cours 3 Flashcards

centrifugation et précipitation

1
Q

principe de centrifugation

A

Une particule (cellule, organite, macromolécule…) est soumise à une force quand le tube est
tourné à une certaine vitesse
F = mew2r

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2
Q

RPM

A

On exprime la vitesse de centrifugation en « RPM »
révolutions par minute
En fonction du modèle de centrifugeuse et du type de rotor utilisé

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3
Q

RCF

A

La force de centrifugation relative (RCF) en « g »
la force qui s’exerce sur une particule en rotation, peu importe le type de rotor
1 RCF = 1x l’accélération gravitationnelle terrestre (9,81 m/s2)

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4
Q

sédimentation

A

La résistance du milieu au déplacement de la particule constitue une force de
flottaison (poussée d’Archimède) qui s’oppose à la sédimentation de la particule.

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5
Q

que se passe-t-il sur la sédimentation si la particule est plus dense

A

Grande vitesse de sédimentation

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6
Q

que se passe-t-il sur la sédimentation lorsque le milieu est plus dense

A

Petite vitesse de sédimentation

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7
Q

de quoi dépend la vitesse de sédimentation

A

de la masse ET densité d’une particule

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8
Q

vrai ou faux
La forme d’une particule a aussi un effet

A

vrai
résistance hydrodynamique

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9
Q

types de centrifugeuses

A
  • Différents rotors (ou non), volumes, vitesses,
  • Avec ou sans contrôle de vitesse d’accélération ou de décélération
  • Avec ou sans contrôle de température de centrifugation
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10
Q

types de rotors

A

rotor à angle fixe
rotor à godets oscillants (swinging bucket)

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11
Q

centrifugation différentielle

A
  • Permet de séparer +/- grossièrement les constituants
    cellulaires selon leur vitesse de sédimentation
  • Séparation ou fractionnement d’un homogénat selon
    taille (masse), densité et forme
  • On procède à une série de centrifugation avec des
    forces centrifuges croissantes
  • Surtout utilisée pour la récupération de culots et
    l’obtention de préparations partiellement pures
    d’organelles et/ou macromolécules
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12
Q

à quoi peut servir la centrifugation différente par exemple

A
  • Possibilité de répéter la
    procédure avec un culot
    resuspendu dans un tampon
    isotonique (nettoyer le culot)
  • Possibilité de combiner
    avec d’autres types de
    centrifugation
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13
Q

comment faire pour valider si le culot de la centrifugation différentielle contient les éléments essentiels

A

validation par les biomarqueurs

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14
Q

centrifugation sur gradient de densité

A
  • Souvent combinée à la centrifugation
    différentielle
  • On dépose notre échantillon sur une certaine
    solution possédant un gradient de densité
  • Gradient discontinu (sur coussin) ou continu
  • Méthode la plus utilisée pour la séparation
    des organelles et macromolécules
  • Une seule vitesse de centrifugation vs
    centrifugation différentielle
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15
Q

2 catégories de centrifugation sur gradient de densité

A

centrifugation isopycnique
centrifugation zonale sur gradient

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16
Q

centrifugation isopycnique

A
  • Séparation selon la densité des particules
  • La densité de la particule à purifier doit être
    entre les limites du gradient
  • On centrifuge à l’équilibre, chaque particule
    se stabilisera à la position à laquelle la densité
    du gradient est égale à leur densité
  • La masse impacte seulement la vitesse de
    sédimentation vers la position d’équilibre
17
Q

exemple de centrifugation isopycnique

A

purification + mesure de densité,
purification protéines, acides nucléiques,
organelles, types cellulaires, etc.

18
Q

gradient généré au préalable

A

on dépose notre échantillon au-dessus du gradient

19
Q

gradient autogénérés

A

on mélange notre
échantillon avec la solution gradient

20
Q

centrifugation zonale sur gradient de densité

A
  • Surtout utilisée pour séparer des particules avec
    des densités similaires
  • Séparation selon taille (masse), les plus lourdes
    sédimentent plus rapidement
  • La densité de la particule à purifier doit être plus
    grande que la densité la plus élevé du gradient
  • On ne centrifuge pas à l’équilibre, le gradient sert à
    ralentir la sédimentation (pas trop longtemps!)
21
Q

exemple centrifugation zonale sur gradient de densité

A

purification d’anticorps

22
Q

Centrifugation isopycnique sur gradient continu de ClCs

A

Une solution ClCs de densité donnée forme
spontanément un gradient de densité continu
lorsque soumise à une force de centrifugation
* La résolution atteint le centième d’unité de densité
* On mélange l’échantillon avec la solution de ClCs
* Les molécules vont se déplacer jusqu’à ce que la
densité du milieu soit égale à leur densité
* On peut ensuite recueillir les différentes fractions
(ADNg, plasmides, ARN, etc.)

23
Q

Centrifugation zonale sur gradient continu ou discontinu de sucrose

A
  • Gradient de sucrose continu ou discontinu
    préformé avant la centrifugation
  • On dépose notre échantillon sur le gradient
  • Les molécules vont sédimenter plus ou moins
    rapidement selon leur masse
  • On peut ensuite recueillir les différentes fractions
24
Q

principe de précipitation

A

Réduction de la solubilité de molécules (ADN,
protéines, etc.) via altération des interactions
avec le solvant (eau)
* Changement de pH, sels, ajout de solvants,
température, etc.
* Formation d’un précipité sous forme d’agrégats
en solution
* La sédimentation est accélérée par la
centrifugation

25
précipitation de protéines au sulfate d'ammonium
* Chaque protéine est plus ou moins soluble en solution selon sa composition * La modification de la force ionique de la solution permet de précipiter plus ou moins rapidement les protéines * À faible concentration: les ions neutralisent les charges ioniques en surface = maintien de la solubilité (salting-in) * À haute concentration: les ions compétitionnent pour les molécules d’eau = sortie de solution (salting-out
26
salting in
augmentation de la solubilité d’une protéine dans l’eau par l’ajout de faibles concentrations de sels. * Les ions salins interagissent avec les protéines, les ions de même charge augmentent la répulsion entre les protéines, ce qui réduit leur agrégation → favorise leur solubilité * Les ions (qui sont hydrophiles) augmentent les interactions des protéines avec le solvant aqueux → favorise leur solubilité
27
salting out
diminution de la solubilité d’une protéine dans l’eau par l’ajout de fortes concentrations de sels. * L’ajout de hautes concentrations de sels très hydrophiles amène la séquestration des molécules d’eau par ces ions * La quantité de molécules d’eau disponible pour solubiliser les protéines diminue, ce qui fait précipiter les protéines
28
pourquoi choisir le sulfate d'ammonium
peu couteux, très soluble, et ne dénature pas les protéines (stabilise leurs structures!)
29