Aula 6 - Isolamento e Purificação de Proteínas Flashcards

1
Q

Quais os métodos físicos de lise?

A
Choque osmótico - adicionar água 
choques térmicos - congelar e descongelar
choques mecânicos
Sonicação (ultra-sons)
Descomprssão explosiva
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2
Q

Quais os métodos de purificação?

A

Pré-purificação
centrifugação (para eliminar células não lisadas)
filtração

Centrifugação diferencial
Precipitação seletiva
Filtração (filtros de poro conhecido)
Cromatografia (vários tipos)

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3
Q

Como se faz a centrifugação diferencial?

A

Centrifugação a baixa velocidade (800 G, 10 min)
sobrenadante tem núcleos

Centrifugação a 20000 G, 15 min)
sobrenadante tem mitocôndrias e cloroplastos nas plantas

Centrifugação a (100000 G, 60 min)
sobrenadante tem plasma e membranas internas das células

Centrifugação a 1500000 G, 3h)
sobrenadante tem ribossomas

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4
Q

Como se faz a precipitação seletiva?

A

As proteínas são solúveis em soluções de sais (salting in)
Para concentrações específicas apresentam baixa solubilidade e agregam-se, precipitando (salting out) por centrifugação
Sais utilizados: NaCl

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5
Q

Em que consiste a cromatografia?

A

técnica de separação de moléculas baseada na distribuição diferencial dos componentes entre a fase móvel e estacionária

o objetivo é separar dois ou mais componentes de uma mistura

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6
Q

Quais as cromatografias realizadas em coluna?

A
Troca iónica
afinidade
hidrofóbica
fase reversa
exclusão molecular
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7
Q

Como funciona a cromatografia de troca iónica?

A

partícula na fase estacionária

uns iões ficam agarrados à fase móvel, outros não. Ficam ordenados pelo ponto isoelétrico

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8
Q

Como funciona a cromatografia de afinidade?

A

matriz inerte onde se liga o ligando

ligando com afinidade para a proteína de interesse

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9
Q

Como funciona a cromatografia de exclusão molecular?

A
matriz porosa (esferas)
poro com determinada dimensão
moléculas pequenas e intermédias entram no poro e demoram a sair
moléculas grandes não passam no poro mas sim à  volta e entram logo no líquido, são as primeiras a sair
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10
Q

Qual a desvantagem da cromatografia de exclusão molecular?

A

não se consegue trabalhar com volumes grandes

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11
Q

Quais os métodos de doseamento de proteínas?

A

diretos
espectrofotometria na uv
vantagem de não destruir proteína

indiretos colorimétricos
lowry
ácido
bradford

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12
Q

Quais as características da espetrofotometria?

A

Lei Lambert Beer: soluções diluídas
Os aminoácidos aromáticos tirosina e triptofano fazem absorção a 280 nm. A fenilalanina e as pontes dissulfureto também contribuem em menor grau
Método simples e não destrutivo
As amostras devem ter um grau de pureza elevado, anéis aromáticos de ácidos nucleicos ou de alguns detergentes interferem

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13
Q

Qual a desvantagem da espetrofotometria?

A

se não tivermos estes aminoácidos não funcionam

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14
Q

Quais as características do método de Lowry?

A

condições alcalinas passa de púrpura para azul (ferro) quando encontra ligações peptídicas

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15
Q

Quais as vantagens e desvantagens do Método de Lowry?

A

vantagem alta sensibilidade

desvantagens: tempo de reação, incompatibilidade com detergentes e agentes redutores

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16
Q

Quais as características do método ácido bicinconínico?

A

duas moléculas de ácido bicinconínico reagem com cobre formando um cromóforo púrpura com um máximo absorção 562

17
Q

Quais as vantagens e desvantagens do métodos de ácido biciconinico?

A

vantagem pode se usar com agentes desnaturantes

alguna redutores interferem outros não

18
Q

Quais as características do método de Bradford?

A

O corante azul de Coomassie liga-se aos resíduos de aminoácidos. Em condições ácidas o corante fica na sua coloração vermelha com máxima absorção 470 nm. A ligação às proteínas induz conversão com coloração azul e com um máximo de absorção 595 nm

19
Q

Quais as vantagens e desvantagens do Método de Bradford?

A

É pouco preciso para proteínas de carácter acídico ou básico

Não é compatível com detergentes mas é compatível com agentes redutores

20
Q

O que é eletroforese?

A

separação de moléculas num campo elétrico pela sua massa

21
Q

Qual o gel usado na eletroforese?

A

gel de poliacrilamida descontínuo com SDS para desnaturar proteínas

22
Q

O que é a isoeletrofocagem?

A

é uma técnica de separação de diferentes moléculas tendo em conta o seu ponto isoelétrico