1.2-clonage moléculaire et vecteurs Flashcards

1
Q

c’est quoi les 5 étapes du clonage

A

1) préparation du vecteur
2) préparation de l’insert
3) ligation de l’insesrt au vecteur
4) transformation des bactéries
5) criblage des colonies (sélection)

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2
Q

c’est quoi le clonage moléculaire

A

obtenir un morceau d’ADN à partir du génome et l’inserer dans un vecteur d’ADN

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3
Q

c’est quoi un plasmide

A

vecteur d’information génétique chez les bactéries

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4
Q

c’est quoi les enzymes de restriction de type II

A

endonucléases qui reconnaissent une séquence spécifique (souvent palindrome) et coupent à un endroit spécifique

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5
Q

c’est quoi le nomenclature des enzymes de restriction (que signifient les lettres)

A

1ere lettre=genre
2e et 3e lettre=espèce
4e lettre=souche
5e lettre/chiffre=# d’ordre de caractérisation de l’enzyme

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6
Q

c’est quoi les 4 enzymes qui peuvent être utilisées pour modifier les sticky/blunt ends

A

1) mung bean nuclease
2) klenow polymérase
3) calf alkiline phosphatase
4) T4 polynucléotide kinase

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7
Q

rôle de la mung bean nucléase

A

enlève le sticky end pour former des blunt
ends

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8
Q

rôle de la klenow polymérase

A

ajoute des nucléotides aux bouts francs pour créer des sticky ends

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9
Q

rôle de la calf alkaline phosphatase

A

dephosphoryle l’ADN

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10
Q

rôle de la T4 polynucléotide kinase

A

phosphoryle l’ADN en présence d’ATP

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11
Q

différence entre enzymes de restriction compatibles et non compatibles

A

compatibles= après le clivage par l’enzyme, les sticky ends sont complémentaires et lient à un l’autre
non compatibles=il faut modifier la séquence d’ADN avec autres enzymes pour rendre les bouts complémentaires

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12
Q

3 façons de préparer un insert pour le clonage

A

1) par digestion avec enzymes de restriction
2) par PCR
3) par synthèse chimique

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13
Q

comment on prépare l’insert pour un clonage par PCR

A

on ajouter des sites de restriction aux amorces PCR qui seront amplifiés grâce au PCR

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14
Q

3 étapes du PCR

A

1) dénaturation du DB
2) hybridation des amorces sur l’ADN
3) élongation par PCR

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15
Q

comment la ligation de l’insert et du vecteur se fait

A

à l’aide d’une ligase (comme T4 ADN ligase par exemple) en présence de Mg2+ et ATP pour créer une liaison phosphodiester

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16
Q

c’est quoi la transformation des bactéries

A

intégration (naturelle ou intentionnelle) d’un fragement d’ADN étranger dans une cellule

17
Q

2 façons de rendre les bactéries prêtes pour recevoir le plasmide (transformation)

A

1) par choc thermique (traitées au CaCl2)
2) par électroporation

18
Q

2 types de criblages possibles pour la sélection des colonies

A

1) avoir un gène de résistance à l’antibiotique
2) sélection bleu/blanc avec LacZ et X-gal

19
Q

comment fonctionne la sélection blue/blanc avec Xgal et LacZ

A

l’insert est integré dans le MCS qui se trouve dans le gène de lacZ.
Donc colonies avec plasmide sont blancs car pas de fonctionnement de LacZ et colonies sans plasmide sont bleues car LacZ fonctionnel et change Xgal en bleu

20
Q

c’est quoi le séquencage sanger

A

séquencage de l’ADN à l’aide des ddNTPs qui n’ont pas un OH 3’ libre et donc arrêtent la polymérisation

21
Q

3 étapes majeurs du séquencage sanger

A

1) réaction de PCR
2) produits de PCR
3) migration sur capillaire/électrophorèse

22
Q

5 composantes importantes pour la réaction de PCR pour le séquencage sanger

A

1) ADN matrice
2) amorces
3) ddNTP
4)dNTP
5)polymérase

23
Q

5 limites du clonage moléculaire classique

A

-disponibilité des sites de restiction
-compatibilité des sites de restriction
-orientation de l’insert
-inserts contaminants
-chronophage

24
Q

c’est quoi les 3 méthodes de clonages altérnatives

A

1) clonage TOPO
2) clonage Gateway
3) gibson assembly

25
Q

c’est quoi le clonage TOPO

A

clonage qui utilise la topoisomérase I pour liger l’insert et le vecteur en créant des liaisons covalentes

26
Q

3 avantages d’utiliser le clonage TOPO

A

rapide, facile, clonage directionnel

27
Q

c’est quoi le clonage gateway

A

clonage basé sur la recombinaison homologue entre 2 séquences spécifiques appelées AttB et AttP qui permet le transfert d’un vecteur à l’autre

28
Q

2 avantages pour le clonage gateway

A

1) permet un transfert directionnel de l’insert entre différents vecteurs
2) utilisé pour applications protéomiques

29
Q

c’est quoi le gibson assembly

A

technique qui permet l’assemblage de multiples séquences (besoin de overlap de 20-40 nucléotides entre les séquences)

30
Q

3 composantes requises pour le gibson assembly

A

1) ADN ligase
2) ADN polymérase
3)exonucléase (3’->5’)

31
Q

4 étapes du gibson assembly

A

1) exonucléase digère les extremités 5’
2) les 2 overhangs sont complémentaires et s’alignent
3) ADN poly rallonge les extremités 3’
4) ADN ligase lie les extremités pour completer le DB