Cour 1 - Prélèvements des matrices biologiques Flashcards
Qu’est-ce que la double identification?
Nom, prénom et numéro d’identification propre au patient
Date et heure exact
Clientèles, qu’est-ce qu’un…
Patient admis?
Patient inscrit?
Patient inscrit-urgent?
Patient enregistré?
Patient admis? Usager enregistré qui occupe un lit officiel dans l’établissement.
Patient inscrit? Usager enregistré qui ne nécessite pas de lit/hospitalisation ou d’hébergement.
Patient inscrit-urgent? Représent usagers inscris exclusivement au sevrice de l’urgence.
Patient enregistré? Usagers recevant recevant des services de types externe aux fin dx med dans un centre de prélèvement.
Trois phases incontournables à considérer afin d’offrir un service
d’analyses biochimiques?
Quel sont les 11 étapes?
QRPS RiACQ crir RsDx
- Phase pré-analytique (étapes 1 à 5)
- Phase analytique (étape 6)
- Phase post-analytique (étapes 7 à 11)
- Question/Questionnaires médecin
- Requête d’analyse
- Prélèvement/Préparation patient
- Shipping
- Réception et identification
- Analyse
- CQ
- Compilation des résultats
- Interpétation des résultats
10/11. Rs/Dx
Remplie le tableau Thierry.
Quel pourcentages d’erreurs est attribuables au pré-analytique, à l’analytique, au post-analytique?
Pré-analytique 62%
Analytique 15%
Post-analytique 23%
Quels sont les 5 erreurs pré-analytiques les plus fréquentes dans une requête STAT?
1) Tubes de prélèvements ne sont pas remplis de façon adéquate (13% des sources d’erreurs)
2) Erreur lors de l’identification du patient (9%)
3) Mauvais tubes/contenants de collectes utilisés (8%)
4) Erreur des tests prescrits sur les requêtes de prélèvements (7%)
5) Tubes vides ou manquants (7%)
En 2-3 mots, 7 erreurs de préanalytique possible.
Patients (2)
Tube (3)
Handling (1)
Omission (3)
Mauvaise identité patient
Mauvais état patient (jeun, aliments, mx, etc)
Mauvais tube
Intrégrité du tube compromise
Mauvais étiquetage
Mauvais shipping (distribution/enregistrement)
Omission de centrifugation/aliquotage/prétraitement
Tu as des interférences dans ton sample, tu pense que ca peut venir du tube de prélèvement. Qu’est-ce tu peux faire pour investiguer d’ou vient l’interférence?
- Regarder si condition vient du patient (ictère, mdx…)
- Tester sample avec autre technique.
- Incuber l’écx avec une composante du tube potentiellement responsable.
- Tester tube/kit autre compagnie.
- S’informer auprès du fabricant.
- Contacter Santé Canada pour informer de la situation.
Nomme moi des facteurs qui peuvent fair varié l’analyte dans un sample chez le patient dans son corps, avant le prélèvement.
Âge, sexe, ethnie du patient, mdx, alimentation, rythme diurne, cycle menstruel, stress/anxiété.
Pré-analytique: Avant le prélèvement. Quel serait des variations prévisibles?
des variation imprévisibles/aléatoires?
Prévisibles: Rythmes cycliques (Ultradienne, Circadienne, Infradienne & Circannuelle)
Imprévisibles: Biologique (Intra-individuelle & interindividuelle)
Differences between individuals (inter-individual variability).
Differences within individuals across repeated observations (intra-individual variability).
Donne un exemple d’analyte prévisible qui change au cour d’un cycle…
Circadien (sur combien de temps?)
Infradien (sur combien de temps?)
Circanuelle (sur combien de temps?)
Ultradienne (sur combien de temps?)
Circadien, 1 jour, cortisol
Infradien, > 3 jours, cycle ovarien, FSH/LH, oestrogènes et progestérones
Circanuelle, 1 an ± 2 mois, Vitamine D
Ultradienne, < 20 heures, Leptine (apétit)
Pré-analytique: Avant le prélèvement. Nomme moi quelques variables contrôlable reliées au patient (9).
Exercice
Diète
Jeun
Posture
Alitement prolongé
Stress
Mx (bcp de cas)
Alcool
Tabac
Aliments avec analytes rare pouvant affecté les analyses/composante sanguines.
Pré-analytique: Avant le prélèvement. Nomme moi quelques variables incontrôlable reliées au patient (9-12).
-Influences biologiques
-Âge
-Ethnie
-Cycles menstruelles
-Sexe
-Facteurs environnementaux
-Obésité
-Grossesse
-Stress
-Fièvre
-Cécité
-Transfusion et infusion de liquides
Tubes de prélèvements: Inhibiteur de la glycose. Quel additif à cet effet spécifique? Quel couleur de tube?
NaF, Gris, Agent inhibant l’utilisation du glucose par les cellules sanguines.
Que nous donne un no de lot/numéro de contrôle du fabricant?
Une identification alphanumérique et/ou symbolique
placée sur l’étiquette par le fabricant qui permet de retracer l’historique de fabrication du produit.
Comment fonctionne le gel séparateur thixotrope?
Il a une densité intermédiaire aux cellules/caillot et au plasma/sérum. Ainsi les cellules plus lourdes sous centri vont au fond, le gel au milieu et le plasma/sérum au-dessus.
Tubes: Additif, Sérum ou plasma?
Transparent
Bleu pâle
Rouge
Or
Noir
Jaune
Vert 1
Vert 2
Lavande
Rose
Brun/Ocre
Gris
Bleu royale
Quel est la différence entre le sang artérielle et veineux?
Les artères transportent le sang depuis le cœur tandis que les veines réacheminent le sang vers le cœur.
Quels sont des matrices ou autres liquides moins commun que le sang et l’urine?
-Synovial
-LCR
-Sueur
-Amniotique
-Sperme
-Lait
-Salive
-Expectoration
-Suc gastrique
-Vomissure
-Sécrétions vaginales
-Pleural
-Péricardique
-Péritonéal
-Suc pancréatique
Prélèvement sanguin :
Technique chez l’enfant/adulte en 9 étapes
GVGEt AAG TmixID
- Gants
- Choisir grosse veine
- Garrot modéré
- Alcool/EtOH
- Aiguille, Angle de 30°, piquer 1cm
- Desserrer garrot < 1 minute
- Remplir tube dans le bon ordre
- Mix des tubes par inversion x5
- ID des tubes
Prélèvement sanguin : Technique chez le nouveau-né
ALiso P2P-PET-ID
- Artérialisation/Linge chaud 3min
- Isopropanol 70%
- Prélèvement à deux personnes
- Piquer < 2,5 mm aiguille 22-23G côté extérieurs du talon
- Essuyer 1er goutte
- Remplir micro tube
- ID des tubes
Ordre de prélèvement des tubes; Ordre d’additifs
- (Hémoculture/sans additif)
- Tubes de coagulation
- Sérum +/- gel
- Plasma→Héparine +/- gel
- EDTA
- NaF/K Oxalate
- Autres types de tube
Ordre de prélèvement des tubes; Couleurs
Transparent, Bleu, Rouge-Noir-Jaune, Vert, Lavande, Rose?, Brun, Gris, Bleu royale, autres.
Quel sont les additifs dis anticoagulants?
EDTA K2 ou K3
Héparine de Li ou Na
Citrate de Na
Urine de 24 heures procédure en 4 étapes, 1 warning.
- La 1er urine du matin n’est pas collecté.
- Collecte urines sur 24 prochaines heures. Dernière urine = 1er urine du 2e matin
Contenant tjs fermer, 2-8°C, noir. - Mentionner au patient devoir d’ID d’éch.
- Patient livre éch.
Si préservatif présent ne pas uriner direct dedans, transvider. Risque de brulure splashback.
Liquide sinovial: Ou? Pourquoi le prélevé? Rôle? Composition?
Ou: articulation/cartilage
Pq: Patient a arthite infl/non-infl/infect/microcrystalline → la ponction est thérapeutique
Rôle: Lubrifiant (hyaluronate), source de nutrition, déchets métaboliques
Comp: Identique au plasma+mucopolysaccharides (hyaluronate), eau, sels minéraux, protéines (13mg/L)
Liquide sinovial: Procédure de prélèvement? (5)
ÉSPVVVP
- Échographie
- Stérilisé
- Ponction à l’aveugle
- Volume à prélevé est variable
- Identifié volume prélevé
Dans quel tube distribute-t-on le liquide synovial?
Anticoagulant ne doit pas être en poudre car sinon crée des artefact dans l’analyse de cristaux.
- Tube hépariné et stérilisé (cultures)
- Tube hépariné ou EDTA (cellules)
- Tube hépariné ou EDTA (autres, ex: cristaux)
- Tube avec NaF (glucose)
Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Rôle? Composition? Origine?
Rôle:
Fournir nutriments au SNC
Déchets métaboliques
Protection→absorbé chocs contre cerveau
Composition:
Ressemble partiellement au plasma sanguin
99% eau
pH 7.32
Très peu protéines et sucres
3-5 lymphocytes/cm3
+ Na, Cl et H
- Ca et K
Origine: Plasma filtré par des plexus choroïdes.
Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Plexus choroïdes, formé de (2)? Fonctions?
Un capillaire entouré de cellules épendymocytes.
Épendymocytes agit comme filtre pour bloquer passage de protéine/glucose et réabsorbé électrolytes.
Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Lieux de ponction? Procédure du prélèvement?
Lieux: L’espace (L3-L4) ou (L4-L5)
- Position assise, bord du lit ou couchée sur le côté
- Désinfection
- Introduction aiguille et aspiration.
- Prélèvement dans 3 tubes stériles, identifié l’ordre, dosé STAT.
Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Les 3 tubes stériles sont utilisé à quel fin?
Tube 1: Biochimie/sérologie
Tube 2: Microbiologie
Tube 3: Décompte cellulaire
Store -20°C
Collecte salivaire de cortisol: Quoi faire ou ne pas faire avant le prélèvement et combien de temps avant? (5)
24h, exercice intense
12h, alcool
3h, a jeun (bouffe, gomme, tabac, exercice)
1h, brosser les dents
10 min avant se rince la bouche avec de l’eau
Collecte salivaire de cortisol: Procédure du prélèvement?
- Identification du contenant (salivette)
- Lavage des mains
- Ouverture de la salivette.
- Mettre tampon (ou cotton) sous la langue sans toucher avec doigts 2-3 min.
→Ne pas mâcher le tampon/cotton! - Remettre tampon dans contenant initial.
- Inscrire date et heure du prélèvement.
Collecte de sperme: Type de récipient?
Récipient: Polypropylène, usage unique, grande ouverture étanche.
→Certains nettoyants/matériaux du polyprep peuvent être toxique au spermatozoides, attention!
Collecte de sperme: Procédure de prélèvement
→Récipient…
→Intervalle…
→Localisation, pourquoi la?
→Temp?
Pré pesé récipient, repesé avec éjaculat, Double identification+date/heure prélèvement
Intervalle entre 2 récoltes de sperme 4-6 sem avec abstinence 2-5 j avant.
En établissement favorisé vs chez soi; favorise délai et temp
37°C, tenir éch sur sa peau pour tenir au chaud au transport
Collecte de sperme: Questionnaire préanalytique (6)..
Jours d’abstinence?
Si l’éch recueilli au complet?
Éch transporté conformément? (37C, au contact de la peau)
Heure du prélèvement et d’arrivée d’éch
Interventions médicales/Chx subies/prévues (traitement cancer, vasectomie, vasovasostomie)
Nom conjointe (pour l’éval fertilité, car dossier conservé par médecin peut porter son nom)
Collectes de selles: Informer le patient de (5)…
Évaluation spot vs vollecte
Donner documentation procédure collecte 48-72h
Arrêt de Mx?
Produits à éviter?
Diète à suivre?
Collectes de selles: Comment faire la collecte→précautions (5)
2C2C4C
Contenant fourni par lab
Contenant à usage unique
Ne pas contaminer inté des contenants (eau de toilette/urine/etc)
Ne pas contaminer exté des contenants
Garder à 4°C (évité bactérie croissance)
Quel est la différence entre le plasma et le sérum?
Le sérum possède même composition que plasma, mais il ne contient pas de fibrinogène et autres protéines construisant/causant caillot sanguin (coagulation).
Fractionnement du plasma % (3) ?
Hom much more % of plasma compared to serum?
15-20% more yield of plasma is obtained compared to serum
Préparation d’un sérum dans un tube avec gel conditions de centri?
Préparation de l’urine pour la microscopie conditions de centri?
1000-1300g, 10min, 10°C, avec frein
400g, 5min, sans frein
Effet d’une mauvaise conservation des échantillons
Glucose
pH
pO2
pCO2
lactate
Glucose ↓ car métabolisé par cellules
lactate ↑ car glucose utilisé dans la glycolyse
pO2 ↓ car oxygène consommé par cellules
pCO2 ↑ car cellules en produisent
pH ↓ à cause de ↑ pCO2 et lactate
Prétraitement des spécimens (6)
C-SAEPPh
CSAFE!
Centrifugation
Séparation
Aliquote
Extraction
Précipitation
Ajustement de pH
Pré-analytique : Après le prélèvement; Entreposage T°?
Court terme
Moyen terme
Long terme
Court terme, RT
Moyen terme, 2-8°C
Long terme, -20°C, -30°C, -80°C
Comment le garrot provoque-t-il une interférence?
Donne moi 3-4 examples de changement d’analytes en conséquence d’un garrot rester trop longtemps?
Un temps de garrot prolongé peut entraîner une accumulation de sang au site de ponction veineuse, une condition appelée hémoconcentration. L’hémoconcentration peut entraîner des résultats faussement élevés pour les analytes à base de glucose, de potassium, cholestérol, protéines de coagulation et globules rouges. La quantité de protéines de transport augmente comme l’albumine.
Quel interférence peux venir d’un soluté donné au patient au niveau du sang?
Venir interféré avec les analytes que le soluté donne au corps (ex: Glucose ou NaCl). Évidemment prélève pas dans la ligne de soluté ou sur le bras ou est fixer ton soluté.
Au niveau du prélèvement sanguin: Qu’est-ce qui peux causer de l’hémolyse?
Trop secouer tube
Aiguille trop petite
Tirer trop fort sur piston seringue
Pousser trop fort sur piston seringue
Garrot trop long (> 1min)
Ratio volume sang/additifs trop bas
Présence d’alcool sur site de ponction
Prélèvement via un cathéter
Hémolyse affecte quels analytes et comment?
Surestimation:
K↑
Mg↑
Lactate dehydrogenase (LD)↑
Aspartate aminotranferase (AST)↑
Alanine aminotransferase (ALT)↑
Protéine totale↑
Fer↑
PO4↑
NH4↑
Interférences après le prélèvement spécifiques aux tubes (2)? Effect exact pour chacun (2 et 2)?
Récipient incorrect pour l’échantillon :
1. Mauvais tube → Mauvais agent de conservation.
2. Transfert d’un tube à un autre.
Volume insuffisant:
1. Effet de dilution si agent de conservation liquide dans le tube.
2. Volume insuffisant pour analyses.
