autres bactéries à gram négatif 1 Flashcards

1
Q

genre pseudomonas : gram, aérobie ? température ?

A

négatif
aérobie stricte
mésophile

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Q

(B) Citer les habitats possibles du genre Pseudomonas

A

dans le sol, les végétaux, et l‘eau = bactéries telluriques

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3
Q

pathogénicité pseudomonas ?

A

Pathogène opportuniste : bactérie zoonotique
= diarrhées, infections urinaires, infections nosocomiales, infection alimentaire

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4
Q

resistance pseudomonas

A

ESKAPEE

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5
Q

comparaison tableau pseudomonas

A

:)

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6
Q

(B) Citer les deux pigments produits par P. aeruginosa jouant un rôle dans le pouvoir pathogène

A

• Synthèse de pyoverdine
Sidérophore, pigment jaune-vert : P. aeruginosa, P. fluorescens, P. putida
pyocyanine pyoverdine pyorubine pyomélanine

• Synthèse de pyocyanine
Pigment bleu à activité bactériostatique contre les Grams positifs : P. aeruginosa

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7
Q

clinique pseudomonas

A

Infections nosocomiales
➢ Infections urinaires
➢ Surinfection de plaie
➢ Ulcère cornéen
➢ Pneumonie
Otites chroniques chez les chiens
Mammites chez la vache laitière

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8
Q

espèces atteintes pseudomonas

A

carnivores, ruminants, cheval, porc, vison, chinchilla, oiseaux, reptiles

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9
Q

pseudomonas Présence d’un … facilitant … est essentiel !

A

terrain
l’infection

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10
Q

pseudomonas résistance ?

A

Nombreuses acquises et naturelles

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11
Q

(B) Citer l’espèce pathogène chez le furet et les signes cliniques de l’infection

A

Pseudomonas luteola
→ Pleuropneumonie pyogranulomateuse chez le furet et infections cutanés

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12
Q

diagnostic pseudomonas

A

• Culture bactériologique
Milieu ordinaire à 37°C : croissance aisée entre 10 et 42°C
Diffusion de pigments
• Antibiogramme Indispensable

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13
Q

(A) Décrire en quoi P. aeruginosa peut être un dangereux pathogène
(B) Décrire quel moyen possède Pseudomonas qui peut compliquer le traitement (= en gras)
(B) Décrire la sensibilité aux antibiotiques des Pseudomonas

A

• Nombreuses résistances naturelles : Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, pipéracilline, cefazoline, chloramphénicol, trimethoprime + sulphonamide et tétracycline
• Nombreuses résistances acquises : Acquisition de mutations et/ou de gènes de résistance
• Formation de biofilms
• Résistance à certains désinfectants : Ammoniums quaternaires
• Moindre sensibilité aux antibiotiques : ESKAPE(E)

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14
Q

synthèse de biofilm régulée par le ?

A

quorum sensing

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15
Q

Genre Moraxellaceae nombre ?

A

13 genres

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16
Q

moraxella, forme, gram, capsule ? groupés en …

A

gros bacille, gram -, capsulé
diplococcobacilles

17
Q

culture bactérie moraxella

A

37°C sur gélose enrichie (gélose au sang) Colonies hémolytiques, d’environ 1mm de diamètre en 48h (croissance lente !)

18
Q

(A) Indiquer l’habitat de l’espèce M. bovis et le mode de transmission

A

Commensales des muqueuses : Homme et autres mammifères
M. bovis : conjonctive ou nasopharynx des bovins asymptomatiques (> 2 ans)
Transmission : contact direct ou insectes volants (mouches → transport)
Sensibles à la dessiccation → ne survivent pas bien loin de leur hôte

19
Q

pouvoir pathogène moraxella bovis

A

facteurs de virulence
Pili de type 4 : adhésion et colonisation de l’épithélium cornéen
Hémolysine : cytotoxine corrélée à la virulence

20
Q

(A) Décrire la maladie induite par M. bovis : nom et animaux touchés

A

Kérato-conjonctivite infectieuse bovine (KCBI)
- Facteurs environnementaux prédisposants → irritation des yeux : UV (soleil !), poussières, végétation/paille, mouches, …

Jeunes animaux (<2 ans)

• Surinfections : bactériennes, virales ou parasitaires, signes cliniques évolutifs :
- Cicatrisation et formation d’un cône rouge typique
- Œdème cornéen —> ulcération : larmoiement, blépharospasme, conjonctivite, ulcère cornéen, surinfection

21
Q

clinique moraxella bovis

A

Œdème cornéen → ulcération
➢ Larmoiement, blépharospasme, conjonctivite
➢ Ulcère cornéen
➢ Surinfection

22
Q

diagnostic moraxella bovis

A

culture bactérienne
Cicatrisation : tissu de granulation formant un cône rouge typique !
Écouvillon : récupérer des sécrétions lacrymales
Culture : Préciser au laboratoire que vous recherchez M. bovis

23
Q

antibiothérapie moraxella bovis

A

Généralement sensible à tous les antibiotiques utilisés en pratique
Traitement topique : si possible dès les premiers signes cliniques

24
Q

prévention moraxella bovis

A

Lutte contre les facteurs prédisposants : mouches et poussières
Vaccin : sur base des fimbriae (idem fimbriae des entérobactéries)

25
Q

acinetobacter :
forme
gram
spore
capsule
respiration
forme quoi ?

A

coco ides
gram négatif
non
non
aérobie stricte
biofilms

26
Q

acinetobacter caractéristiques

A

• Bactéries ubiquistes : environnementale (eau, sol, végétaux), flore commensale cutanée chez l’Homme
• Pathogène opportuniste en médecine vétérinaire et humaine : bactérie zoonotique Infections nosocomiales, infections urinaires, septicémies, infections de plaies, …
• Vecteur de résistances aux antibiotiques Appartient au groupe ESKAPE(E)

27
Q

acinetobacter baumanii : résistances

A

• Nombreuses résistances naturelles
Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, cefazoline et trimethoprime
• Nombreuses résistances acquises
Acquisition de mutations et/ou de gènes de résistance
• Formation de biofilms

28
Q

(A) Décrire la morphologie microscopique du genre Pseudomonas

A

Bacille à GRAM négatif, mobile polaire ou immobile
aérobie stricte, mésophile, oxydase +, croissance sur milieu ordinaire

29
Q

(A) Expliquer que les Pseudomonas pathogènes sont (pathogénicité ?) et sont responsables (types d’infections ?)
(A) Indiquer 3 localisations différentes d’infection par P. aeruginosa chez le chien

A

Pathogènes opportunistes :
Présence d’un terrain facilitant l’infection essentiel : immunodepression, plaie, traitement antibiotique, contamination iatrogène…

Infections nosocomiales :
-urinaires : vessie
-surinfection de plaie
-ulcère cornéen : cornée
-pneumonie : poumons
Otites chroniques chez les chiens
Mammites chez la vache laitière

30
Q

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Moraxella

A

Gros bacille à GRAM négatif, immobile et capsulé, groupés en diplococcobacilles
Culture bactériologique enrichie sur gélose au sang , croissance lente (48h)

31
Q

(B) Citer les points d’attention lors de l’envoi d’un prélèvement au laboratoire pour une identification de M. bovis

A

• Écouvillon : récupérer des sécrétions lacrymales
•Culture : Préciser au laboratoire que vous recherchez M. bovis (gélose enrichie au sang à 37°C, croissance lente)

32
Q

(B) Citer l’habitat des Acinetobacter

A

bactéries coccoides à GRAM négatif, immobiles, non sporulées, aérobie stricte
Bactéries ubiquistes : environnement (eau, sol, végétaux), flore commensale cutanée chez l’Homme
Bactérie opportuniste

33
Q

(B) Citer les 3 facteurs impliqués dans l’exceptionnelle résistance aux antibiotiques d’A. baumanii et des Pseudomonas

A

• Acquisition et transmission de nombreuses résistances (ESKAPE(E))
• Présence de résistances naturelles
• Biofilms

34
Q

(A) Décrire en quoi Acinetobacter baumanii peut être un dangereux pathogène

A

• Résistance aux antibiotiques : ESKAPEE
• Nombreuses résistances naturelles : Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, cefazoline, trimethoprime
• Nombreuses résistances acquises : acquisition de mutations et / ou de gènes de résistance
• Formation de biofilms