chap 5 part 2 - transcription (eucaryotes) Flashcards

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1
Q

génome orga multicelR possède (8)

A
  • bcp espace entre gènes + tous gènes sont monocistoniques = 1 promoteur par gène + 1 gène par ARNm
  • exon = expression génique -> prot (structure I) -> folded protein (structure III)
  • ARNm jusque traduction -> tous autre types ARN transcription seulement
  • séQ régulatrices ADN -> promoteurs + placement facteurs transcription généraux et spQ par autres sites -> contrôle transcription du gène
  • expression génique -> réponse au programme du devt + changements internes-externes : “1 tel gène ds une telle cell et à 1 tel moment”
  • plupart séQ régulatrices au début des gènes mais peuvent être aussi présentes + loin
  • tous gènes transcrits mais traduction ceux codant des prot (ARNm)
  • Cf diapo 2
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2
Q

transcription par 3 ARN polymérases (transcriptases) (7)

A
  • ARNpol-I -> ds nucléole, transcription ARNr
  • ARNpol-II -> ds nucléoplasme, transcription ARNm
  • ARNpol-III -> ds nucléoplasme, transcription ARNt
  • ARNpol-I et III -> transcrits très abondants pr besoins de transcription -> besoin régulation ‘fine’ -> besoin tt le temps et en grande QT = tt le temps bcp régulation, prod° constante
  • transcriptase-II -> prod° ~20 000 transcrits ARNm différents/cell / variation abondance relative transcrits de qques copies à >10 000
  • efficacité = cb transcrits par unité de temps
  • pol-II -> reconnaissance milliers promoteurs nécessaires + variation efficacité transcription => force promoteur + facteur transcription
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Q

4 similarités entre transcriptase-II et transcriptase procaryote (9)

A
  • site catalytique
  • mêmes 5 passages
  • forme pince de crabe
  • activité hélicase car même bulle transcription
  • compo de 12 sous unités (protomères) : RPB1-2-3-…12 / RBP1 contient domaine-C-terminal (CTD) = impte
  • CTD = C-terminal-domaine (chaine d’AA) -> phopshorylé aux positions spQ + fait recrutement
  • CTD aussi utilisé chez queues-N des histones
  • Cf diapo 4
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4
Q

CTD (9)

A
  • répétitions en tandem de heptapeptide Tyr-Ser-Pro-Thr-Ser-Pro-Ser
  • 26 copies heptapeptide chez levure VS 52 chez mammifères -> recrutement avec + prot ≠ chez mammifères
  • recrutement facteurs initiation / élongation / terminaison
  • recrutement facteurs de maturation des pré-ARNm (couplage transcription-maturation durant élongation
  • CTD non phosphorylé
  • CTD phosphorylé -> lecture code : 6/7 répétitions phosphorylées = 1er heptapeptide +P sur Ser en position 2 -> Ser2-P // heptapeptides 2 à 6 -> +P sur Ser en position 5 (Ser5-P)
  • logique de quel AA sur quelle répétition sera phosphorylé
  • ++ on avance, + phosphorylation change
  • Cf diapo 5
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5
Q

changements sur le CTD durant transcription : exemple de terminaison chez levure (12)

A
  • Cf diapo 6
  • 26 répétitions deTyr-Ser-Pro-Thr-Ser-Pro-Ser
  • Pcf11 -> maturation ARNm (coupure et polyA)
  • Rtt103 -> terminaison transcription -> détachement transcriptase
  • courbe représente QT prot attachées sur CTD
  • Tyr1P -> bloque arrivée Pcf11 et Rtt103 / retrait progressif des P sur Tyr1
  • Ser2P -> recrutement Pcf11 et Rtt103
  • Thr4P -> recrutement Rtt103
  • pas P au début, retrait P à fin
  • Rtt103 peut se lier sur Ser4P + Thr4P
  • PAS = site poly A (fin gène)
  • après PAS -> plus séQ codantes, transcription dépasse tjs fin gène
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6
Q

+P différents sur CTD nécessaires pour chQ phase transcription (11)

A
  • Cf diapo 7
  • qd courbe monte -> + heptapeptides avec modification spécifiée
  • courbes -> QT phosphorylation
    -Thr4P recrute facteurs terminaison
  • Ser2P recrute enz maturation
  • complexes remodelants + modificateurs des queues-N des histones -> action sur chrtine, modif nocléosome -> changement place ou les enlève
  • nécessité ADN nu au niveau du promoteur
  • queue CTD + phosphorylée pdt élongation
  • 1) ouverture = isomérisation ADN / ADN positionné = complexe fermé VS isomérisation = compexe ouvert
  • 2) recrutement facteurs élongation particuliers nécessaires (CTD doit être phosphorylé correctement) -> aide échappement promoteurs
  • 3) complexe ternaire stable
  • 4) terminaison -> empêche que enz reste sur ADN
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7
Q

promoteurs de transcriptase-II : 4 séQ conservées (9)

A
  • Cf diapo 8
  • TFII = facteur transcription pour ARNpol-II
  • facteurs transcription généraux liant promoteur ~ rôle de σ bactérienne
  • séQ consensus -> BRE, TATA, Inr, DPE
  • BRE = TFIIB recognition element
  • TATA = endroit flexible pour formation complexe de pré-initiation qd présent / permet plier ARN pr installation facteurs généraux dessus
  • Inr = initiator / élément + fréquent -> doit être facile à ouvrir
  • DPE = downstream promoter element -> région transcrite en +, pas forcément séQ codante, peut être ds intron
  • promoteur typiquement constitué de 2-3 de ces 4 éléments -> promoteur basal
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8
Q

facteurs transcriptions généraux (GTF) (6)

A
  • permettent asso transcriptase au promoteur + initiation transcrption (isomérisation + échappement au promoteur)
  • autres facteurs transcription -> facteurs généraux + spQ + GTF
  • plupart GTF = complexes protQ multimériques (pl. sous unités ou protomères) -> TFIIA, TFIIB etc
  • TFIID = le + grand et 1er à agir pr formation complexe initiation -> compo de TBP (TATA binding protein) + 13 TAF (TBP associated factor)
  • TBP -> interaction TBP-TATA la + forte (TBP suffisant pr initier transcription in vitro)
  • TAF -> reconnaissance Inr ou DPE / possibilité régulation asso TBP-TATA en cachant site sur TBP
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9
Q

assemblage complexe initiation. de transcription (8)

A
  • Cf diapo 10
  • 1) asso TBP-TATA -> plateforme nécessaire pr recrutement autres GTF
  • 2-3-4-5) série de recrutement
  • interaction directe pr commencer à plier ds sillon mineur -> pas besoin aller chercher pb + plus facile à plier
  • TBP parcourt ADN -> qd rencontre avc TATA -> pliage région / pas reconnaissance pb
  • TFIIB lie TBP et BRE
  • insertion TFIIB-N ds transcriptase (ds sortie ARN) => complexe fermé
  • TFIIH -> hydrolyse ATP, hélicase, phosphorylation CTD => complexe ouvert / besoin TFIIH pr ouverture bulle transcription
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10
Q

complexe ouvert -> complexe initial -> complexe ternaire (élongation (8)

A
  • Cf diapo 11
  • étape initiation limitante
  • complexe ouvert -> TFIIH (hélicase)
  • entre complexe initial et ternaire -> TFIIH (+P sur CTD de transcriptase)
  • TFIIH -> recrutement facteurs élongation + échappement au promoteur
  • phosphorylation CTD par autres prot pdt élongation
  • élongation -> départ tous GFT sauf TBP car ça va recommencer
  • aussi longtemps que besoin du gène, sillon reste plié tant que TBP est là
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11
Q

complexe médiateur permet accès à ADN ‘nu’ (5)

A
  • pour transcriptase + facteurs transcription (généraux et spQ)
  • complexe médiateur > 20 sous unités
  • complexes remodeleurs de chrtine + modificateurs d’histones
  • asso avec transcriptase + ≠ facteurs de transcription
  • élimination sous unité particulière -> affecte expression d’1 sous (e) de gènes (selon activateur/inhibiteur avec lequel faisait interaction)
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12
Q

déroulement typique euchrtine (6)

A
  • Cf diapo 13
  • modificateurs histones -> faire partie médiateur ou agir en avance pour faire place
  • 1) médiateur -> fait place en bougeant nucléosomes
  • 2) assez place pour transcriptase et GEF
  • 3) blocage par nucléosomes suivants -> rare que ADN proca vide sur longues régions
  • 3 bis) élongation si voie libre = si pas autre nucléosome
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13
Q

pdt étape élongation transcription eucaryote (7)

A
  • phosphorylation CTD -> recrutement facteurs élongation + maturation ARNm
  • ++ P sur AA particuliers pr chQ facteur différent
  • facteurs élongation -> stimulation transcriptase, aide avec correction
  • maturation ARNm : 1) enz addition de coiffe / 2) compos machinerie épissage (coller exon 1 et 2) / 3) facteurs polyadénylation + clivage
  • modif° nucléosomes par FACT (facilitates chromatin transcription) -> enlèvement 1 dimère H2A-H2B du nucléosome devant transcriptase -> espace suffisant pr transcription ADN enroulé par enz
  • dimère gardé par FACT
  • dimère remplacé après passage transcriptase
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14
Q

étape terminaison de transcription eucaryote (7)

A
  • Cf diapo 15
  • synthèse ARN par transcriptase-II jusqu’au dépacement séQ de clivage-polyadénylation (poly-A signal = PAS)
  • 1) attachement complexe du clivage-polyadénylation en avance au CTD-P
  • 2) transfert sur le PAS transcrit (ARN)
  • 3) coupure ARNm + ajout 200 adénines sur bout 3’
  • 4) transcriptase continue transcription même si majT ARN enlevé
  • terminaison de transcription nimporte où sur région de 0,5-2 kb dépassé le PAS -> dégradation rapide 2nd ARN produit
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15
Q

après clivage ARNm : modèle torpedo de terminaison (5)

A
  • Cf diapo 16
  • prot Rtt103 -> liaison CTD et recrutement exonéucléase Rat1
  • liaison Rat1 au bout restant du transcrit tjs attaché à polymérase + dégradation
  • qd Rat1 rattrape transcriptase -> la frappe et transcriptase part
  • prot avec mécanisme similaire -> TRCF (fait avancer transcriptase) + Rho (terminaison transcriptase proca)
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16
Q

résumé étapes-évènements clés initiation (5)

A
  • 1) médiateur déroule promoteur
  • 2) arrivée facteurs transcriptions généraux : arrivée TFIID en 1er -> contient TBP qui plie ADN sur TATA, puis arrivée autres
  • 3) ADN plié -> recrutement transcriptase sur TFIIB -> complexe fermé
  • 4) ouverture ADN = isomérisation avec TFIIH -> complexe ouvert
  • 5) échappement au promoteur avec TFIIH qui ajoute P sur CTD -> recrutement facteurs élongation qui permettent échappement au promoteur
17
Q

résumé étapes-évènements clés élongation (4)

A
  • changement continu de phopshorylation sur CTD
  • recrutement facteurs élongation + maturation
  • besoin FACT pr passage à travers nucléosomes
  • polymérisation ARN jusqu’au signal de clivage PAS et après terminaison
18
Q

résumé étape-évènement clé terminaison

A

modèle torpedo (torpille), exonucléase nécessaire (attachement enz qui mange ARN qui reste)

19
Q

base clonage traditionnel (11)

A
  • construction ARN recombinant + maintien ds cells -> enz restriction -> prod° fragments ADN -> ligase soude fragments ds plasmides (vecteurs = qui peut transmettre qqch) -> insertion dans bact (plasmides ont origine bactérienne)
  • ADN recombinant -> bricolage petite partie ADN, ajout ADN non présent de base
  • maintien dans cells -> cells + ce qu’on rajoute se répliquent
  • enz restrictions -> coupe séQ précise, prod° fragments ADN
  • ligase -> liens phosphodiesters entre brins
  • modif plasmide naturel -> plasmide vecteur
  • ORI forte impte pr vecteurs propagation (amplification)
  • promoteurs impts pr vecteurs expression (prod° prot) car dicte cb prot reçues au final
  • ORI -> réplication
  • marqueur sélection -> marquage colonies qui ont reçues vecteurs
  • site de multiclonage (MCS) -> couper + insertion fragment désiré
20
Q

plasmide naturel (5)

A
  • forme circulaire
  • chez proca (bcp chez bact, peu chez arkea)
  • répliaction indépendante du génome
  • contient PAS plasmides ds milieu optimal
  • plasmides en conditions particulières -> contient gènes bonus et PAS essentiels ds certaines conditions envtales
21
Q

influence nb copies produites du vecteur par cell par ORI (9)

A
  • Cf diapo 20
  • certains vecteurs limités à qques copies -> faible rendement
  • vecteurs -> 500-1000 copies/bact -> haut rendement
  • facteurs impts pr rendement ORI -> facilité ouverture + reconnaissance
  • vecteur de propagation pr amplification ADN -> haut rendement réplication nécessaire
  • vecteur propagation -> alternative PCR
22
Q

vecteurs expression (7)

A
  • Cf diapo 20
  • ont 1 promoteur actif -> rep à régulation génique / promoteur dérivé génome de orga hôte car promoteur doit être adapté à orga
  • impce choix promoteur -> force + régulation + provenance
  • promoteur constitutif -> non régulé
  • mutant de surexpression -> promoteur arrête pas, tjs actif
  • changement promoteur selon orga qui reçoit
  • marqueurs fluorescents / détectables par Ac -> possibilité ajout pour suivre prod° prot
23
Q

description promoteur : prod° insuline humaine dans E.coli (5)

A
  • promoteur doit venir de E.coli
  • promoteur reconnu par σ70
  • promoteur fort -> séQ consensus pour -35 et -10
  • ajout bonus -> élément constitutif + élément A
  • promoteur constitutif -> pas activateur spQ nécessaire
24
Q

site de multiclonage (“polylinker”) (6)

A
  • contient pl. sites restriction -> insertion fragments ADN
  • coupure fragment ADN qu’on veut insérer + vecteur par même enz restriction ou enz différentes -> génération coupures cohésives compatibles
  • insertion pas réussies à 100% -> fermeture pl. vecteurs et fragments sur eux mêmes
  • 1) coupure enzQ sur plasmide
  • 2) 3 possibilités : plasmide non recombiné = se referme sur lui même // coupure enzQ sur ADN -> ADN non recombinant = se referme sur lui même // plasmide + ADN non recombinés => plasmide recombiné
  • 3) transformation
25
Q

introduction de ADN recombinant (8)

A
  • ADN recombinant = plasmide + gène introduit
  • introduction ADN recombinant ds cell hôte par transformation
  • transformation = process de récupération ADN présent dans mx extracelR des orgas
  • certaines bact -> compètence naturelle = compétence génétique
  • plupart bact ont pas compétence génique -> nécessité les rendre compétentes -> choc thermique et électroporation
  • bact rendues compétentes -> incorporation +/- 1 vecteur (taux transformation très bas) -> cells mortes car sortie cytoplasme par trous -> peu survivants et encore - avec chaleur
  • action chaleur pr rendre bact compétentes -> aug° fluidité phospholipides avec chaleur / hot T° mvmt composants de mbrane, destabilisation structure mbrane
  • action choc thermique pr rendre bact compétentes -> choc électrique polarise charges + / ds bact -> alignement charges de chQ coté / mbrane devient instable -> parties trouées -> entrée plasmide
26
Q

marqueurs de sélection : gènes de résistance à 1 antibio (5)

A
  • Cf diapo 23
  • transformation d’1 bact (ajout ADN ext) pas efficace 100%
  • croissance bact sur mx sélectif -> survie bact ayant incorporé vecteur (ont gènes résistance)
  • choix milieu sélectif en fonction du vecteur utilisé
  • croissance bact après transformation : sans antibio -> croissance transformées + NON transformées / avec antibio -> croissance transformées seulement (vecteur peut être sans insert)
27
Q

2 sélections nécessaires pour trouver clones réussis (6)

A
  • 1ère sélection : adaptation milieu sélection au gène présent sur vecteur
  • mort bact sans vecteurs (échec transformation)
  • 2e sélection : site multiclonage à int du gène lacZ (enz) / si insertion -> gènes plus transcrit
  • gène interrompu si insertion réussie / si insertion échouée -> transcription gène se poursuit
  • ajout substrat de enz au milieu (+ x-gal) -> possibilité voir si gène exprimé ou non (x-gal hydrolysé par enz lacZ = couleur bleue)
  • remplacement 2e sélection dans cas vecteurs expression -> Ac ou fluorescence