Cour 1 - Prélèvements des matrices biologiques

Question 1

Qu’est-ce que la double identification?

Answer 1

Nom, prénom et numéro d’identification propre au patient
Date et heure exact

Question 2

Clientèles, qu’est-ce qu’un…
Patient admis?
Patient inscrit?
Patient inscrit-urgent?
Patient enregistré?

Answer 2

Patient admis? Usager enregistré qui occupe un lit officiel dans l’établissement.
Patient inscrit? Usager enregistré qui ne nécessite pas de lit/hospitalisation ou d’hébergement.
Patient inscrit-urgent? Représent usagers inscris exclusivement au sevrice de l’urgence.
Patient enregistré? Usagers recevant recevant des services de types externe aux fin dx med dans un centre de prélèvement.

Question 3

Trois phases incontournables à considérer afin d’offrir un service
d’analyses biochimiques?

Quel sont les 11 étapes?
QRPS RiACQ crir RsDx

Answer 3

1. Phase pré-analytique (étapes 1 à 5)
2. Phase analytique (étape 6)
3. Phase post-analytique (étapes 7 à 11)
4. Question/Questionnaires médecin
5. Requête d’analyse
6. Prélèvement/Préparation patient
7. Shipping
8. Réception et identification
9. Analyse
10. CQ
11. Compilation des résultats
12. Interpétation des résultats
    10/11. Rs/Dx

Question 4

Remplie le tableau Thierry.

Answer 4

Question 5

Quel pourcentages d’erreurs est attribuables au pré-analytique, à l’analytique, au post-analytique?

Answer 5

Pré-analytique 62%
Analytique 15%
Post-analytique 23%

Question 6

Quels sont les 5 erreurs pré-analytiques les plus fréquentes dans une requête STAT?

Answer 6

1) Tubes de prélèvements ne sont pas remplis de façon adéquate (13% des sources d’erreurs)
2) Erreur lors de l’identification du patient (9%)
3) Mauvais tubes/contenants de collectes utilisés (8%)
4) Erreur des tests prescrits sur les requêtes de prélèvements (7%)
5) Tubes vides ou manquants (7%)

Question 7

En 2-3 mots, 7 erreurs de préanalytique possible.
Patients (2)
Tube (3)
Handling (1)
Omission (3)

Answer 7

Mauvaise identité patient
Mauvais état patient (jeun, aliments, mx, etc)
Mauvais tube
Intrégrité du tube compromise
Mauvais étiquetage
Mauvais shipping (distribution/enregistrement)
Omission de centrifugation/aliquotage/prétraitement

Question 8

Tu as des interférences dans ton sample, tu pense que ca peut venir du tube de prélèvement. Qu’est-ce tu peux faire pour investiguer d’ou vient l’interférence?

Answer 8

1. Regarder si condition vient du patient (ictère, mdx…)
2. Tester sample avec autre technique.
3. Incuber l’écx avec une composante du tube potentiellement responsable.
4. Tester tube/kit autre compagnie.
5. S’informer auprès du fabricant.
6. Contacter Santé Canada pour informer de la situation.

Question 9

Nomme moi des facteurs qui peuvent fair varié l’analyte dans un sample chez le patient dans son corps, avant le prélèvement.

Answer 9

Âge, sexe, ethnie du patient, mdx, alimentation, rythme diurne, cycle menstruel, stress/anxiété.

Question 10

Pré-analytique: Avant le prélèvement. Quel serait des variations prévisibles?
des variation imprévisibles/aléatoires?

Answer 10

Prévisibles: Rythmes cycliques (Ultradienne, Circadienne, Infradienne & Circannuelle)
Imprévisibles: Biologique (Intra-individuelle & interindividuelle)

Differences between individuals (inter-individual variability).
Differences within individuals across repeated observations (intra-individual variability).

Question 11

Donne un exemple d’analyte prévisible qui change au cour d’un cycle…
Circadien (sur combien de temps?)
Infradien (sur combien de temps?)
Circanuelle (sur combien de temps?)
Ultradienne (sur combien de temps?)

Answer 11

Circadien, 1 jour, cortisol
Infradien, > 3 jours, cycle ovarien, FSH/LH, oestrogènes et progestérones
Circanuelle, 1 an ± 2 mois, Vitamine D
Ultradienne, < 20 heures, Leptine (apétit)

Question 12

Pré-analytique: Avant le prélèvement. Nomme moi quelques variables contrôlable reliées au patient (9).

Answer 12

Exercice
Diète
Jeun
Posture
Alitement prolongé
Stress
Mx (bcp de cas)
Alcool
Tabac
Aliments avec analytes rare pouvant affecté les analyses/composante sanguines.

Question 13

Pré-analytique: Avant le prélèvement. Nomme moi quelques variables incontrôlable reliées au patient (9-12).

Answer 13

-Influences biologiques
-Âge
-Ethnie
-Cycles menstruelles
-Sexe
-Facteurs environnementaux
-Obésité
-Grossesse
-Stress
-Fièvre
-Cécité
-Transfusion et infusion de liquides

Question 14

Tubes de prélèvements: Inhibiteur de la glycose. Quel additif à cet effet spécifique? Quel couleur de tube?

Answer 14

NaF, Gris, Agent inhibant l’utilisation du glucose par les cellules sanguines.

Question 15

Que nous donne un no de lot/numéro de contrôle du fabricant?

Answer 15

Une identification alphanumérique et/ou symbolique
placée sur l’étiquette par le fabricant qui permet de retracer l’historique de fabrication du produit.

Question 16

Comment fonctionne le gel séparateur thixotrope?

Answer 16

Il a une densité intermédiaire aux cellules/caillot et au plasma/sérum. Ainsi les cellules plus lourdes sous centri vont au fond, le gel au milieu et le plasma/sérum au-dessus.

Question 17

Tubes: Additif, Sérum ou plasma?
Transparent
Bleu pâle
Rouge
Or
Noir
Jaune
Vert 1
Vert 2
Lavande
Rose
Brun/Ocre
Gris
Bleu royale

Question 18

Quel est la différence entre le sang artérielle et veineux?

Answer 18

Les artères transportent le sang depuis le cœur tandis que les veines réacheminent le sang vers le cœur.

Question 19

Quels sont des matrices ou autres liquides moins commun que le sang et l’urine?

Answer 19

-Synovial
-LCR
-Sueur
-Amniotique
-Sperme
-Lait
-Salive
-Expectoration
-Suc gastrique
-Vomissure
-Sécrétions vaginales
-Pleural
-Péricardique
-Péritonéal
-Suc pancréatique

Question 20

Prélèvement sanguin :
Technique chez l’enfant/adulte en 9 étapes

GVGEt AAG TmixID

Answer 20

1. Gants
2. Choisir grosse veine
3. Garrot modéré
4. Alcool/EtOH
5. Aiguille, Angle de 30°, piquer 1cm
6. Desserrer garrot < 1 minute
7. Remplir tube dans le bon ordre
8. Mix des tubes par inversion x5
9. ID des tubes

Question 21

Prélèvement sanguin : Technique chez le nouveau-né
ALiso P2P-PET-ID

Answer 21

1. Artérialisation/Linge chaud 3min
2. Isopropanol 70%
3. Prélèvement à deux personnes
4. Piquer < 2,5 mm aiguille 22-23G côté extérieurs du talon
5. Essuyer 1er goutte
6. Remplir micro tube
7. ID des tubes

Question 22

Ordre de prélèvement des tubes; Ordre d’additifs

Answer 22

1. (Hémoculture/sans additif)
2. Tubes de coagulation
3. Sérum +/- gel
4. Plasma→Héparine +/- gel
5. EDTA
6. NaF/K Oxalate
7. Autres types de tube

Question 23

Ordre de prélèvement des tubes; Couleurs

Answer 23

Transparent, Bleu, Rouge-Noir-Jaune, Vert, Lavande, Rose?, Brun, Gris, Bleu royale, autres.

Question 24

Quel sont les additifs dis anticoagulants?

Answer 24

EDTA K2 ou K3
Héparine de Li ou Na
Citrate de Na

Question 25

Urine de 24 heures procédure en 4 étapes, 1 warning.

Answer 25

1. La 1er urine du matin n’est pas collecté.
2. Collecte urines sur 24 prochaines heures. Dernière urine = 1er urine du 2e matin
   Contenant tjs fermer, 2-8°C, noir.
3. Mentionner au patient devoir d’ID d’éch.
4. Patient livre éch.

Si préservatif présent ne pas uriner direct dedans, transvider. Risque de brulure splashback.

Question 26

Liquide sinovial: Ou? Pourquoi le prélevé? Rôle? Composition?

Answer 26

Ou: articulation/cartilage
Pq: Patient a arthite infl/non-infl/infect/microcrystalline → la ponction est thérapeutique
Rôle: Lubrifiant (hyaluronate), source de nutrition, déchets métaboliques
Comp: Identique au plasma+mucopolysaccharides (hyaluronate), eau, sels minéraux, protéines (13mg/L)

Question 27

Liquide sinovial: Procédure de prélèvement? (5)

ÉSPVVVP

Answer 27

1. Échographie
2. Stérilisé
3. Ponction à l’aveugle
4. Volume à prélevé est variable
5. Identifié volume prélevé

Question 28

Dans quel tube distribute-t-on le liquide synovial?
Anticoagulant ne doit pas être en poudre car sinon crée des artefact dans l’analyse de cristaux.

Answer 28

1. Tube hépariné et stérilisé (cultures)
2. Tube hépariné ou EDTA (cellules)
3. Tube hépariné ou EDTA (autres, ex: cristaux)
4. Tube avec NaF (glucose)

Question 29

Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Rôle? Composition? Origine?

Answer 29

Rôle:
Fournir nutriments au SNC
Déchets métaboliques
Protection→absorbé chocs contre cerveau

Composition:
Ressemble partiellement au plasma sanguin
99% eau
pH 7.32
Très peu protéines et sucres
3-5 lymphocytes/cm3
+ Na, Cl et H
- Ca et K

Origine: Plasma filtré par des plexus choroïdes.

Question 30

Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Plexus choroïdes, formé de (2)? Fonctions?

Answer 30

Un capillaire entouré de cellules épendymocytes.
Épendymocytes agit comme filtre pour bloquer passage de protéine/glucose et réabsorbé électrolytes.

Question 31

Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Lieux de ponction? Procédure du prélèvement?

Answer 31

Lieux: L’espace (L3-L4) ou (L4-L5)

1. Position assise, bord du lit ou couchée sur le côté
2. Désinfection
3. Introduction aiguille et aspiration.
4. Prélèvement dans 3 tubes stériles, identifié l’ordre, dosé STAT.

Question 32

Liquide céphalo-rachidien (LCR) ou cérébrospinal (LCS)
Les 3 tubes stériles sont utilisé à quel fin?

Answer 32

Tube 1: Biochimie/sérologie
Tube 2: Microbiologie
Tube 3: Décompte cellulaire
Store -20°C

Question 33

Collecte salivaire de cortisol: Quoi faire ou ne pas faire avant le prélèvement et combien de temps avant? (5)

Answer 33

24h, exercice intense
12h, alcool
3h, a jeun (bouffe, gomme, tabac, exercice)
1h, brosser les dents
10 min avant se rince la bouche avec de l’eau

Question 34

Collecte salivaire de cortisol: Procédure du prélèvement?

Answer 34

1. Identification du contenant (salivette)
2. Lavage des mains
3. Ouverture de la salivette.
4. Mettre tampon (ou cotton) sous la langue sans toucher avec doigts 2-3 min.
   →Ne pas mâcher le tampon/cotton!
5. Remettre tampon dans contenant initial.
6. Inscrire date et heure du prélèvement.

Question 35

Collecte de sperme: Type de récipient?

Answer 35

Récipient: Polypropylène, usage unique, grande ouverture étanche.
→Certains nettoyants/matériaux du polyprep peuvent être toxique au spermatozoides, attention!

Question 36

Collecte de sperme: Procédure de prélèvement
→Récipient…
→Intervalle…
→Localisation, pourquoi la?
→Temp?

Answer 36

Pré pesé récipient, repesé avec éjaculat, Double identification+date/heure prélèvement
Intervalle entre 2 récoltes de sperme 4-6 sem avec abstinence 2-5 j avant.
En établissement favorisé vs chez soi; favorise délai et temp
37°C, tenir éch sur sa peau pour tenir au chaud au transport

Question 37

Collecte de sperme: Questionnaire préanalytique (6)..

Answer 37

Jours d’abstinence?
Si l’éch recueilli au complet?
Éch transporté conformément? (37C, au contact de la peau)
Heure du prélèvement et d’arrivée d’éch
Interventions médicales/Chx subies/prévues (traitement cancer, vasectomie, vasovasostomie)
Nom conjointe (pour l’éval fertilité, car dossier conservé par médecin peut porter son nom)

Question 38

Collectes de selles: Informer le patient de (5)…

Answer 38

Évaluation spot vs vollecte
Donner documentation procédure collecte 48-72h
Arrêt de Mx?
Produits à éviter?
Diète à suivre?

Question 39

Collectes de selles: Comment faire la collecte→précautions (5)

2C2C4C

Answer 39

Contenant fourni par lab
Contenant à usage unique
Ne pas contaminer inté des contenants (eau de toilette/urine/etc)
Ne pas contaminer exté des contenants
Garder à 4°C (évité bactérie croissance)

Question 40

Quel est la différence entre le plasma et le sérum?

Answer 40

Le sérum possède même composition que plasma, mais il ne contient pas de fibrinogène et autres protéines construisant/causant caillot sanguin (coagulation).

Question 41

Fractionnement du plasma % (3) ?
Hom much more % of plasma compared to serum?

Answer 41

15-20% more yield of plasma is obtained compared to serum

Question 42

Préparation d’un sérum dans un tube avec gel conditions de centri?
Préparation de l’urine pour la microscopie conditions de centri?

Answer 42

1000-1300g, 10min, 10°C, avec frein
400g, 5min, sans frein

Question 43

Effet d’une mauvaise conservation des échantillons
Glucose
pH
pO2
pCO2
lactate

Answer 43

Glucose ↓ car métabolisé par cellules
lactate ↑ car glucose utilisé dans la glycolyse
pO2 ↓ car oxygène consommé par cellules
pCO2 ↑ car cellules en produisent
pH ↓ à cause de ↑ pCO2 et lactate

Question 44

Prétraitement des spécimens (6)
C-SAEPPh

CSAFE!

Answer 44

Centrifugation
Séparation
Aliquote
Extraction
Précipitation
Ajustement de pH

Question 45

Pré-analytique : Après le prélèvement; Entreposage T°?
Court terme
Moyen terme
Long terme

Answer 45

Court terme, RT
Moyen terme, 2-8°C
Long terme, -20°C, -30°C, -80°C

Question 46

Comment le garrot provoque-t-il une interférence?
Donne moi 3-4 examples de changement d’analytes en conséquence d’un garrot rester trop longtemps?

Answer 46

Un temps de garrot prolongé peut entraîner une accumulation de sang au site de ponction veineuse, une condition appelée hémoconcentration. L’hémoconcentration peut entraîner des résultats faussement élevés pour les analytes à base de glucose, de potassium, cholestérol, protéines de coagulation et globules rouges. La quantité de protéines de transport augmente comme l’albumine.

Question 47

Quel interférence peux venir d’un soluté donné au patient au niveau du sang?

Answer 47

Venir interféré avec les analytes que le soluté donne au corps (ex: Glucose ou NaCl). Évidemment prélève pas dans la ligne de soluté ou sur le bras ou est fixer ton soluté.

Question 48

Au niveau du prélèvement sanguin: Qu’est-ce qui peux causer de l’hémolyse?

Answer 48

Trop secouer tube
Aiguille trop petite
Tirer trop fort sur piston seringue
Pousser trop fort sur piston seringue
Garrot trop long (> 1min)
Ratio volume sang/additifs trop bas
Présence d’alcool sur site de ponction
Prélèvement via un cathéter

Question 49

Hémolyse affecte quels analytes et comment?

Answer 49

Surestimation:
K↑
Mg↑
Lactate dehydrogenase (LD)↑
Aspartate aminotranferase (AST)↑
Alanine aminotransferase (ALT)↑
Protéine totale↑
Fer↑
PO4↑
NH4↑

Question 50

Interférences après le prélèvement spécifiques aux tubes (2)? Effect exact pour chacun (2 et 2)?

Answer 50

Récipient incorrect pour l’échantillon :
1. Mauvais tube → Mauvais agent de conservation.
2. Transfert d’un tube à un autre.

Volume insuffisant:
1. Effet de dilution si agent de conservation liquide dans le tube.
2. Volume insuffisant pour analyses.