhibiteur Cdc20-APC -> pas transition vers anaphase (point contrôle pour sortie phase M)
21
Q

métaphase (3)

A
  • tapis roulant de MT
  • mvmt sous-unités de ext + vers - des pôles
  • migration tubuline des kinétochores vers pôles de fuseaux
22
Q

anaphase (3)

A
  • act° APC par MPF -> séparation chrtides soeurs
  • anaphase A (séparation chrtides) : dépolymérisation ext + au kinétochore et dépolymérisation aux pôles (ext -) => raccourcissement MT kinétochoriens
  • anaphase B (séparation pôles) : mvmt kinésine-5 vers ext + et dynéine vers ext -, polymérisation des tubulines dépolymérisées des MT kinétochoriens aux MT chevauchants
23
Q

télophase (2)

A
  • dégradation cycline par APC
  • inact° CDK -> déphosphorylation substrats (condensines + lamines nucléaires + MAPs) par phosphatases constitutives
24
Q

de quoi sont responsables les moteurs protéiques

A

mvmts -> élongation MT polaires pour éloignement pôles du fuseau

25
Q

que déclenche la CDK

A

changements confo dans réseau de MT

26
Q

par quoi diffèrent les gamètes mâles et femelles

A

structure + mode de formation

27
Q

que doit posséder oeuf pour être capable se développer et former 1 ind (2)

A
  • réserves
  • spermatozoïde apporte juste 1 gamme de chr haploïdes
28
Q

production gamètes (3)

A
  • par méiose -> 1 phase S puis 2 phases M
  • méiose I -> séparation chr homologues
  • méiose II -> séparation chrtides soeurs (comme mitose)
29
Q

méiose (4)

A
  • système CDK/cycline avec kinase additionnelle Ime -> cells passent de MII au lieu de phase S
  • appariement chr homologues = critique pr méiose -> dbt : “bouquet” de télomères à env nucléaire (zygoyène)
  • éléments latéraux + centraux du complexe synaptonemal tiennent (e) chr homologues à env nucléaire
  • gamètes = cells germinales primordiales -> migration ds embryon -> formation gonades
30
Q

qu’est-ce qui peut former 2 types de gamètes

A

PGC

31
Q

Sry (Sex-determining region on Y) (3)

A
  • FT exprimé ds cells de soutien
  • signaux chimiques sécrétés -> formation spermatozoïdes par PGC
  • qd Y présent -> exp° Sry pr ≠° en cells mâles (voie par défaut = femelle) 3
32
Q

ovogenèse (4)

A
  • ovules sont grands
  • méiose bloquée en prophase I car 1 copie en + du génome
  • cytokinèse est inégale
  • ovules gavés par cells folliculaires
33
Q

spermatogenèse (6)

A
  • dbt méiose à puberté + est continuelle
  • spermatides sont haploïdes
  • cells petite taille -> réduction Qt cytoplasme
  • tubes cytoplasmiques -> contrôle même matériel génétique pr fécondation
  • ponts cytoplasmiques -> assurance accès gènes de cell diploïde originale pour toutes cells haploïdes
  • cells en contact avec lame basale -> IDt cell souche
34
Q

à quoi correspond la forme des cells

A

à leur fonction