Variation génomique humain Flashcards

1
Q

Définition

1) Cytogénétique conventionnelle
2) Biologie moléculaire
3) Cytogénétique moléculaire

A

1) Étude à l’échelle de chromosome
2) Étude à l’échelle des nucléotides
3) Mis en évidence des variations du génome (entre les deux)

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2
Q

Définition

1) SNV
2) CNV
3) BCA

A

1) variation nucléotidique
2) variation déséquilibrée (copies)
3) variation équilibrée

2 + 3 = variation de structure

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3
Q

Décrire une caryotype

A
  • Condition : culture cellulaire + en métaphase pour que les K soient condensés
  • Résolution = 5 à 10 Mb
  • Permet d’analyser la structure et le nombre de K
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4
Q

Décrire l’ACPA

Analyse chromosomique sur puce à ADN

A
  • Résolution = 30-50 kb
  • mise en compétition des copies d’ADN du patient témoin et “malade”
  • Rouge = trop de copie et vert = peu de copie

Exemple d’ACPA : CGH Array

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5
Q

Quel est le principal inconvéniant d’un CGH Array ?

A

Il permet d’analyser uniquement les CNV (variations déséquilibrées)

c’est un examen quantitatif

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6
Q

Expliquer la PCR

A

Amplification des brins d’ADN avec des polymérases et des amorces

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7
Q

Expliquer le séquençage de Sanger

A
  • Amplification par PCR
  • On fait ensuite une réaction de séquence : on met des dNTP normaux et avec fluorochromes. Dès qu’un dNTP avec fluorochrome se fixe on arrête le prolognement
  • On utilise une électrophorèse pour mesurer la taille des brins et séquencer à la suite les nt
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8
Q

Les limites du séquençage de Sanger

A
  • Temps de lecture long
  • Détection de mosaïque si > 20%
  • Parallélisation (faire plrs patients en même temps) limitée au nombre de capillaires indépendants
  • Il peut lire mais pas quantifier donc ne détecte pas les exons en trop ou en moins = pas de détéction des réarrangements > 1kb
  • Taille de lecture (résolution) limitée à 800-1000 bases
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9
Q

Étapes de NGS

A
  • Choisir les parties qu’on veut analyser puis faire un lavage
  • On multiplie les brins et on utilise une polymérase qui va créer un brin complémentaire avec des dNTP fluorochromes
  • Ces fluorochromes vont émettre des signaux pour qu’on trouve les séquences

Ressemblance avec séquence de 1e génération

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10
Q

La différence entre NGS et séquençage de Sanger

A
  • Sanger : ciblage exon par exon
  • NGS : on séquence tout en même temps et en parallèle
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11
Q

Séquençage de 2e et 3e génération

A
  • 2e G : séquençage de tout l’ADN génomique et massif en parallèle
  • 3e G : pas de PCR + séquençage d’une seule molécule d’ADN
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12
Q

Avantages d’un NGS

A
  • Séquençage de nombreux gènes en parallèle
  • Meilleure sensibilité de découvrir des mosaïques
  • Diminution du coût d’équipement
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13
Q

Inconvéniant d’un NGS

A
  • Volume de donnée à analyser et stocker ++
  • Nombreux variants de signification inconnus, variants délétères non solicités
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14
Q

Principaux type de variant en pathologie

A
  • Variation de qq bases
  • Anomalies K
  • Expansion de triplets (dur à trouver cependant)
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15
Q

Médecine des 4 P

A
  • Préventive
  • Participative
  • Personnalisée
  • Prédictive
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16
Q

4 enjeux du plan

A
  • économique
  • technologique
  • scientifique et clinique
  • santé publique
17
Q

Problèmes de séquençage

A
  • Ethique
  • Financier
  • Informatique
  • Ressources humaines
18
Q

Définition

1) Faux-sens
2) Non-sens
3) Frameshit

A

1) changement de protéine par changement d’1 AA
2) Création codon stop
3) Délétion ou ajout