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MCB3080 - Détection épidémiologique des agents infectieux > Maladies virales transmises par les moustiques (Cours 10) > Flashcards

Maladies virales transmises par les moustiques (Cours 10) Flashcards

1
Q

Qu’est-ce qu’un arbovirus?

A

Arthropode Borne Virus.
Transmission par piqures/morsure d’arthro hématophage infecté (vecteur)
Cycle impliquant un arthro et un vertébré permet réservoir

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Q

Combien d’arbovirus sont reconnus pathogènes chez l’humain? Infectent quoi?

A

130

Certains seulement les moustiques, d’autres des végétaux

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3
Q

Nommer trois types de pathogène arbovirus. Enveloppe, génome et maladies associées?

A

Flavivirus. Env membrane lipidique ARN+ = Fièvre Jaune, Dengue, Nil Occidental, Powassan
Alphavirus, Env membrane lipidique, ARN + = Encéphalite équine de l’est (VEEE), EEV, Chikungunya, Ross River
Orthobunyavirus. Env membrane lipidique, ARN-, segmenté (3) = Sérogroupe Calif : Jamestown canyon, Snoshoe hare, Lacrosse

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4
Q

Vecteur arthropode varié

A

Petits animaux à corps segmentés, articulés et protégés par un cuticule formant un exosquelette

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5
Q

Quels sont les vecteurs et pour quel virus?

A

Tiques : Powassan, Encéphalite à tique, Colorado tick fever

Moustiques : Vecteurs pour la majorité des arbovirus

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6
Q

Quels sont les vecteurs d’arbovirose au Qc?

A

Culex Pipiens/restuans, Ochlorotatus stimulans, Culiseta melanura, Aedes vexans et Ixodes cookei

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7
Q

Distribution géographique des arbovirus est liée à quoi?

A

Aux vecteurs et aux réservoirs

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8
Q

Quel est le cycle de transmission de la Dengue, Virus fièvre jaune, Zika et VCHIK?
Comment se nomme ce cycle?

A

Virémie modérée et courte chez l’humain. Cycle entre singes et moustiques. Moustique est le vecteur pont vers le cycle homme-moustique.
Urbain

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9
Q

Quel est le cycle de transmission de la VNO, VSC, VEEE et VPOW?
Comment se nomme ce cycle?

A

Virémie faible et courte chez l’humain. Cycle entre corbeau et moustiques. Moustique est le vecteur pont vers l’homme et le cheval mais fin de la transmission.
Cul-de-sac

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10
Q

Quels sont les modes de transmission des arboviroses?

Le principal?

A
  1. Vectorielle (mode principal=le plus important)
  2. Materno-fœtale (complication Zika: microcéphalie)
  3. Sexuelle (Zika)
  4. Dons organes ou de sang (criblage des dons de sang, organe par RT-PCR)
    Principal est le vectoriel
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11
Q

Période de transmission en Amérique du Nord ? En zone tropicale?

A

Saison estivale

Transmission continue

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12
Q

Quels facteurs favorisent la propagation des arbovirus et des vecteurs?

A

Abiotiques, anthropogéniques (effet de l’humain), microbiologique et écologique

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13
Q

Facteurs abiotiques.

A
  1. Précipitation
  2. Température
  3. Changements climatiques (long terme)
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14
Q

Facteurs anthropogéniques.

A
  1. Urbanisation agressive
  2. Augmentation des transports
  3. Densification des populations humaines
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15
Q

Facteurs microbiologiques.

A
  1. Taux de mutation élevé des virus à ARN
  2. Période incubation extrinsèque du virus
    dans le moustique
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16
Q

Facteurs écologiques.

A
  1. Présence de vecteur autochtone compétent

2. Immunité des populations

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17
Q

Durée d’incubation des arbovirus?

A

3 à 7 jours post piqûre de moustique

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18
Q

Virémie des arbovirus?

A

Charge virale variable et courte durée (< 1 semaine)

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19
Q

Cinétique des anticorps?

A

Détection des IgM rapide (quelques jours après les 1ers symptômes). Séroconversion des IgG quelques
jours après les IgM.
IgM détectés dans certains cas jusqu’à 500 jours post exposition/infection.

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20
Q

Quels sont les portraits cliniques des arbovirus?

A

Plupart asymptomatique. Atteintes systémiques et neurologiques, syndrome hémorragique et congénital et syndrome Guillain-Barré

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21
Q

Pourquoi est-ce que le diagnostic clinique est difficile?

A

Les symptômes sont très similaires = tests de laboratoire nécessaire pour établir le diagnostic.

22
Q

Quels sont les tests de laboratoire fait sur les arbovirus?

A
  1. Sérodiagnostic

2. Détection du virus par RT-PCR

23
Q

Quels sont les tests sérologiques?

A

Sérodiagnostic : Test diagnostic indirect
Détection de la présence d’anticorps dans le sang (sérum, plasma) (réponse
immunitaire humorale suite à une infection)
Détection de la présence d’antigène du pathogène

24
Q

Quels sont les types de tests sérologiques? Quantitatif ou qualitatif? Résultats? Choses qu’ils cherchent?

A
  1. Immunoenzymatique (ELISA ou EIA) = qualitatif (pos/nég), IgA, IgM ou IgG
  2. Inhibition de l’hemagglutination = quantitatif (titre anticorps), Ac totaux
  3. Test de séroneutralisation des plages de lyse (PRNT) = quantitatif (titre anticorps), Ac
    neutralisant
25
Q

Les étapes de immuno-enzymatique (ELISA)?

A
  1. Détermination du résultat qualitatif (pos. nég., éqv.)
  2. Calcul des index
  3. Index = D.O. échantillon/ D.O. calibrateur (positif faible)
  4. Interprétation du résultat selon les critères de la trousse diagnostique
26
Q

Principe de l’inhibition de l’hémagglutination.

A 
Négatif = tapis cellulaire causé par l'hémaglutination
Positif = dépôt cellulaire au fond, inhibition de l'hémaglutination
27
Q

Les étapes de l’inhibition de l’hémagglutination?

Titre IH?

A
  1. Dilution sérielle (1/2) sérum
  2. Ajouter virions
  3. Incubation 30 minutes
  4. Ajouter globule rouge
  5. Incubation 30 minutes
  6. Lecture visuelle
  7. Le titre IH correspond à la plus haute dilution d’Ac qui inhibe l’agglutination
28
Q

Principe du test de séroneutralisation des plages de lyse (PRNT)?

A

Négatif = Virus + cellule réceptive. Liaison des virus au récepteur
Internalisation des virions
Réplication virale
Lyse cellulaire
Positif = Virus +Ac neutralisants + cellule réceptive. Liaison des Ac sur épitopes viraux
Neutralisation des virions
Survie des cellules

29
Q

Les étapes de séroneutralisation des plages de lyse (PRNT)?

PRNT90 : Titre d’Ac neutralisant?

A
  1. Mélanger les dilutions de sérum avec [C] fixe de virus
  2. Incubation 1 heure
  3. Appliquer sur un feuillet cellulaire en plaque
  4. Incubation quelques jours
  5. Coloration cellules
  6. Dénombrement des plages de lyse
    = la plus haute dilution qui inhibe 90 % des plages de lyse.
30
Q

Quel test est utilisé au LSPQ?

A

TAAN arboviroses (diagnostic direct). Pour échantillon prélevé en phase aigue + de 1 sem post symptômes.

31
Q

TAAN arboviroses LSPQ?

A

Test trioplex multiplex RT-PCR (validé au LSPQ)
Technique de RT-PCR en temps réel de type
TaqMan® validée pour détecter de façon simultanée la présence d’ARN des virus Zika, Dengue et Chikungunya. Se 86,8% et Sp 100%
Test RT-PCR VNO (validé au LSPQ)
Real-time RT-PCR sur LCR. Une sérologie IgM positive sur sérum est requise.

32
Q

Sérodiagnostic repose sur quoi? Permet quoi?

A

Repose sur l’analyse d’une paire de sérums. Soit un sérum prélevé en phase aigue (symptômes) et un prélevé en phase de convalescence (en voie de guérison)
=Permet d’analyser le profil sérologique du patient car
la réponse humorale est évolutive.

33
Q

EIA IgM négatif et IgG négatif sur premier sérum (phase aiguë)

A

Absence d’infection. L’analyse d’un sérum prélevé en phase de convalescence est
recommandé

34
Q

EIA IgM positif et IgG positif/négatif sur premier sérum (phase aiguë)

A

Infection possiblement récente. Si IgG négatif, l’analyse d’un sérum prélevé en phase de convalescence est recommandée pour détecter une possible séroconversion des IgG.

35
Q

Preuve d’une infection récente?

A

Séroconversion des anticorps (d’absence à présence) entre deux sérums prélevés en phase
aigue et convalescence OU augmentation significative (de 4 à 8x) du titre d’anticorps observé avec un sérum prélevé en phase de convalescence.

36
Q

Test de confirmation de la présence d’anticorps neutralisants par PRNT?

A
  1. Certaines analyses de dépistage positives (IgM) nécessitent un test PRNT pour
    confirmer la présence d’anticorps spécifiques.
  2. Lorsqu’un titre PRNT positif est obtenu pour deux virus du même genre,
    Le titre le plus élevé = responsable de
    l’infection récente
37
Q

Test de confirmation de la présence d’anticorps neutralisants par PRNT?

A
  1. Certaines analyses de dépistage positives (IgM) nécessitent un test PRNT pour
    confirmer la présence d’anticorps spécifiques.
  2. Lorsqu’un titre PRNT positif est obtenu pour deux virus du même genre,
    Le titre le plus élevé = responsable de
    l’infection récente
38
Q

Particularités du VNO.

A 
Virus neurotropique (encéphalite, méningite, paralysie flasque aiguë)
Prévalence: mondiale (en zone tropicale et tempérée)
Variété génétique = Plusieurs lignées (1 et 2 sont pathogènes)
5 génotypes en Amérique du Nord : NY99, WN02, WN03, WN07 et WN10
39
Q

Réservoir zoonotique et transmission du VNO?

A

Espèces réservoirs : Oiseaux passerines. Espèces réservoirs (charge
virale > 109): Passéridés
L’infection persiste chez
espèces d’oiseaux survivants avec virémie de longue durée.
Vecteur enzootique = Culex pipiens
Vecteur ponts = Aedes vexans, Coquillettidia perturbans, Ochlerotatus canadensis

40
Q

Par quoi est causé la persistance du VNO en Amérique du Nord?

A

Oiseaux migrateurs réintroduisent le virus dans les zones nordiques chaque saison estivale.

41
Q

Quel est l’impact phénotypique de la mutation du gène E en 2002 chez VNO?

A

Diminution du temps d’incubation extrinsèque du

virus chez le moustique = transmission plus rapide du virus

42
Q

Comment est fait la surveillance humaine de VNO?

A

Tests de laboratoire = Sérologie VNO IgM, si + MADO

Enquêtes par SP = collige les symptômes, expositions, voyage, date de premier Sx et géolocalisation des cas

43
Q

Comment est fait la surveillance aviaire de VNO?

A

Corvidés morts VNO-positifs = indicateur de présence du virus
et transmission.
Par le MAPAQ, la FAPAQ, et le CQSAS.
Écouvillonnages cloacaux et oraux, rein ou cerveau
Chez les corvidés, les tests antigéniques (VecTest) sont
efficaces pour le criblage initial; confirmation par RT-PCR.

44
Q

Comment est fait la surveillance entomologique de VNO?

A

Surveillance de la transmission locale = calculer le potentiel de transmission.
Priorité d’analyse aux Culex et à quelques espèces ponts
Capture et tri effectués par une firme d’experts du
Québec; épreuves de détection PCR réalisées au LSPQ.

45
Q

Quels sont les traitements des arboviroses?

A

Aucun antiviral homologué pour le traitement des arboviroses. Traitements pour le confort et la douleur

46
Q

Quels vaccins sont disponible contre certains arbovirus?

A 
✓ Fièvre jaune (humain)
✓ L’encéphalite japonaise (humain)
✓ L’encéphalite à tique (humain)
✓ Nil occidental (chevaux)
✓ L’encéphalite équine de l’est (chevaux)
47
Q

Quelles sont les différentes stratégies de contrôle des populations de moustique?

A

Chimique, biologique et microbiologique

48
Q

Stratégies chimiques de contrôle des populations de moustique?

A

Épandage insecticide (adulticide, larvicide)
Programme d’éradication d’Ae. aegypti avec DDT
Au Québec: larvicides (méthoprène: analogue hormonal)

49
Q

Stratégies biologiques de contrôle des populations de moustique?

A
  • Introduction d’un prédateur (insecte entomophage)
  • Virus et champignon entomopathogènes
  • Wolbachia sp : Bloque la multiplication du virus dengue dans l’insecte
  • Bacillus thuringiensis subsp. israelensis (Bti) : production de cristaux/toxines
  • Sterile Insect Technique (SIT) : relargage de moustique mâle stérile (irradiation)
50
Q

Stratégies génétiques de contrôle des populations de moustique?

A

Moustique male génétiquement modifié qui transmet un gène létale conditionnel à la
progéniture. Technologie RIDL (Release of Insects Carrying a Dominant Lethal genetic
system). Aedes aegypti OX513A.

51
Q

Comment est fait la prévention des infections par les arbovirus?

A
  1. Utilisation de chasse-moustique homologué : DEET, Icaridine et huile de citronnelle
  2. Le port de vêtements longs de couleur pâle
  3. Réduction des sites propices à la reproduction des moustiques = Baril d’eau non couvert, piscine sans filtration
    et autres objets pouvant contenir de l’eau stagnante

MCB3080 - Détection épidémiologique des agents infectieux (7 decks)

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