7. Métodos diagnósticos parasitología Flashcards

1
Q

¿Por qué para los parásitos se necesitan procedimientos de laboratorio para el diagnóstico?

A

Porque los síntomas de una parasitosis pueden confundirse con otras enfermedades.

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2
Q

¿Para qué sirven los métodos directos en parásitos?

A

Para observarlos.

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3
Q

¿Cuáles son los parásitos de mayor prevalencia?

A

Los enteroparásitos.

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4
Q

Métodos habituales de identificación de parásitos.

A

La observación.

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5
Q

¿En qué se basa el diagnóstico de parásitos?

A

En el estudio de la morfología y detección de Ag o genes específicos.

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6
Q

¿Cómo se diagnostica la pediculosis?

A

Con visión directa (macroscópica).

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7
Q

¿Por qué el vinagre sirve contra los piojos?

A

Por su componente activo de diluye la quitina del exoesqueleto del piojo, impidiendo su adherencia a la cabeza.

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8
Q

Ptriasis.

A

Parásito que se aloja en el vello púbico.

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9
Q

Escabiosis.

A

Sarna.

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10
Q

¿Cómo se puede diagnosticar la escabiosis?

A

Al observar lesiones patognomónicas y signos de gratajes.

Se confirma con ácaro test.

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11
Q

¿Qué se observa en el ácaro test?

A

La hembra adulta que crea los túneles, y los huevos.

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12
Q

¿Cuándo se da un tratamiento preventivo de escabiosis?

A

Cuando se tienen antecedentes familiares y lesiones características, independiente de un test negativo.

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13
Q

¿Cómo se aplica el ácaro test?

A

Se raspa la piel para que la capa córnea se desprenda y se pone la muestra en una cinta adhesiva que lleva a un portaobjetos para observarla en microscopio.

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14
Q

¿Para qué se toma la secreción vaginal?

A

Para ver la presencia de Trichonomas vaginalis.

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15
Q

¿Cómo se procesa la muestra de Trichonoma vaginales?

A
  • Se extrae mucosa de la vagina con una espátula que se introduce en un frasco y se lleva al lab.
  • Se centrifuga la muestra para que los trofozoitos decanten.
  • Se observa la trichomona móvil sin tinción.
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16
Q

Trichomona en hombre.

A

Se toma una muestra de la uretra.

Suele ser asintomático.

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17
Q

¿Qué es el coproparasitológico seriado de deposición?

A

Método directo que se basa en la búsqueda de huevos, larvas, quistes y trofozoitos.

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18
Q

Características para tomar la muestra del coproparasotológico seriado.

A
  • Se recolecta la mitad del volumen total del frasco de deposiciones.
  • 3-6 muestras en días no consecutivos.
  • Los análisis varían según el tipo de parásito del que se sospeche.
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19
Q

¿Por qué la muestra del coproparasitológico se toma en días NO consecutivos?

A

Porque las eliminación de huevos por los enteroparásitos no es constante.

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20
Q

Técnicas comunes para el análisis de deposiciones.

A
  • Técnica de Burrows.
  • Método Telemann.
  • Tinción Ziehl Neelsen.
  • Test Graham.
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21
Q

¿Para qué es útil la técnica de Burrows?

A

Para buscar huevos de helmintos y trofozoitos de protozoos.

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22
Q

¿Qué se detecta en la primera centrifugación de la técnica Burrows?

A

La presencia de trofozoitos como la Entamoeba histolytica.

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23
Q

¿Para qué sirve la segunda centrifugación de la técnica Burrows?

A

Para reconocer las fases quísticas del parásito.

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24
Q

Principal utilidad diagnóstica de método Telemann.

A
  • Huevos helmintos.
  • Quistes de protozoos.
  • Larvas.
  • Ooquistes.
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25
Q

¿Qué permite el método Telemann?

A

Evidenciar al microscopio las diferentes formas de los huevos.

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26
Q

¿Cómo se realiza la tinción Ziehl Neelsen?

A
  • Se hace un frotis con una gota de la primera centrifugación de Barrow, o del sedimento de Telemann.
  • Se le aplica colorante que al ser calentado solidifica los ácidos grasos.
  • Protozoos retienen el colorante, lo que los hace resistentes a la decoloración y positivos.
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27
Q

¿Con cuál método se diagnostican los Oxiuros?

A

Test de Graham.

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28
Q

¿Cómo se toma el test de Graham?

A

Se aplica una cinta adhesiva a la superficie perianal para recoger material.

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29
Q

¿Para cuáles parásitos se usan los métodos indirectos?

A

Para aquellos que son difíciles de visualizar a simple vista.

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30
Q

¿Con cuáles métodos se diagnostican con histoparásitos?

A

Métodos indirectos.

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31
Q

¿Cuál es el objetivo de los métodos indirectos?

A

Investigar los cambios de los individuos parasitados.

32
Q

Tipos de estudios de hipersensibilidad.

A
  • Eosinofilia circulante.

- Ac´s circulantes.

33
Q

¿Por qué aumentan los eosinofilos circulantes?

A

Por el contacto íntimo del parásito con los tejidos del hospedador.

34
Q

¿Cuáles parásitos generan una eosinofilia alta?

A
  • Triquinosis y fasciolosis

- Nemátodo Strongyloides.

35
Q

¿Cómo es la eosinofilia que causan los protozoos?

A

Mayoritariamente con poco aumento.

36
Q

¿Cuándo hay mayor estímulo antigénico?

A

Cuando el parásito tiene contacto más íntimo con el hospedador.

37
Q

¿Porqué se encuentra mayor título de Ac´s con parásito tisulares que enteroparásitos?

A

Porque los tisulares tienen un contacto más íntimo con el hospedador.

38
Q

Factores de los que depende el estudio de Ac´s circulantes.

A
  • Calidad del estímulo antigénico.

- Capacidad de RI del hospedador.

39
Q

Reacciones serológicas para la búsqueda de Ac´s.

A
  • Hemaglutinación indirecta (HAI).
  • Ezimoinmunoensayo ligado a enzima (ELISA).
  • Inmunofluorescencia indirecta (IFI).
40
Q

HAI.

A

Unión artificial de Ag´s a la superficie de glóbulos rojos que se hacen reaccionar con el suero del pcte.

41
Q

Resultados de la HAI.

A
  • Presencia de Ac contra el Ag: Aglutinación homogénea de los glóbulos rojos.
  • Ausencia de Ac: Glóbulos rojos precipitan.
42
Q

¿En qué se basa ELISA?

A

Se basa en que los Ac´s o Ag´s son conjugados a una enzima.
La actividad inmunológica y enzimática se mantiene.
La degradación del sustrato por la acción de la enzima depende de la cantidad de Ac o Ag que haya.

43
Q

IFI.

A

Se unen Ac´s a fluorocromo.

Diagnostica Ag´s presentes en frotis.

44
Q

Pruebas de biología molecular.

A
  • Hibridación.
  • PCR.
  • IHQ.
45
Q

Hibridación.

A

Se usan sondas genéticas complementarias al fragmento del parásito que se desea buscar.
Detección mediante rayos x o fluorescencia.

46
Q

Sondas genéticas.

A

Fragmentos marcados de ADN o ARN complementarias al fragmento que se busca.

47
Q

¿Qué detecta la hibridación Southern?

A

Genes específicos de una molécula de ADN.

48
Q

¿Qué detecta la hibridación Northern?

A

Detectar genes específicos de ARN.

49
Q

Hibridación in situ.

A

Detecta los fragmentos de ADN en células y tejidos.

50
Q

PCR.

A

Amplifica in vitro una secuencia de ADN conocida para hacerla detectable.

51
Q

¿Cómo se realiza la IHQ?

A

Se aplica Ac´s específicos marcados sobre el preparado histológico

52
Q

Diagnóstico de Trypanosoma cruzi en embarazadas.

A

Se hace investigación en primer control prenatal.

- Test ELISA para estudiar IgG del parásito.

53
Q

¿Cuándo se le hace el examen de Trypanosoma cruzi a recién nacidos?

A

Cuando su madre tiene la enfermedad de Chagas.

54
Q

¿Qué método se aplica para diagnósticar Trypanosoma cruzi en niños, adolescente y adultos inmunocompetentes?

A

Métodos indirectos.

55
Q

¿Qué métodos de laboratorio se usan para diagnosticar Trypanosoma cruzi?

A

Métodos directos, moleculares e indirectos.

56
Q

¿Qué se busca al microscopio de T. cruzi?

A

Identifica la presencia del tripomastigote al observar sangre o fluido.

57
Q

Gota gruesa.

A

Para detectar T. cruzi en 3-4 gotas de sangre que se desfibrinan y tiñen para ver tripomastigote.

58
Q

Concentración de Micristrout.

A

Examen microscópico de la fracción leucoplaquetaria de la sangre a partir de un capilar cargado con sangre.
- Busca tripomastigotes.

59
Q

Xenogiagnóstico.

A

Se detectan tripomastigotes en el excremento de la vinchuca post succión de sangre del pcte que se cree infectado.

60
Q

¿Para cuáles pacientes el PCR cualitativo es confirmatorio?

A

Para pctes inmunodeprimidos y menores de 9 meses con dos PCR + consecutivos.

61
Q

¿Cuándo el PCR cualitativo es confirmatorio en pctes inmunocompetentes?

A

Cuando da + y se acompaña de Ac´s positivos la T. cruzi.

62
Q

¿Qué hace el PCR cuantitativo?

A

Mide la carga parasitaria circulante.

63
Q

¿Cuándo el útil el PCR cuantitativo?

A

En pctes inmunodeprimidos y donantes de órganos.

64
Q

¿Cómo se realiza ELISA en T. cruzi?

A

La placa está sensibilizada con un Ag de T. cruzi que se va a unir al Ac específico si se encuentra en la muestra.
El Ac unido a la enzima evidencia la reacción positiva.

65
Q

Otros estudios para T. cruzi.

A
  • Cardiológicos(ECG).
  • Gastrointestinales (endoscopia).
  • Radiografías.
66
Q

Algoritmo de método directo.

A
  • Si se comprueba la presencia del parásito, la persona da positiva.
  • SI hay duda, la muestra se envía a ISP.
67
Q

Algoritmo de métodos moleculares.

A
  • Detección de ADN del parásito, se informa sin necesidad de confirmación.
  • <9 meses, necesitan 2 resultados +.
  • > 9 meses, 1 + y confirmación de detección de Ac.
68
Q

Algoritmo métodos indirectos.

A
  • Se hacen varias pruebas, si da positivo en >2 se informa al ISP para confirmación.
  • Si da - en 2 o más muestras, resultado final neg.
69
Q

Métodos de diagnóstico para toxoplasma gondii.

A
  • Pruebas serológicas (IFI).
  • PCR.
  • Estudio de biopsias.
70
Q

Ig´s en toxoplasmosis.

A
  • IgM aparece en las primera 2 semanas de enfermedad aguda, niveles máximos entre 4ta y 8va semana.
  • IgG alcanza valor máximo en 1-2 meses.
71
Q

¿Qué pasa si en la prueba de avidez se detectan entre la 12-16 semana gestacional?

A

Indican que la toxoplasmosis no fue adquirida durante el embarazo.

72
Q

¿Qué se hace si se sospecha toxoplasmosis en una mujer embarazada?

A

Se confirma en un laboratorio especializado en toxoplasmosis.

73
Q

¿Qué sugiere la presencia de IgM en RN?

A

Infección congénita de toxoplasmosis.

74
Q

¿Con qué se tiñen los taquizoitos presentes en la infección aguda de T. gondii?

A

Con tinción Giemsa o Weight.

75
Q

¿Qué se hace si se sospecha de T. gondii en el SNC?

A

Se aplica TC con contraste o RM y punción lumbar.