Cours 3 Flashcards

1
Q

4 outils de clonage

A
  1. Les vecteurs de clonage
  2. Les cellules hôtes
  3. Les enzymes pour manipuler l’ADN
  4. Les techniques reliées au clonage et à l’analyse
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

Site unique de démarrage de la réplication d’un plasmide

A

Ori

—> normalement riche en les nucleotides A et T

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Marqueurs de sélection d’un plasmide fonction?

A

utilisés pour identifier et sélectionner les bactéries qui ont incorporé les vecteurs recombinants

—> Marqueurs de Sélection positive ou négative (Antibiotiques, LacZ)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

Comment sont regroupés des sites de clonage dans un plasmide/vecteur

A

regroupés dans un
« polylinker » (ou site de clonage multiple/MCS)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

4 étapes d’amplification d’un gène par vecteur

A

1) digestion-ligation

2) transformation, sélection, amplification

3) purification de l’ADN recombinant

4) analyse

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

Que font les enzymes de restriction

A

coupent l’ADN à des sites spécifiques constitués de séquences palindromiques sur les deux brins.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

2 types d’enzymes de restriction

A

Endonucleases & exonucleases

Endo: hydrolysent une liaison ester interne

Exo: libèrent par hydrolyse le nucléotide situé à lʼextrémité 5ʼ ou 3ʼ

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

CRISPR-Cas utilise 2 types d’enzymes pour la protection contre les bacteriophages
Quels types?

A

• enzymes qui modifient l’ADN de la bactérie pour le protéger

• enzymes de restriction qui clivent l’ADN du phage

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

Nomenclature des enzymes de restriction

A

nommée en fonction de la bactérie à partir de laquelle elle a été isolée suivant un système basé sur
• le genre,
• l’espèce,
• la souche
• l’ordre d’identification dans cette bactérie

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

2 types d’extrémités générées par les enzymes de restriction

A

• COUPURES A BOUTS COHESIFS/COLLANTS

• COUPURES A BOUTS FRANCS

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

3 types de methylases dans la majorité des souches de E. Coli utilisée en laboratoire

A

Dam, Dcm et EcoK1

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Que font les ADN méthylases

A

transfèrent des groupements methyl du S- adenosylmethionine à une adenine ou cytosine

—> méthylases des procaryotes sont associées aux systèmes de restriction/modification. Elles permettent de protéger l’ADN bactérien.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

Que peut être une raison d’une enzyme de restriction qui ne clive pas?

A

—> methylation qui modifie des sites de restriction

(Si la méthylation est présente certaines enzymes de restriction ne clivent plus l’ADN)

—> Si une enzyme ne coupe pas il faut vérifier sa sensibilité à la méthylation et le cas échéant utiliser des bactéries déficientes dans les méthylases spécifiques pour produire cet ADN (comme dam-) .

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

3 formes de migration d’un plasmide sur gel d’agarose

A
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

Quelle est l’étape la plus problématique dans la procédure de clonage?

A

La ligation du fragment d’ADN d’intérêt au vecteur pour former le vecteur recombinant

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Que fait l’ADN ligase?

A

Catalyselaformationdepontsphosphodiesterentre deux nucléotides dans l’ADN double brin

—> connecte le 3’OH au 5’phosphate avec ATP ou NAD+ comme cofacteur

17
Q

3 étapes du mécanisme d’action de la T4 ADN ligase

A

1) adenylylation de l’ADN ligase

2) activation du côté 5’phosphate dans le bris

3) déplacement de l’AMP ferme le bris

18
Q

Ligation de bouts collants avantage?

A

L’appariement des bases du bout collant favorise la ligation

19
Q

Comment induire un clonage directionnel?

A

Via clonage avec des ADN à bouts collants avec enzymes différentes

—> memes enzymes pour l’insert et le vecteur (sauf dans le cas d’enzymes compatibles)

20
Q

Est-ce qu’on peut faire une insertion directionnelle avec bouts francs?

A

Non

21
Q

2 problèmes de faire des bouts francs?

A

1) Pas dʼappariement qui aide à la ligation

2) la probabilité que le vecteur se referme sur lui-même est plus grande que la probabilité d’incorporer l’insert

—> il faut mettre une C bcp plus grande d’insert que de vecteur

22
Q

Comment inhiber la ligation du vecteur sur lui-même?

A

traitement CIP du vecteur, (pas de l’insert)
En enlevant le 5’phosphate on inhibe la ligation

—> utilisation de phosphatase (CIP, calf intestinal phosphatase)

23
Q

Que font certaines polymerases aux extrémités 3’ des produits PCR?

A

Certaines polymérases possèdent une activité adenyl transférase qui ajoute des A aux extrémités 3’ des produits PCR

—> Hybridation T/A facilite ligation : mime bouts collants

24
Q

Système pGEM fait quel type de clonage?

A

TA cloning
—> Hybridation T/A facilite ligation : mime bouts collants

—> vecteurs pGEM avec extrémités thymines (T) complémentaires aux extrémités adénine (A) de l’insert PCR

25
Q

Système TOPO

A

ligation de produits PCR
Fragment d’ADN (insert) avec extrémités adénine (A)

Vecteur TOPO contient une topoisomerase I (enzyme qui peut couper un brin de l’ADNdb) —> clive un des brins du vecteur
forme des bouts T

—> permet le clonage directionnel

26
Q

Caractéristiques de E. Coli

A

Bactérie gram -

Pas de membrane nucléaire

Chromosome : molécule duplexe circulaire avec 1 site d’attachement à la membrane et 1 origine de réplication unique

1e souche utilisée : K12
(Conservée comme souche pure)

Supporte réplication des plasmides

27
Q

3 modifications de E. Coli K12 pour favoriser le clonage

A

1) Élimination des systèmes de restriction/modification

2) systèmes de recombinaison de l’ADN modifiés pour prévenir les réarrangement (RecA-)

3) activités endonucléases mutées pour augmenter le taux de production de plasmide (EndA-)

28
Q

Transformation

A

Processus qui permet de faire entrer les vecteurs dans les bactéries

29
Q

Efficacité de transformation

A

nombre de bactéries transformées par 1 microgramme dʼADN

30
Q

Il faut faire quoi aux bactéries avant la transformation?

A

rendre les bactéries compétentes

—> Chimiquement compétentes (CaCl2 froid)/choc thermique (42 C)

—> Eléctrocompétentes (H2O froide)/éléctroporation

31
Q

Préparation de bactéries chimiquement compétentes

A

(CaCl2 froid)/choc thermique (42 C)

32
Q

Préparation de bactéries éléctrocompétentes

A

(H2O froide)/éléctroporation

33
Q

Que permettent les antibiotiques lors du clonage

A

permettent de sélectionner les bactéries contenant le plasmide recombiné

  1. Ampicilline (1er gêne de résistance) - détecté vecteur
  2. 2e gêne de résistance - permet de différentier quelles bactéries ont l’insert recombiné
    (Sélection négative / sélection positive)
34
Q

Sélection négative par les antibiotiques

A

la bactérie contenant le plamide recombinant (avec insert) est prélevée sur la boite de milieu Amp par comparaison avec la boite de milieu Amp + Tet

35
Q

2 formes de sélection positive (clonage)

A
  • Sélection par antibiotique
  • Sélection blanc/bleu
36
Q

Système de sélection LacZ - blanc/bleu

A

LacZ alpha —> code pour le peptide alpha de la protéine beta-galactosidase
(Enzyme qui convertit X-Gal en produit bleu)

—> permet la complementation alpha

37
Q

4 façons de Lyse membrane cellulaire – dénaturer l’ADN

A
  • mécanique,
  • détergent (SDS),
  • lysozyme,
  • lyse alcaline
38
Q

Séparer l’ADN plasmidique des protéines et de l’ADN chromosomal
3 méthodes

A
  • neutralisation pH (ségrégation par conformation)
  • phenol extraction + ethanol precipitation
  • silica-bead methods