Microbio 1 + 2 (examen) Flashcards
Qu’est ce que c’est la coloration gram?
-Coloration la plus utilisée en microbio
-Composition de la paroi cellulaire permet de séparer bactéries gram+ (bcp de peptidoglycans, mauve) de gram– (peu de peptidoglycans, rose)
-Permet de visualiser la morphologie de la bactérie (cocci vs bâtonnets)
Quels sont les avantages de la coloration de gram?
Possible de faire coloration sur échantillon et colonie
Sur échantillon :
-permet d’évaluer qualité de l’échantillon (critères de rejet des expectorations et sécrétions vaginales)
-permet d’avoir une idée de la présence ou non de bactéries dasn certains liquides (surtout utile pour les liquides biologiques normalement stériles, valeur critique)
Sur la colonie :
-étape initiale de l’identification bactérienne
Quels sont les désavantages de la coloration gram?
-échantillons hétérogènes (erreur d’échantillonnage, ex: on fait 3 frottis et on voit aucune bactérie sur 2 mais bcp sur le dernier)
(ex : contamination)
-échantillon vivant (problème de reproductibilité, enjeu du BNQ)
-lecture est dépendante de l’humain (surtout problèmes lorsqu’identification ou résultats basés seulement sur la coloration)
-note pour interprétation : ce n’est pas pcq on ne voit pas les bactéries qu’il n’y en a pas
Pourquoi prélever des bouteilles anaérobies et aérobies pour l’hémostase? Quel est le volume idéal?
-Objectif: rechercher la présence de bactéries (parfois de levures) dans la circulation sanguine
-Volume de sang idéal = 20mL (10mL aé et 10mL ana (rare et retrouvé des fois chez patients avec chirurgie bariatrique)
note: ana car certaines bactéries aé croient mieux dans les bouteilles ana
Qu’est-ce que les médecins prescrivent habituellement pour l’hémoculture?
2x hémocultures et donc prélève 4 bouteilles (2 aérobies et 2 anaérobies pour 40mL total)
Que prendre en considération pré-clinique lors d’hémoculture (comment faire le prélèvement)?
-Lavage des mains
-Avant prélèvement et après, importance de bien aseptiser avec lingettes le lieu de la ponction et les bouchons des tubes d’hémocultures
-On récolte 10 mL de sang par bouteille (aé- en premier et ana- en 2e)
-On fait 2 prélèvement avec 15-20 minutes de différences
Pourquoi prélever 2 hémocultures, soit 40 mL de sang?
-probabilité de trouver bactérie dans le sang dépend du volume de sang cultivé
-Plus le volume est grand, plus la probabilité de trouver les bactéries est grande
-Risque « coût-bénéfice » devient moins intéressant après 40 mL
Pourquoi prélever les hémocultures en 2 temps?
-Évaluer la contamination cutanée (contamination 2x pareille = peu probable)
-Évaluer le caractère continu de la bactériémie (système vasculaire infecté, patient envoi bactérie dans le sang de temps en temps)
Quels sont les avantages du Maldi-TOF (techniques d’identification)?
-résultats supérieurs aux méthodes conventionnels
-temps de réponse bcp plus rapide pour moindre coût
-étape de dépôt de l’échantillon critique (courbe d’apprentissage rapide et utilisation des outils de la compagnie)
-Technique simple et préparation des échantillons sur cellules complètes
-microscopie sur thalles filamenteux (pour identification en mycologie)
Quels sont les limitations du Maldi-TOF (techniques d’identification)?
Problème de l’identification de Shigella spp vs E.coli :
-génétiquement pareil donc pas de différence par séquençage et par Maldi-TOF
-autres limites = pas d’impact clinique
-long et certaines souches ne sporules pas (stérile) donc nécessite biologie moléculaire pour identifier. NO: JE NE SAIS PAS SI CA FAISAIT SUITE AU MALDI, je pense que c’était juste pour suite de identification
Est-ce que la standardisation de l’antibiogramme est important?
Oui car importance de la reproductibilité inter et intra laboratoire, puisqu’impact réel d’un mauvais résultat sur patient.
Comment faire pour avoir une standardisation de l’antibiogramme?
-Inoculum standard basé sur la turbidité de la suspension bactérienne (McFarland)
-gélose à composition standardisé ou semi-standardisé
-quantité d’antibiotique standardisé
-incubation dans atmosphères
-températures contrôlées pour des durées précises
-lecture standardisée.
Est-ce que les critères d’interprétation des antibiogrammes sont souvent changés?
Nécessite de souvent être changé et refaire vérif en fonction du CLSI (feuille avec infos sur bactérie, contrôles à tester et instructions précises)
Comment faire le contrôle qualité des antibiogrammes?
Obtenir souches contrôles standardisées de manufacturiers autorisés (ATCC) ensuite maintien/conservation des souches par protocoles standardisées
-Contrôle journalier avec tableaux de références des valeurs attendues pour chaque combinaison souche/ATB (tjrs tester nouveaux lots de géloses et antibiotiques)
Quels sont les types d’erreurs des antibiogrammes?
-aléatoires (valeurs de référence = 95% du temps)
-identifiables (majorité, ex: oublie disque/mauvaise gélose/mauvaise souche)
-systémiques (doit être investigué puisque pas corrigé par reprise, ex: lot défectueux)
Qu’est-ce qui est fait avec des résultats avec des erreurs dans l’antibiogramme?
Action dépend :
-de l’écart du contrôle
-du reste de l’antibiogramme
-de l’urgence de la situation
-du type d’erreur (identifiable ou non)
Y a-t-il une vérification/assurance qualité pour l’antibiogramme?
-pour diffusion disque: pas de vraie vérification car méthode de référence qui ne peut être facilement comparée (CQI rigide et normée)
-on en retrouve pour systèmes commerciaux comme M52
Qu’est-ce que le M52? Comment cela fonctionne?
-Verification of commercial microbial susceptibility testing systems
-deux paramétriques à vérifier = fidélité et précision
-pour systèmes d’identification par groupes de microorganismes (pas de différence entre vérif d’un MALDI-TOF et d’un système biochimique)