Chapitre 5 - Immunotechniques Flashcards

1
Q

Qu’est-ce que le test d’hémagglutination ?

A
  • C’est une très vielle technique
  • On incube différentes dilutions d’un anti-sérum avec une quantité constante de GR
  • Les GR se déposent différemment dans le puits selon qu’ils sont agglutinées ou pas : le réseau formé par l’agglutination couvre une grande surface au fond du puit
  • Pour déterminer le titre de l’anti-sérum, on fait l’inverse de la plus grande dilution donnant une réponse positive.
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2
Q

Explique moi le test d’hémagglutination pour le virus de l’influenza.

A
  • Les GR possèdent des récepteurs d’acide sialique qui reconnaissent les HA présent à la surface du virus de l’influenza.
  • La liaison Virus-HA avec récepteur des GR provoquent leur agglutination.
  • L’incubation des GR avec un sérum d’une personne qui est vacciner (Ac anti-influenza (Anti-HA)).
  • Avec plusieurs dilutions, on est capable de trouver la concentration d’Ac nécessaire pour neutralisé le virus et ainsi éviter l’agglutination des GR.
  • Le titre sera la dernière réaction négative
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3
Q

Qu’est-ce que le Latex agglutination test?

A
  • Un test très rapide (~ 1 à 5 minutes), robuste et simple
  • Ce test est très semblable à l’hémagglutination mais on utiliser des billes de latex couplées avec l’Ag.
  • La présence d’Ac contre l’Ag = agglutination des billes
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4
Q

Qu’est-ce qu’un anticorps primaire ?

A

c’est un anticorps contre une cible donnée.

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5
Q

Qu’est-ce qu’un anticorps secondaire?

A
  • C’est un Ac anti-anticorps
  • Il peut être spécifique aux Ig de lapin, de chèvre, de souris, de rats, etc.
  • Il reconnaît la partie Fc de l’Ac primaire
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6
Q

Qu’est-ce qu’un anticorps couplé ?

A
  • C’est un Ac couplé à un agent coloré ou fluorescent
  • Il peut aussi être couplé à un enzyme dont l’activité peut être mesurée à l’aide de son substrats qui devient coloré après la réaction

ex: Phosphatase alcaline: réactif incolore à coloré

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7
Q

Explique moi ce qu’est un immunobuvardage de type western (western blot) et les 9 étapes de cette méthode après la migration initiale.

A
  • C’est une technique d’identification de protéine sur un gel SDS-PAGE

Étapes:

1) coloration du gel où la protéine d’intérêt à migré
2) Transfert sur une membrane de PVDF, de nylon ou de nitrocellulose
3) Blocage de la membrane par des protéines non-spécifiques comme le lait en poudre
4) Lavage
5) Incubation avec l’Ac primaire contre la protéine d’intérêt
6) Lavage
7) Incubation avec l’Ac secondaire anti-Ig couplé à une enzyme ou à un fluorophore
8) Lavage
9) Ajout du substrat, révélation et diagnostique.

Souvent on fait 2 gels SDS en parallèle, un coloré et l’autre pour l’immunobuvadage pour permettre la comparaison.

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8
Q

Qu’est-ce que et quel est le principe d’un RIA (Radio-immunoessai) ?

A
  • c’est une technique pour quantifier des protéines

Principe:

  • Dans une série de tubes, on incube l’Ac avec une quantité fixe de l’Ag radiomarqué et des quantités croissantes de l’Ag non-marqué
  • l’Ag non-marqué entre en compétition avec l’Ag marqué.. ce qui permet de faire une courbe d’étalonnage.
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9
Q

Quelles sont les 4 composantes essentielles pour effectuer une RIA (Radio-immunoessai)?

A

1) Un Anticorps spécifique pour l’Antigène fixé à un substrat solide
2) Ag pur et radiomarqué (Ex: iode 125)
3) Ag pur et non-marqué, en quantité connu qui va servir de références
4) l’échantillon a analyser
- Pour l’échantillon, on a seulement à faire une réaction de compétition avec l’Ag radiomarqué, le degré de compétition indique la quantité.

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10
Q

Quelles sont les 9 étapes d’un RIA?

A

1) Dans un puits tapissé d’Ac spécifique, ajouter une quantité fixe d’Ag radio-marqué
2) lavage et calcul de la quantité lié aux Ac
3) Ajouter au même puits, un mélange Ag marqué en quantité fixe avec la quantité #1 Ag non-marqué.
4) Lavage et calcul de la quantité Ag marqué lié aux Ac
5) Ajouter au même puits, un mélange Ag marqué en quantité fixe avec la quantité #2 Ag non-marqué
6) Lavage et calcul de la quantité d’Ag marqué lié aux Ac
7) Faire la courbe d’étalonnage (Y: cpm lié ; X: dose Ag non-marqué) avec les données recueillies aux étapes 2,4 et 6. On sait quelle quantité d’Ag il faut pour “tasser” l’Ag radioactif.
8) Faire une nouvelle réaction avec une dose fixe d’Ag marqué avec l’échantillon à concentration inconnue d’Ag
9) déterminer la quantité d’Ag présent dans l’échantillon en se référant à la courbe d’étalonnage

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11
Q

Qu’est-ce que le titre d’un Anticorps?

A
  • c’est la concentration minimale d’Ac avec lequel on obtient encore une réaction positive dans un essai
  • Souvent on indique l’inverse de la dilution maximale positive comme titre

Le titre dépend complètement de l’essai !!!
-la même préparation d’Ac va donner des titres différents dans des essais différents.

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12
Q

Quelles sont les 8 étapes d’un ELISA méthode pas sandwich ?

A

ELISA = enzyme-linked immunoadsorbant assay

1) Fixé l’Ag à un support solide (fond d’un puits)
2) Lavages
3) Ajout d’un Ac primaire
4) Lavages
5) Ajout d’un Ac secondaire couplé à une enzyme (peroxydase)
6) Lavages
7) Ajout du substrat de l’enzyme
8) Mesure de l’intensité de la coloration

La réaction est quantifiable car l’intensité de la coloration est proportionnel à la quantité d’Ag lié.

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13
Q

Quelles sont les 8 étapes d’un ELISA méthode sandwich ?

A

1) Fixer l’Ac anti-XYZ sur un support solide (fond du puits)
2) Lavages
3) Ajout de l’extrait cellulaire contenant la protéine XYZ, Ajouter des dilutions différentes à différents puits.
4) Lavages
5) Ajout de l’Ac couplé (qui doit reconnaitre un épitope différent mais sur le même Ag)
6) Lavages
7) Ajout du substrat que l’enzyme peut tranformer
8) Mesure de l’intensité de la coloration

La réaction est quantifiable car l’intensité de la coloration est proportionnel à la quantité d’Ag lié

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14
Q

Comment est-il possible de déterminer la réponse immunitaire d’un patient face à un pathogène donnée?

A

Souvent on ne chercher pas le pathogène en soit mais on va chercher les Ac développer par le patient contre celui-ci

il suffit de faire une ELISA pas sandwich:

  • on purifie l’Ag du pathogène et on le fixe au fond du puits
  • Ensuite on ajouter différentes dilutions du sérum patient qui contient les Ac
  • Lavages, Ac secondaire couplé et quantification de la réaction
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15
Q

Qu’est-ce que la méthode immunofluorescence?

A
  • on ajoute a un Anticorps soit une molécule coloré (chromophore) ou une molécule fluorescente (fluorochrome).
  • La fluorescence est l’absorption d’un photon d’une certaine longueur d’onde et l’émission d’un photon de longueur d’onde plus longue ( moins énergétique)
  • La mesure de la fluorescence émise est proportionnel au nombre d’Ac fixé dans la réaction
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16
Q

Quels sont les 3 méthodes de mesure d’immunofluorescence?

A

1) La FITC = Fluoresceine-isothiocyanate:
- beaucoup utiliser en cytométrie en flux
- Ce dérivé réagit avec les groupes amines et sulfhydryles des protéines

2) l’immunofluorescence primaire:
- l’Ac primaire est marqué par une fluorophore
- Le rendement est souvent moins grand puisqu’un seul Ac primaire se lie a un Ag.

3) l’immunofluorescence secondaire:
- l’Ac secondaire est couplé avec un fluorophore
- Le rendement est meilleur car plusieurs Ac secondaire peuvent se lié sur l’Ac primaire.

17
Q

Quel est le principe du FACS (Fluorescence-activated cell sorting) ?

A
  • c’est la cytométrie en flux qui permet de faire défiler des particules, molécules ou des cellules à grandes vitesse dans le faisceau d’un laser, en les comptant et en les caractérisant.
  • Il s’agit d’analyser les signaux optiques ou physiques émis par une particule coupant le faisceau lumineux d’un laser. Ces signaux séparés par des filtres optiques sont collectés par des photomultiplicateurs (PMt), amplifiés, numérisé traités et stockés par un ordinateur par l’intermédiaire de miroir dichroïque et filtre optique.
  • Les données sont présentées en format 1D (fluorescence p/r au nombre de cellules) ou en format 2D (fluorescence 1 p/r à la fluorescence 2)
18
Q

Il faut être capable d’interpréter les résultats de FACS en 1 ou 2 dimension…

A

Voir labo immuno et notes de cours

19
Q

Qu’est-ce que l’immunoprécipitation?

A

c’est une technique qui permet la précipitation d’un antigène (protéine) en solution par un anticorps qui agglutine spécifiquement une protéine particulière. souvent utiliser pour isoler et concentrer une protéine précise parmi des milliers d’autres.

Les anticorps spécifiques sont lié solidement à des billes, puis ils seront mis en contact avec l’échantillon pour l’intéraction Ac-épitope. Finalement, on fait des lavages pour retirer les protéines non-liés puis centrifugation. Élution des protéines d’intérêt qui sont fixer sur les billes

20
Q

Quel type de support solide est utiliser pour l’immunoprécipitation ?

A
  • Des billes d’agarose coupler à la protéine A ou à la protéine G (qui lie Fc).
  • Cela permet la sédimentation par centrifugation.
  • possibilité aussi de coupler des Ac secondaire (anti-Ac) à des billes magnétiques.
  • Séparation grâce à des plaques aimantées.
21
Q

Comment fonctionne les Dip-stick (ex: test de grossesse) ?

A
  • il y a 4 sections différentes dans le test:
    1) L’endroit où on ajoute les Ag (la progestérone présent dans l’urine)
    2) un section qui possède des Ac anti-progestérone marqué
    3) une section qui possède des Ac anti-progestérone non-marqué et fixe
    4) une section qui possède des Anti-Ac non-marqué et fixe (contrôle)

L’échantillon d’Ag avance par capillarité dans le test. les Ag seront capté par les Anti-progestérones marquée s’ils sont présent. Par la suite, les Ac anti-progestérones marqué lié à l’Ag seront capté par les Ac anti-progestérone non-marqué et fixe, une coloration bleu (marquage) apparraîtra s’il y a présence de progestérone dans l’échantillon. Finalement, la dernière section qui sert de contrôle captera les Ac anti-progestérone marqué par leur fragment Fc qui prouvera que le test fonctionne.

Au final:

  • Présence de 2 barres = test positif
  • Présence de 1 barre = test négatif
  • Présence de 0 barre = test défectueux
22
Q

Pourquoi les tests Dip-Stick ne sont pas toujours utiliser en laboratoire?

A

Ces tests sont beaucoup moins sensible qu’ un ELISA puisqu’il n’y a pas d’Ac secondaire pour amplifier le signal.

Ils sont par contre beaucoup plus rapide et pratique à utiliser.

multitude de possibilité de test… Utiliser pour HIV, Ebola, fièvre jaune, etc. (voir diapo 44 à 46 pour ces test)