Crocette vecchie Flashcards
Dato il diploide parziale per l’operone LAC: I- P- O+ Z- Y-; I(S) P+ O- Z+ Y+ [I simboli + indicano Wild Type e i simboli meno indicano mutazione Loss Of Function]. Indicare (SI o NO) l’espressione dei geni Z e Y nel seguente ordine: Gene Z in assenza di induttore, gene Z in presenza di induttore, per gene Y in assenza di induttore, gene Y in presenza di induttore:
1) SI, NO, SI, NO
2) NO, SI, NO, SI
3) NO, NO, NO, NO
4) SI, SI, SI, SI
4) SI, SI , SI, SI
Dato il seguente diploide, dare le risposte: I(s) P+ O+ Z+ Y+ /I- P+ O- Z+ Y+. Il gene lacZ è espresso in assenza di induttore? Il gene lacZ è espresso in presenza di induttore? Il gene lacY è espresso in assenza di induttore? Il gene lacY è espresso in presenza di induttore?
1) SI SI SI SI
2) NO NO NO NO
3) SI SI NO NO
4) NO NO SI SI
1) SI, SI, SI, SI
Dato il diploide parziale per l’operone LAC: I- P- O- Z+ Y+; I+ P+ O+ Z- Y- [I simboli + indicano Wild Type e i simboli meno indicano mutazione Loss Of Function]. Indicare (SI o NO) l’espressione dei geni Z e Y nel seguente ordine: Gene Z in assenza di induttore, gene Z in presenza di induttore, per gene Y in assenza di induttore, gene Y in presenza di induttore:
1) SI, NO, SI, NO
2) NO, SI, NO, SI
3) NO, NO, NO, NO
4) SI, SI, SI, SI
3) NO, NO, NO, NO
Dato il diploide parziale I(s) P+ O+ Z+ Y+ / I- P+ O- Z+ Y+. Gene Z in presenza di lattosio? Gene Z in assenza di lattosio? Gene Y in presenza di lattosio? Gene Y in assenza di lattosio?
1) SI, SI, NO, NO
2) NO, NO, SI, SI
3) SI, SI, SI, SI
4) NO, NO, NO, NO
5) SI, NO, NO, NO
3) SI, SI, SI, SI
Complementazione. Nella seguente tabella sono riportati i risultati disaggi di complementazione ottenuti mediante incrocio di vari batteri (1,2,3,4,5,6). Se + vuol dire che è avvenuta complementazione, se – vuol dire che non è avvenuta. Indicare quali batteri rappresentano mutanti diversi per lo stesso gene [come indicato nel seguente esempio: (1,3,5); (2,3,4,6)…]
_ 1 2 3 4 5 6
1 - + - + + +
2 + - + - - -
3 - + - + + +
4 + - + - - -
5 + - + - - -
6 + - + - - -
(1,3); (2,4,5,6)
Dovete clonare un frammento di DNA umano all’interno di un plasmide contenente due geni, amp e kan che, nei batteri, conferiscono resistenza, rispettivamente, a due diversi antibiotici, ampicillina e kanamicina. Sia il frammento che il plasmide sono stati digeriti con l’enzima di restrizione EcoRI, che, nel plasmide, taglia in corrispondenza di un unico sito all’interno del gene amp. Dopo la reazione di ligazione tra il plasmide e il frammento di DNA e la successiva trasformazione delle cellule batteriche, indicate quale, fra le procedure seguenti, è quella corretta per isolare i plasmidi ricombinanti (ovvero un plasmide che ha legato l’inserto):
1) Faccio crescere i batteri in terreno selettivo contenente ampicillina e il substrato cromogeno X-Gal, le colonie contenenti un plasmide ricombinante saranno bianche
2) Faccio crescere i batteri in un terreno contenente kanamicina; solo quelli contenenti il plasmide ricombinante saranno in grado di crescere. Le colonie cresciute su kanamicina vengono successivamente trattate e fatte crescere su un terreno contenente ampicillina, quelle in grado di crescere conterranno un plasmide racchiuso su sé stesso (ovvero non ricombinante, ovvero che non ha legato l’inserto), mentre quelle che non crescono avranno un plasmide ricombinante
3) Faccio crescere i batteri in terreno selettivo contenente ampicillina e kanamicina, solo i batteri contenenti un plasmide ricombinante saranno in grado di sopravvivere
4) Faccio crescere i batteri in terreno selettivo contenente ampicillina, solo i batteri trasformati saranno in grado di sopravvivere. Le cellule cresciute su ampicillina vengono successivamente trasferite e fatte crescere su un terreno contenente kanamicina, quelle in grado di crescere conterranno un plasmide racchiuso, mentre quelle che non crescono avranno un plasmide ricombinante
2) Faccio crescere i batteri in un terreno contenente kanamicina; solo quelli contenenti il plasmide
ricombinante saranno in grado di crescere. Le colonie cresciute su kanamicina vengono
successivamente trattate e fatte crescere su un terreno contenente ampicillina, quelle in grado di
crescere conterranno un plasmide racchiuso su sé stesso (ovvero non ricombinante, ovvero che non
ha legato l’inserto), mentre quelle che non crescono avranno un plasmide ricombinante
Per studiare l’RNA che tecniche posso utilizzare? (più risposte esatte)
1) Southern blotting
2) RT-PCR
3) Northern blotting
4) Con tutte queste tecnologie
5) Con nessuna
2) RT-PCR
3) Northern blotting
Clonaggio. Immagina di avere come inserto un pezzo di promotore tagliato con l’enzima BamH1 da inserire a monte del gene reporter luciferasi già inserito in un plasmide/vettore “reporter” (che porta resistenza all’ampicillina) anch’esso tagliato con BamH1. Poi aggiungiamo alla reazione la DNA ligasi e trasformiamo i batteri. Il giorno dopo abbiamo delle colonie batteriche, ovviamente ampicillina resistenti. Scopo del lavoro: devo identificare i cloni batterci che portano il promotore clonato correttamente (5’->3’) a monte di LacZ. Sappi che conosciamo la sequenza di tutto, ma nota bene che l’inserto può inserirsi “dritto”, ma anche in antisenso (visto che abbiamo un unico sito di restrizione).
1) Taglio il DNA dei cloni batterci con BamH1
2) Un taglio con BamH1 ed un altro enzima che tagli dentro il cDNA della luciferasi
3) Uso un enzima diverso da BamH1 che stacca un frammento interno al promotore/inserto
4) Per sapere l’orientamento non posso far altro che sequenziare
5) I cloni contenenti l’inserto chiuso su sé stesso mi daranno un’unica banda (corrispondente a sé stesso) dopo digestione del long DNA con BamH1
6) Per sapere l’orientamento posso usare un enzima che tagli dentro a LacZ e un enzima unico diverso da BamH1 che tagli esattamente a metà dell’inserto
7) Per sapere l’orientamento posso usare un enzima che tagli dentro a LacZ e un enzima unico diverso da BamH1 che tagli però più vicino o all’estremità 5’ o a quella 3’ dell’inserto
4) Per sapere l’orientamento non posso far altro che sequenziare
7) Per sapere l’orientamento posso usare un enzima che tagli dentro a LacZ e un enzima unico diverso
da BamH1 che tagli però più vicino o all’estremità 5’ o a quella 3’ dell’inserto
Pianifichi e realizzi un clonaggio, ma non ottieni colonie batteriche. Indica quali delle possibili spiegazioni è plausibile:
1) I siti di clonaggio del vettore non erano compatibili con i siti dell’inserto
2) Non hai messo la ligasi nella reazione di ligazione tra inserto e vettore
3) Quando hai purificato i frammenti di DNA dal gel di agarosio, hai purificato il frammento sbagliato
4) L’inserto che stai cercando di clonare è troppo grande per il plasmide selezionato
5) Tutte le precedenti
5) Tutte le precedenti
Quale informazione non si può ottenere da una library a DNA genomico?
1) Sequenza di introni
2) Sequenza di promotori
3) Sequenza per RNA non codificanti
4) Presenza di sequenze regolatorie dell’espressione genica
5) Livelli di espressione di un gene nella cellula da cui è stato estratto il DNA genomico
5) Livelli di espressione di un gene nella cellula da cui è stato estratto il DNA genomico
Su cosa si sono basati Watson e Crick (1953) per decifrare la struttura del DNA?
1) Sulla struttura delle proteine
2) Sulla struttura delle proteine e sulle regole di Chargaff
3) Sulle leggi della genetica di Mendel
4) Sui dati di raggi X e sulle regole di Chargaff
5) Sulle leggi della genetica di Mendel e sui dati dei raggi X
4) Sui dati di raggi X e sulle regole di Chargaff
Cos’è una mutazione? (2 giuste)
1) Variante di DNA presente in meno dell’1% nella popolazione
2) Variante di DNA che ha sempre effetto sul fenotipo
3) Variante di DNA che non ha mai effetto sul fenotipo
4) Variante di DNA ereditata o acquisita de novo
5) Sostituzione nucleotidica esclusivamente indotta dall’esposizione ad agenti chimici
1) Variante di DNA presente in meno dell’1% nella popolazione
4) Variante di DNA ereditata o acquisita de novo
Cos’è una mutazione loss of function?
1) Una variante del DNA che causa la perdita di funzione del prodotto del gene
2) È una mutazione che causa la perdita di funzione ereditata in maniera dominante
3) È una mutazione che causa la perdita di funzione ereditata in maniera recessiva
4) Mutazione di un gene che causa la perdita di funzione di un altro gene
5) Mutazione di un gene che causa la perdita di funzione dei geni a valle
1) Una variante del DNA che causa la perdita di funzione del prodotto del gene
Complementazione:
1) Produzione di un fenotipo selvatico che si verifica quando due genomi aploidi che portano mutazioni recessive diverse sono riuniti nella stessa cellula
2) Produzione di un fenotipo selvatico che si verifica quando due genomi aploidi che portano mutazioni recessive nello stesso gene sono riuniti nella stessa cellula
3) Produzione di un fenotipo mutante che si verifica quando due genomi aploidi che portano mutazioni recessive nello stesso gene sono riuniti nella stessa cellula
4) Produzione di un fenotipo mutante che si verifica quando due genomi aploidi che portano mutazioni recessive diverse sono riuniti nella stessa cellula
1) Produzione di un fenotipo selvatico che si verifica quando due genomi apolidi che portano mutazioni
recessive diverse sono riuniti nella stessa cellula
Che cos’è una proteina allosterica?
1) una proteina che lega il DNA e l’RNA
2) una proteina che interagisce con il DNA solo in seguito al legame con uno zucchero
3) una proteina che in seguito al legame con una molecola subisce una modifica conformazionale che le permette di legare il DNA
4) una proteina che in seguito al legame con una molecola subisce una modifica conformazionale
5) Una proteina che in seguito al legame con una molecola subisce una modificazione conformazionale che le permette di staccarsi dal DNA
4) una proteina che in seguito al legame con una molecola subisce una modifica conformazionale
Qual è la più probabile causa di un eccessivo superavvolgimento negativo di un genoma?
1) Elevata quantità di sequenze non codificanti
2) Elevato numero di nucleosomi e dalla loro struttura (per esempio a solenoide ecc.)
3) Eccesso di enzimi di tipo topoisomerasi I
4) Mutazione gain of function della topoisomerasi I
5) Tutte queste ipotesi sono in realtà poco probabili
4) Mutazione gain of function della topoisomerasi I
Terminazione batterica:
1) Rho serve per svolgere la doppia elica
2) Rho è un meccanismo intrinseco di terminazione
3) Rho inibisce il legame dell’RNA alla polimerasi
4) Non ci sono sempre coinvolte delle forcine
5) Rho coopera con antiterminatori
6) Nel caso dell’operone del triptofano, è legata alla traduzione che nei batteri è contestuale alla trascrizione
7) L’antiterminatore fa accelerare la polimerasi sopra una sequenza a forcina
8) Rho stabilizza il legame dell’RNA sulla polimerasi, facendola fermare
4) Non ci sono sempre coinvolte delle forcine
6) Nel caso dell’operone del triptofano, è legata alla traduzione che nei batteri è contestuale alla trascrizione
Terminazione negli eucarioti:
1) Coinvolge la presenza di strutture a forcina
2) Richiede il legame a specifiche sequenze nel DNA
3) Coinvolge il fattore TFIIF
4) Il fattore CPSF riconosce una sequenza sull’RNA
5) Il fattore CPSF riconosce una sequenza sul DNA in concerto con la PolyA polimerasi
2) Richiede il legame a specifiche sequenze nel DNA
4) Il fattore CPSF riconosce una sequenza sull’RNA
Indica la risposta corretta relativa alla terminazione della trascrizione:
1) Non ha un ruolo nel controllo della trascrizione
2) Avviene quando si rompono i legami idrogeno dell’ibrido DNA-RNA
3) Avviene quando la RNA polimerasi si stacca dal DNA genomico
4) Può avvenire nel citoplasma o nel nucleo
5) È regolata da sequenze chiamate terminatori
5) È regolata da sequenze chiamate terminatori
Quale di queste affermazioni è corretta?
1) I miRNA che colpiscono oncogeni sono detti “oncomiRs”
2) I miRNA che colpiscono oncosoppressori sono “tumor soppressor miRNA”
3) I miRNA possono regolare o solo oncogeni o solo oncosoppressori
4) I miRNA sono raramente causa di tumori perché una mutazione a loro carico è improbabile
5) Metà dei miRNA identificati risiedono in regioni “fragili” del genoma
5) Metà dei miRNA identificati risiedono in regioni “fragili” del genoma
Indica quale affermazione sui miRNA è errata:
1) Possono regolare un target sia direttamente che indirettamente
2) Non solo i miRNA limitano la stabilità di un mRNA ma, reciprocamente, anche la quantità disponibile di un miRNA può essere limitata dal suo bersaglio (nel caso in cui sia molto espresso)
3) I loop coerenti (Coherent FFL) che coinvolgono dei miRNA sono un sistema di sicurezza per evitare errori indotti da sintesi casuale o illegittima di un gene bersaglio di un fattore di trascrizione
4) I loop coerenti (Coherent FFL) limitano l’effetto sulla trascrizione di stimoli/segnali sbagliati o sotto soglia
5) I loop incoerenti (Incoherent FFL) dei miRNA permettono di accendere/spegnere rapidamente ed efficientemente un programma genico
6) Quando un miRNA ed il suo bersaglio si inibiscono a
vicenda ciò permette di accendere/spegnere rapidamente ed efficientemente un programma genico
3) I loop coerenti (Coherent FFL) che coinvolgono dei miRNA sono un sistema di sicurezza per evitare errori indotti da sintesi casuale o illegittima di un gene bersaglio di un fattore di trascrizione
4) I loop coerenti (Coherent FFL) limitano l’effetto sulla trascrizione di stimoli/segnali sbagliati o sotto soglia
Il ruolo di Dicer nella biosintesi dei microRNA è:
A. Tagliare una struttura a forcina presente in un pri-miRNA
B. Favorire il taglio del pri-miRNA da parte di Drosha
C. Esportare il miRNA maturo nel citoplasma
D. Inibire argonauta
1) Nessuna delle precedenti è corretta
1) Tutte queste ipotesi sono in linea di principio plausibili, valide
2) Tutte queste ipotesi sopra citate sono in linea di principio plausibili, valide tranne una
3) Tutte queste ipotesi sono valide in linea di principio plausibili, valide tranne due
1) Nessuna delle precedenti è corretta
HIF1α e HIF1β, quale dichiarazione è sbagliata?
1) Sono altamente omologhi, ma solo uno interagisce con il DNA
2) Richiedono cooperatività l’uno con l’altro ovvero il legame di HIF1α e HIF1β può avvenire solo se si forma l’eterodimero
3) Agiscono ed interagiscono sullo stesso modulo in cis, detto Hypoxia responsive element
4) Il complesso contiene sia DNA binding domains che transactivation domains
1) Sono altamente omologhi, ma solo uno interagisce con il DNA
In uno screening per difetti genetici in tumori, Dr.You scopre che un gene X è normalmente espresso nell’epitelio del colon, ma non è più espresso in adenomi (che come sapete mostrano un’anormale funzione della Wnt pathway). È plausibile che:
1) X lavora in una via di trasduzione parallela
2) X è represso da β-catenina
3) X è un repressore trascrizionale di β-catenina
4) X è un coattivatore che sostituisce la β-catenina
5) Nessuna di queste risposte
3) X è un repressore trascrizionale di β-catenina
Il gene X codifica una proteina di funzione poco chiara ma probabilmente coinvolta nella via di Wnt. Un farmaco che inibisce X causa completa inibizione dell’attività biologica indotta dal trattamento delle cellule con ligandi Wnt, ma lo stesso farmaco non ha alcun effetto in cellule di tumore del colon. Indica l’ipotesi più probabile/compatibile tra quelle qui elencate
1) X potrebbe attivare LRP56
2) X potrebbe attivare B-catenina
3) X potrebbe inibire Dishevelled
4) X potrebbe attivare GSK3
5) X potrebbe scalzare Groucho da TCF3
4) X potrebbe attivare GSK3
Da cosa è causata la oloprosencefalia (SHH pathway) (3 giuste)
1) assenza di Smothened
2) assenza di Ptc
3) variazioni di Ci/Gli che stabilizzano il legame con CBP
4) assenza di Shh
5) assenza di colesterolo
6) Assenza di processing di Gli
1) assenza di Smothened
4) assenza di Shh
5) assenza di colesterolo
Come possono i ligandi TGF-β generare risposte incredibilmente diverse? (due risposte corrette)
1) Ci sono diversi tipi di recettori per TGF-β a seconda del tipo cellulare
2) Fungono da morfogeni, cioè danno risposte diverse a seconda della concentrazione
3) Diverse combinazioni di Smad1, 2, 3, 4 e 5 generano diverse risposte trascrizionali
4) Legano partners diversi e quindi possono regolare geni diversi
5) I promotori per gli stessi geni cambiano a seconda delle cellule e quindi le Smad regolano geni diversi
6) Solo alcune cellule permettono ai ligandi TGF-β di legarsi al DNA
2) Fungono da morfogeni, cioè danno risposte diverse a seconda della concentrazione
4) Legano partners diversi e quindi possono regolare geni diversi
Nella procedura che comporta la generazione di topi knock-out si utilizzano delle ES ingegnerizzate. Dopo aver identificato dei cloni che sono ricombinanti omologhi:
1) Queste cellule vengono fatte sviluppare in vitro per generare blastocisti
2) Queste cellule vengono iniettate in femmine pseudogravide
3) Sono iniettate in blastocisti wild-type
4) Queste cellule contribuiscono a tutte le cellule dell’individuo fin da subito
5) Sono mescolate ad altre cellule ES per sostenerne lo sviluppo e generare topi chimera
3) Sono iniettate in blastocisti wild-type
Che cosa è un LoxP? (due risposte esatte)
1) È un complesso enzima/DNA che permette la ricombinazione omologa tra un gene naturale e uno
ingegnerizzato
2) È una breve sequenza di un batteriofago. Tra due LoxP diversi avviene una ricombinazione omologa
3) Può generare un knock-out condizionale si utilizzano 2 LoxP abbastanza vicini perché altrimenti non c’è ricombinazione
4) Può generare un knock-out condizionale si utilizzano 2 LoxP lontani tra i quali si trova una sequenza essenziale per la funzione/espressione di un gene
2) È una breve sequenza di un batteriofago. Tra due LoxP diversi avviene una ricombinazione omologa
3) Può generare un knock-out condizionale si utilizzano 2 LoxP abbastanza vicini perché altrimenti non c’è ricombinazione
Come si può generare un topo modello in cui un gene endogeno viene acceso in un certo tessuto?
1) Si utilizza un topo transgenico in cui la Cre è espressa da un promotore tessuto specifico
2) Si utilizza un topo knock-in in cui un esone essenziale viene sostituito con uno mutante e attivo in modo costitutivo
3) Si generano dei topi knock-in in cui due siti LoxP fiancheggiato una cassetta di Stop a livello del 5’UTR
4) Si generano dei topi knock-in in cui due siti LoxP fiancheggiato un esone essenziale
5) Si utilizza un topo transgenico in cui il gene di interesse è inattivato per knock-out
6) Una combinazione di quanto scritto sopra (3+1)
7) Una combinazione di quanto scritto sopra (4+1)
7) Una combinazione di quanto scritto sopra (4+1)
Data la seguente pathway per la sintesi del prodotto essenziale A, dove le lettere sono composti intermedi e i numeri enzimi (ovvero, leggi: X viene trasformato in Y da enzima 1, ecc):
X->1->Y->2->Z->3->A. Esistono mutanti (homozygous null) per 1(m1), 2(m2), 3(m3), la cui crescita, ovviamente, sarà per tutti rescued (recuperata) dall’aggiunta di A nel mezzo di coltura.
A. Quali intermedi si accumuleranno rispettivamente in m1, m2 e m3?
1) ZYX
2) YZ
3) XYZ
4) ZXY
B. E in quali intermedi (da aggiungere nel mezzo di coltura) cresceranno m1, m2, m3? Rispettivamente in:
1) AAX/A/ZA
2) YZA/Y/A
3) YZA/ZA/A
4) YZA/A/Z
A. 3) XYZ
B. 3) YZA/ZA/A
La metilazione del DNA: (2 esatte)
1) È associata a repressione della trascrizione solo in un contesto di eterocromatina
2) È irreversibile, perché non esistono enzimi in grado di rimuovere il gruppo metilico dai nucleotidi
3) Avviene sul carbonio 5 della citosina, solo quando è seguita sullo stesso filamento da una guanina
4) Non ha alcuna rilevanza per i promotori con TATA box
5) Può essere trasmessa da una generazione alla successiva
3) Avviene sul carbonio 5 della citosina, solo quando è seguita sullo stesso filamento da una guanina
5) Può essere trasmessa da una generazione alla successiva
La chromatin immunoprecipitation è una tecnica di biologia molecolare che permette: (1 sbagliata)
1) Di identificare le regioni di DNA legata da un fattore di trascrizione
2) Di identificare le regioni di DNA in cui è presente una specifica modificazione istonica
3) Di identificare le regioni di DNA prive di nucleosomi (nucleosome free regions)
4) Di identificare le regioni di DNA a cui è legata l’RNA polimerasi
3) Di identificare le regioni di DNA prive di nucleosomi (nucleosome free regions)
Homeobox: quale risposta è sbagliata?
1) È codificato da una sequenza che include tre alfa-eliche di cui solo una entra nel solco maggiore
2) Si trova nei geni Hox e in geni Oct
3) L’acido retinoico ha effetti simili all’aumento dell’espressione dei geni Hox più in 3’
4) La mutazione loss of function di un gene Hox espresso nella regione lombare determina la formazione di una vertebra toracica soprannumeraria
5) La mutazione gain of function (espansione di espressione in territorio toracico) di un gene Hox espresso nella regione lombare determina la formazione di una vertebra lombare soprannumeraria
1) È codificato da una sequenza che include tre alfa-eliche di cui solo una entra nel solco maggiore
3) L’acido retinoico ha effetti simili all’aumento dell’espressione dei geni Hox più in 3’
5) La mutazione gain of function (espansione di espressione in territorio toracico) di un gene Hox espresso nella regione lombare determina la formazione di una vertebra lombare soprannumeraria
HOX genes. Quale delle seguenti affermazioni è sbagliata?
1) In un mutante di HOX, il fenotipo che emerge è l’acquisizione di un destino di default
2) Nel mutante (knockout) di Hoxc8 si forma una vertebra lombare al posto di una toracica
3) Ubx è espresso prima e più anteriormente di AbdA
4) L’acido retinoico è un teratogeno perché nei figli di madri che assumono questo teratogeno si overesprimono i geni più al 3’ del cluster
2) Nel mutante (knockout) di Hoxc8 si forma una vertebra lombare al posto di una toracica
Qual è la funzione di CRISPR nei batteri?
1) Sistema immunitario ancestrale
2) Movimento del flagello
3) Coniugazione batterica
4) Replicazione batterica
5) Metabolismo del glucosio nei batteri
1) Sistema immunitario ancestrale
La fusione tra crRNA e trascrRNA consente di:
1) Aumentare l’efficienza di trascrizione
2) Aumentare l’efficienza di tagli a doppio filamento rispetto a tagli a singolo filamento
3) Rendere il sistema CRISPR indipendente dalla PAM sequence
4) Utilizzare trascrRNA che colpiscano sequenze target diverse
5) Minimizzare gli elementi da introdurre all’interno della cellula in cui vogliamo fare genome editing
5) Minimizzare gli elementi da introdurre all’interno della cellula in cui vogliamo fare genome editing
Quale delle modalità di difesa dei batteri dai fagi tramite CRISPR è stata sfruttata per il genome
editing?
1) I
2) II
3) III
4) IV
5) V
2) II
Il cromosoma X:
1) viene inattivato subito dopo la fecondazione
2) viene inattivato nella linea germinale maschile
3) viene inattivato nella linea germinale femminile
4) nessuna delle precedenti
4) nessuna delle precedenti
Come faresti la purificazione di una proteina dove vengono aggiunte 6 istidine alla catena amminoacidica?
1) Cromatografia per affinità con anticorpo che riconosca le 6 istidine
2) Cromatografia per affinità sfruttando lo zinco che lega l’istidina
3) Cromatografia a scambio ionico sfruttando la proteinazione in ambiente acido delle istidine
4) In base al peso sapendo che con quelle 6 istidine pesa di più
3) Cromatografia a scambio ionico sfruttando la proteinazione in ambiente acido delle istidine
