Autres bactéries à Gram - 3

Question 1

(A) Décrire la morphologie microscopique du genre Brucella

Answer 1

Très petits coccobacilles à GRAM négatif
Immobiles, non capsulés, non sporulés
Génome particulier : composé de deux chromosomes circulaires, pas de plasmides

Paroi à composition particulière : acido-résistance
Coloration de GRAM inefficace à partir d’un prélèvement d’avortement : Stamp, Macchiavelo, Ziehl-Neelsen modifié

Question 2

(A) Citer les particularités de résistance du genre Brucella

Answer 2

• Sensible à la chaleur, aux UV, aux antiseptiques
• Très résistantes dans les matières biologiques :
- Lisier (>8 mois), sol (4 ans), eau, lait, urines, fromage frais

Question 3

(A) Décrire les propriétés antigéniques du genre
(B) Citer la principale espèce bactérienne présentant des communautés antigéniques avec
Brucella

Answer 3

• B. melitensis, B. suis, B. abortus : 2 antigènes de paroi au niveau du LPS :
- Antigène A : majoritaire chez B. abortus
- Antigène M : majoritaire chez B. melitensis

• B. canins et B. vois :
- Antigènes R (phase rugueuse)

• Réactions antigéniques croisées :
- Yersinia enterocolitica O9
—> Difficultés lors du dépistage sérologique

Question 4

(A) Citer les 5 espèces principales du genre Brucella (présentées en cours) et les espèces animales atteintes par ces espèces

Answer 4

Brucella ovis : ovins
Brucella canis : chiens
Brucella melitensis : petits ruminants
Brucella abortus : bovins
Brucella suis : porcs, lièvres

Question 5

(A) Citer les formes cliniques décrites lors d’atteintes génitales

Answer 5

Maladie de la reproduction : signes cliniques uniquement chez animaux pubères
Femelle gravide :
- mammite
- rétention placentaire
- avortement en deuxième moitié de gestation
Femelle pubère non gestante : infertilité
mâle : orchite, épididymite = stérilité

• Béliers infectés par B. ovis : épididymite contagieuse du bélier = baisse de la fertilité
• Chiens infectés en élevage par B. canis : avortements
• Infection des chevaux le plus souvent inapparente

Question 6

(A) Décrire les méthodes utilisées pour le diagnostic indirect chez les bovins

Answer 6

• Avortement : prélèvement sanguin effectué par le vétérinaire sanitaire sur tube sec pour recherche sérologique. Positive —> bactériologie à partir d’un écouvillon endo-cervical

• Diagnostic sérologique :
- Épreuve à l’Antigène acidifié Tamponné (EAT) ou Test au rose Bengale (agglutination rapide sur lame)
- ELISA
- Confirmation par RFC (test plus spécifique)
- Limites : réactions croisées, Antigènes détectables en phase S, pas de distinction anticorps vaccinaux et post infectieux

Question 7

(B) Indiquer les principales localisations de l’infection par le genre Brucella

Answer 7

• Génital (ruminants +)
• Articulaire
• Système des phagocytes mononucléés (NL, foie, rate)

Question 8

(B) Citer les formes cliniques décrites lors d’atteintes extragénitales

Answer 8

• Articulations : arthrite
• Bourses séreuses : hygromas, mal du garrot chez le cheval
—> atteintes fréquentes chez le porc

Question 9

(B) Décrire les modalités générales de diagnostic direct (coloration privilégiée, modalités de mise en culture, technique la plus sensible)

Answer 9

• Prélèvements : écouvillon endocervical, produits de l’avortement, sang, LCR
• Coloration de Stamp
• IF directe
• Mise en culture : milieux sélectifs, laboratoire P3 :
- Germes exigeants, nécessité de milieux enrichis
- Croissance lente : incubation de 2-3 jours à 3 semaines
- Germes aérobies strictes
- 2 aspects en fonction du LPS : S (smooth) B. abortus, suis et melitensis et R (rough) B. ovis et canis
• PCR : directement sur le prélèvement ou à partir d’une colonie isolée pour identification

Question 10

(B) Indiquer les méthodes de prophylaxie médicale et de traitement en médecine vétérinaire et ce qui est autorisé en France

Answer 10

Prophylaxie :
• Sanitaire :
Sérologie ELISA sur prélèvements sanguins ou lait de mélange (bovins > 24 mois et ovins / caprins > 8 mois)
Si positive, assainissement par abattage total du troupeau

• Médicale :
Vaccination interdite en France

Traitement
• Animaux : anthibiotérapie interdite
• Homme : ABs à pénétration intracellulaire, association de 2 ABs, traitement long plusieurs semaines à mois

Question 11

(A) Citer deux espèces pathogènes du genre Burkholderia pour les animaux et l’Homme et le nom des maladies associées

Answer 11

Burkholderia mallei : morve
Burkholderia pseudomallei : mélioïdose

Question 12

(A) Décrire les signes cliniques observés lors de morve chez les équidés

Answer 12

• Hyperthermie, anorexie, prostration, tremblements, tachycardie, tachypnée

• Existe sous trois formes :
- Forme septicémique, amaigrissement, mort en une à quatre semaines chez l’âne
- Forme cutanée : farcin, abcès multiples dans les tissus cutanés et sous-cutanés le long des vaisseaux lymphatiques puis ulcération
- Forme nasale : jetage muco-purulent, adénite régionale

• chevaux : forme chronique fréquente, excréteurs asymptomatiques

Question 13

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Burkholderia

Answer 13

Bacille GRAM négatif
asporulée, capsulée, mobile polaire sauf B. mallei (immobile)
Deux chromosomes circulaires
Aérobie stricte
Températures et conditions de croissance varient selon les espèces : milieu enrichi

Question 14

(B) Citer les habitats possibles du genre Burkholderia
(B) Indiquer le réservoir de B. mallei

Answer 14

Hydrotellurique : eau, boue, sédiments, sol

B. pseudomallei : saprophyte, survit plusieurs années dans sol et eau
B. mallei : ânes et chevaux infectés = réservoirs, pas de survie dans le milieu extérieur

Question 15

(B) Décrire les signes cliniques observés lors de mélioïdose

Answer 15

• Incubation parfois longue —> bactérie intracellulaire facultative qui peut persister dans les macrophages de façon quiescente
• suppurations superficielles et profondes, ressemblant à la morve chez les équidés
• Homme : infection pulmonaire aiguë, septicémie, infection purulente localisée

Question 16

(A) Indiquer les deux localisations principales du genre Campylobacter
(A) Citer les espèces et sous-espèces principales du genre et leur pouvoir pathogène
(A) Citer les espèces animales atteintes par les espèces de Campylobacter
(B) Citer les formes cliniques décrites lors d’atteintes génitales
(B) Citer les formes cliniques décrites lors d’atteintes extragénitales

Answer 16

• Tube digestif des animaux :
{C. jejuni : cloaque des oiseaux (mais aussi bovins petits ruminants chiens et chats)
C. coli : porcs }
- entérite aiguë muqueuse, parfois sanguinolente (homme aussi)
- diarrhée par hypersécrétion (entérotoxine)
- source : volaille crue

C. fetus fetus : moutons
- infections génitales à transmission non vénérienne : avortements enzootiques ovins / caprins et sporadiques bovins
- infections intestinales : entérite des ovins et bovins

C. upsaliensis : chiots et chatons
-diarrhée chiots et chatons < 6 mois

• Appareil génital des ruminants :
C. fetus venerealis : prépuce des taureaux porteurs sains = campylobactériose bovine génitale
- MST : maladie à ne considérer que lors de monte naturelle
- Endométrite, avortement, infertilité
- Catégorie D et E : maladie soumise à surveillance + restrictions de mouvements entre états membres

Question 17

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Campylobacter

Answer 17

Bacille GRAM négative de forme incurvée en S ou V
Très mobile : 1 ou 2 flagelles polaires
Non sporulées
Microcapsule glycoprotéique

Culture : bactérie exigeante, milieux riches gélose au sang, microaérophiles, croissance lente : 2 à 7 jours

Question 18

(B) Décrire les méthodes générales de diagnostic d’infection par Campylobacter

Answer 18

• Prélèvements :
- Fèces (C. jejuni, C. coli, C. upsaliensis)
- Écouvillon prépuce ou endocervical lors d’avortement (C. fetus venerealis et C. fetus fetus)

• Examen direct : morphologie et mobilité caractéristiques

• Culture sur milieu enrichi au sang et sélectif (AB) : demande claire au laboratoire en cas de suspicion
- sous atmosphère microaérophile (jarre avec 5% d’O2)
- Identification biochimique ou Maldi Tof

• PCR : plus sensible (échantillons polycontaminés ou mal conservés)

Question 19

(A) Indiquer les localisations principales chez les porteurs sains du genre Helicobacter

Answer 19

• muqueuse gastrique +++
• cryptes du caecum et du colon
• canalicules biliaires

Fragiles dans le milieu extérieur

Question 20

(A) Indiquer les espèces animales infectées par le genre Helicobacter

Answer 20

Primates, rongeurs, furet +++, homme, porc

Question 21

(A) Indiquer les principales formes cliniques décrites

Answer 21

• Gastrite / gastrite chronique : primates, rongeurs
• Ulcères gastriques : homme, porc, furet +++
• Ulcère dudodénal : homme, furet
• carcinome gastrique

H. mustelae : furets +++
• gastrite chronique
• ulcère des muqueuse gastriques

Question 22

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Helicobacter

Answer 22

Bacille GRAM négatif, forme hélicoïdale, ciliature lophotriche : mobiles par flagelles polaires engainées, non sporulés

Culture : bactéries exigeantes, sur gélose enrichie, atmosphère microaerophile, croissance lente 4 à 7 jours

Question 23

(B) Décrire les facteurs et mécanismes du pouvoir pathogène du genre Helicobacter

Answer 23

• Passage à travers le mucus et survie dans l’estomac :
- mobilité à travers le mucus via forme hélicoïdale et flagelles polaires
- résistance au pH acide via uréase très active

• Ulcères gastriques :
- cytotoxine vacuolisante
- uréase : production d’ammoniac toxique pour la muqueuse

• Carcinomes gastriques :
- Îlot de pathogénicité Cag : CagA + SST4 —> Translocation de CagA dans le cytoplasme de la cellule cible —> modification du cytosquelette —> risque augmenté de carcinome gastrique

• Persistance dans l’estomac en échappant aux défenses de l’hôte via localisation muqueuse gastrique

• Réponse inflammatoire de l’hôte, persistante et responsable de la carcinogenèse

Question 24

(B) Indiquer les méthodes de diagnostic d’infection par Helicobacter

Answer 24

• Endoscopie, biopsie gastrique :
- PCR
- (culture)
- Test rapide à l’uréase
- Coloration GRAM ou Warthin-Starry sur coupe histologique

• Sérologie ELISA +++