Cours 6 Flashcards

1
Q

Objectif de l’expression protéique

A

Produire une protéine fonctionnelle

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Q

Facteurs influençant le choix du système d’expression (protéine)

A

But expérimental
Rendement
Besoin de purification
Modification post-traductionnelles Difficulté expérimentale
Coût

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3
Q

Systèmes d’expression

A

Bactéries

Levure

C d’insectes

Systeme de reticulocytes (transcription/traduction in vitro) —> permet d’ajouter des facteurs supplémentaires (ex aa marques)

C de mammifère en culture

Animaux transgéniques

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4
Q

Choix de bactéries et levures bon pour:

A

pour produire de grandes quantités de protéines pour des expériences in vitro

(mesure d’activités, études de structure, interaction protéine- protéine, production d’antigènes, de ligands, etc.)

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5
Q

Choix de c de mammifères bon pour :

A

étudier la fonction cellulaire/biologique, les modifications post-traductionnelles/activation, les interactions protéine-protéine, la participation aux voies de signalisation

—> sont souvent complémentaires et permettent de valider les résultats obtenus, surtout lors d’études structure/fonction de la protéine.

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6
Q

Choix du vecteur dépend de:

A

de l’organisme dans lequel on voudra exprimer la protéine

—> La séquence promotrice permettant d’induire la transcription de l’ADN complémentaire inséré dans le vecteur en ARNs messagers est spécifique à l’organisme-hôte.

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7
Q

Phosphorylation dans la bactérie?

A

Faible quantité

—> lorsqu’une kinase est encodée dans le gene en question

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8
Q

2 points clés dans l’expression de protéines recombinantes dans les b

A

1) choix du vecteur d’expression

2) choix de la souche d’E. Coli

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9
Q

ARN Pol à utiliser avec vecteur pET-28a

A

Polymerase T7 —> production d’ ARN plus forte (plus de qte) : production de proteines + forte (+ de qte)
—> aussi largement contrôlable (important pour que E. Coli n’éjecte pas le plasmide)

—> peut aussi utiliser polymerase native de E. Coli

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10
Q

Contrôle de la transcription T7 est basée sur quel mode de régulation de gene?

A

Operon Lac
—> transcription réprimée par le represseur Lac codé dans le génome d’E. Coli (gene LacI)

Represseur constitutif - inhibé par composantes connues sous nom d’inducteurs (ex IPTG)
= transcription

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11
Q

Souche bactérienne DE3 (douche d’e coli)

A

Modifiées pour coder l’ARN Pol T7 sous le contrôle du promoteur de l’opérateur Lac (activation par IPTG qui inhibe le represseur Lac)

—> gêne codé dans le vecteur pET aussi sous le contrôle du promoteur T7

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12
Q

Promoteurs qui peuvent être utilisés pour contrôler l’expression des vecteurs

A

T7
T7lac
Lac
araBAD
Tet

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13
Q

Promoteur pBAD
Régulation

A

AraC interagit avec O2 et I1 pour former une boucle —> inhibition

En présence d’arabinose et AMPc (se lie au CAP)
—> arabinose se lie a AraC qui change de conformation et se lié à I1 et I2
—> transcription activée

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14
Q

Vecteur avec régulateur d’arabinose

A

pBAD-Vectors

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15
Q

C’est quoi la répression de glucose?

A

Quand on a besoin du complexe CAP-AMPc pour activer la transcription

—> présence de glucose = absence d’AMPc = moins de transcription

—> utilisé dans Lac et araBAD

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16
Q

Mécanisme de régulation de transcription Tet

A

Régulée par molécule tétracycline
—> utilise pour induire ou réprimer des gènes spécifiques chez les mammifères

TRE : faire de 7 tetO

tTA —> tetracycline-controlled transactivator
Doxycycline peut se lier à tTA et rtTA

rtTA —> reverse tTA

tetR —> represseur tet

VP16 —> protéine virale 16

Tet off : absence de VP16 —> tTA se lie a TRE et active transcription

Avec VP16 —> VP16 se lie a tTA et transcription est inactivée

Tet on:
Sans VP16 —> rtTA pas lié à TRE et pas de transcription

Avec VP16 —> rtTA se lie a VP16 qui se lie a TRE et transcription est induite

17
Q

4 types de régulation de gènes

A

activation de transcription
1) positif inductible

2) negatif inductible

inhibition de transcription
3) positif repressible

4) negatif repressible

—> contrôle négatif : represseur attache inhibe

—> contrôle positif : activateur attache active

18
Q

Modifications standard de Souches d’E. coli conçues pour l’expression des protéines

A

ompT, élimine une protéase de la membrane externe

Ion protease, élimine la protéase

hsdSB, pas de système de méthylation/restriction

dcm, pas de cytosines méthylées

19
Q

Étapes générales pour la production de protéines

A

•Transformation d’ADN en e coli —> sélection de b avec plasmide recombine par antibiotique et culture liquide

• après avoir atteint la densité optique à 37 C étape d’induction de transcription de la protéine à une temp plus faible (stabilité protéique)
—> activation du gene

• tester durée de l’induction en prélèvement à plusieurs temps

20
Q

Transcription et traduction im vitro permet quoi?

A

Transcription d’ARNm et production de protéines sans avoir besoin d’une c hôte

21
Q

Transcription et traduction faites en combien d’étapes?

A

Première étape : transcription avec Pol T7 —> création d’ADNm à partir de ADNc dans le plasmide

Deuxième étape: traduction
—> lysat bactérien, ribosomes, dNTP et autres enzymes

—> permet introduction d’étiquetage spécifique sur un dNTP

22
Q

Étiquettes et protéines de fusion sont utilisés pour quoi?

A

pour faciliter la purification/analyse des protéines

23
Q

Exemples d’Etiquettes et protéines de fusion

A

Gluthatione-S- transferase (GST)

Poly-Histidine (6X)

Maltose Binding Protein (MBP)

Strep-tag II

Protéine fluorescente (GFP, YFP, RFP…)

Étiquette flag, Myc, etc…

24
Q

Pourquoi est-ce qu’il faut tester le placement de l’étiquette ?

A

Pour s’assurer qu’elle n’interagît pas avec le repliement ou la fonction de la protéine

25
Q

Est-ce que les étiquettes peuvent être enlevées?

A

Oui elles peuvent être clivées par une protease specifique

26
Q

Purification de l’étiquette histidine

A

purification par affinité

Sur Ni2+ sur une bille d’agarose ou autre à bas pH résiste hautes C de sel

—> lavage avec imidazole (remplace l’interaction de l’histidine avec Ni2+)
Ou
—> éliminer l’ion Ni2+ avec EDTA (se lie aux métaux et les retire de la matrice)
Ou
—> baisser le pH, histidine ne peut plus interagir avec Ni2+

27
Q

Marqueur Strep

A

purification par affinité

—> tag strep se lie a strep-tactin de manière spécifique

—> elution avec analogie de la biotine (desthiobiotin) - se lie moins étroitement que la biotine et la colonne peut être réutilisée

28
Q

GST comme protéine de fusion

A

GST —> protéine globulaire = peut favoriser la solubilité de la protéine d’intérêt

—> se lie au glutathione immobilisé sur un support solide (bille de sepharose)

—> elution avec excès de glutathione reduit libre

• C élevées de sel sont utilisées pour inhiber interactions non spécifiques avec autres protéines de la cellule

29
Q

SDS-PAGE est utilisée pour quoi? Comment?

A

Pour analyse de protéines

1) dénaturation par SDS - protéine enrobée de charges négatives

2) migration par gel acrylamide
—> migration par masse moléculaire

• 2 parties :
A- gel d’entassement : migration rapide concentre le proteines pour qu’elles entrent toutes en mm temps dans le gel de séparation

B- gel de séparation : séparation des protéines selon leur poids moléculaire

30
Q

Qu’est-ce qui accélère la polymérisation du gel acrylamide?

A

Les radicaux libres (APS)

—> catalyseur TEMED stabilise radicaux libres

31
Q

Tampon Laemmli

A

SDS 2%
beta-mercaptoethanol (défait ponts disulfure)
Glycérol (alourdit échantillons)
Bleu de bromophenol (visualisation)
PH 6,8
Chauffer pour dénaturer proteines

32
Q

Quoi faire pour pour mieux séparer les protéines de différentes tailles

A

—> Différentes concentrations de gel

Plus le gel est concentré, plus les protéines sont retardées; idéal pour bien séparer les petites protéines.

  • concentre = mieux pour séparer grosses protéines mais petites seront perdues (sorties du gel)
33
Q

Quoi faire après séparer les protéines?

A

Il faut les colorer pour les visualiser

—> bleu de coomassie se lie aux aa charges +

—> visibles à l’œil nu

34
Q

Extraction des protéines méthodes

A

1) destruction mécanique : risque d’augmenter T et ainsi dénaturer protéines

  • sonicateur (sondes perturbent les c E.Coli)
  • rupture des c par changement de pression soudain

2) destruction par lyse : sur glace et avec des inhibiteurs de proteases

  • détergents non-ioniques
    —> non-dénaturants (brisent interactions lipide-lipide et lipide-protéine)
  • détergents ioniques (SDS…)
    Laemmli—> dénature protéines, ne garde pas son fonctionnement