Tecnicas histopatologicas avanzadas Flashcards

1
Q

estudio histológico transoperatorio o biopsia por congelación

A

se realiza en contexto de una intervención quirúrgica o perioperatoria, es decir, mientras el cirujano tiene al paciente en sala, se realiza una toma del tejido (muestra) que se envía rápidamente sin colocar formalina ni ningún fijador al área de patología.

La única indicación es para que el cirujano tratante pueda elegir tanto que sea benigno o maligno, y dependiendo del informe del patólogo así va a ser el manejo de la operación en la sala.

La mayoría de casos el cirujano hace que el patólogo establezca si la lesión es benigna o maligna.

El diagnóstico se da en un intervalo de 20 a 15 minutos

En términos generales, el diagnóstico de malignidad no presenta mayores problemas para un patólogo con experiencia en la evaluación de láminas bajo microscopios.

Sin embargo, en un bajo porcentaje de casos, la decisión debe postergarse a estudio en bloque de parafina ya que allí se tendrá una muestra con mayor fijación donde se podrá observar mayores detalles histológicos que solo observarlo en el microscopio.

También se posterga el diagnóstico cuando las muestras son demasiado grandes y se necesita dar un muestreo exhaustivo en el tejido.
También se envía el diagnóstico en parafina cuando no se pueden concluir todos los hallazgos histopatológicos que son necesarios para dar un diagnóstico determinado.

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2
Q

Otros objetivos de la biopsia por congelación son:

A

● Determinar la presencia de lesión en los bordes de resección
quirúrgica. Es decir, cuando el cirujano extirpa una porción de piel que tiene una lesión central elevada. El cirujano necesita saber los bordes de resección, si están infiltrados por la neoplasia que están estudiando. Por la tanto, el cirujano hace la marcación con hilos de sutura quirúrgica para guiar al patólogo donde están las bordes y así observarlos en el microscopio para determinar si están tomados por la lesión o si son negativos a malignidad.

● Determinar la presencia de cáncer en una estructura que apoya el estadiaje. Determinar si hay ganglios linfáticos tomados por un cáncer de mama, cáncer de estómago, que estén infiltrados por la neoplasia
o si hay otras metástasis en órganos adyacentes.

● Como parte de la técnica para inmunofluorescencia o histoquímica
enzimática. El tejido se tiene que recibir en fresco sin ningún tipo de fijador.

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3
Q

INDICACIONES DE LA BIOPSIA POR CONGELACIÓN.

A

● Define límites, delimita la presencia de neoplasia, definir malignidad o benignidad.
● No se usa para diagnóstico definitivo.
● Usos para técnica de inmunofluorescencia (biopsias rabeles) o
histoquímica enzimática (biopsias de músculo estriado y tejido
nervioso)
● No se debe enviar para satisfacer una curiosidad, jugar a engañar al
patólogo o por impericia. Debe haber indicaciones claras y ser necesaria para la evaluación y tratamiento.

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4
Q

Tipo de equipo utilizado en la biopsia por congelacion

A

El equipo utilizado es llamado criostato (criotomo) donde se congelan muestras de tejido de tamaño pequeño mediante el uso de carbono, sodio a una temperatura de -50oC. Esta congelación va a endurecer el tejido y va a permitir el corte por el microtomo.

El micrótomo de rotación va a estar dentro de la cámara de frío y va a permitir realizar cortes finos al material congelado. Después de los cortes, se monta en el portaobjetos de vidrio y se pasa a las técnicas de coloración, que sirven para resaltar en diferentes colores los núcleos celulares y el resto del tejido.

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5
Q

Las tinciones que frecuentemente se ocupan con esta biopsia son:

A

las tinciones de hematoxilina eosina, azul de metileno y la tinción de ácido peryódico de Schiff.

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6
Q

El reporte de una biopsia por congelación debe incluir:

A

● El reporte macroscópico (donde se describe el tipo de muestra que se envía de la sala de operaciones, el tamaño, el color, consistencia, peso)
● El reporte microscópico, al ser un diagnóstico muy rápido, se va a omitir.
● Diagnóstico anatomopatológico es el que le interesa al cirujano porque se da el reporte definitivo de benignidad o malignidad para que el médico decida si debe hacer más cortes o avanzar a una cirugía más amplia para ver el estadiaje de la neoplasia,o si puede dar por finalizada la operación.
● Si el diagnóstico es más complicado, se difiere el diagnóstico a parafina.
● No dar un diagnóstico pero afirmar o negar malignidad.

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7
Q

CITOLOGÍA

A

Es la ciencia derivada de la biología que se dedica al estudio de la célula.

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8
Q

Objetivos de la citología:

A

● Diagnóstico precoz del cáncer ginecológico (screening o tamizaje).
● Diagnóstico de benignos o malignos, acompañado de la biopsia.
● Recuentos celulares y esterilidad (en hombres a través de recuento de
espermatozoides).

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9
Q

Citología exfoliativa:

A

● Ginecológica: cérvico-vaginal y endometrial.
● Boca y tracto digestivo.
● Tracto respiratorio: por muestras de esputo y cepillados o aspirados
bronquiales.
● Líquidos: orina, derrames (ascítico, pleural, pericárdico, articular),
líquido cefalorraquídeo, ampollas cutáneas, etc.
● Semen (estudios de esterilidad) recuento de espermatozoides
● Test de Tzanck: consiste en la toma de una muestra del contenido
líquido de las vesículas herpéticas o del frotis de la base de las lesiones úlcero-costrosas. Esta muestra se fija en un portaobjetos y se tiñe con tinción de Giemsa o azul de toluidina, con el fin de observar el efecto citopático que ejerce el virus. A pesar de ser una técnica clásica, sigue teniendo una gran utilidad clínica, y representa un método sencillo y económico de confirmar de forma rápida el origen herpético de una lesión cutánea, sobre todo en ámbitos médicos en los que no se disponga de técnicas como PCR en tiempo real para el diagnóstico de las infecciones herpéticas.

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10
Q

Citología por punción-aspiración con aguja fina (PAAF),

A

En aquellas lesiones cutáneas y de los tejidos blandos superficiales, como de los órganos profundos en los cuales no se tiene fácil acceso. Se utiliza una aguja para tomar el aspirado de la glándula tiroides, aspirado de glándulas mamarias, lesiones retroperitoneales para poder evaluar un frotis y ver hallazgos que pueden servir.

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11
Q

La citología también se puede utilizar en otras técnicas como:

A

● Macroscópicas (Macropatología).
● Microscópicas, con el microscopio óptico (Citopatología).
● Generales o convencionales.
● Técnicas Citoquímicas
● Inmunocitoquímicas.
● Morfométricas (Morfometría Estática).
● Ultramicroscópicas, con el Microscopio Electrónico.
● Moleculares (Patología Molecular).
● Otras: Citometría de Flujo, etc.

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12
Q

Tiempo de respuesta de citologias

A

cuando son citologías urgentes de recuentos celulares o diagnósticos se realizan en 60 minutos.
Pero normalmente en las citologías los reportes se entregan en un lapso de 24 a 48 horas.

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13
Q

Indicaciones de la citologia

A

● Lesiones superficiales de fácil abordaje como las citologías cérvico vaginales en las cuales se realiza el tamizaje de pacientes para determinar poblaciones en riesgo con probabilidad de tener cáncer de cuello uterino, ya que es una enfermedad prevenible. Posteriormente se mandan a los pacientes que muestran lesiones de alto o bajo grado de cuello uterino a que se hagan una biopsia.
● En el estudio de patología mamaria, patología tiroidea y patología ginecológica (citología cervico-vaginal), ganglio linfático.
● Estudio de lesiones virales con formación de vesículas (virus herpes)
● Lesiones de la lengua y cavidad oral
● Índice de maduración vaginal

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14
Q

Ventajas de la citologia

A

● La respuesta es rápida.
● Facilita la terapéutica cuando se diagnostican microorganismos.
● Fácil abordaje.
● Se pueden estudiar poblaciones fácilmente, para luego hacer estudios
más de cerca a los pacientes positivos.

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15
Q

Limitantes de la técnica de la citologia

A

● No es diagnóstica, es un tamizaje.
● La negatividad no excluye la malignidad.
● La positividad acelera más la necesidad de hacer biopsia para
confirmar los hallazgos citológicos observados.

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16
Q

TIPOS DE MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA

A
  • Microscopía electrónica de transmisión
  • microscopios electrónicos de barrido
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17
Q

Microscopía electrónica de transmisión

A

utiliza la interacción de un haz de electrones en vez de un haz de luz para producir una imagen.

Los pasos a la preparación de este tipo de muestra es similar a la utilizada en la microscopía óptica, solo difieren en que utilizan diferentes fijadores (glutaraldehido y tetróxido
de osmio).

Los medios de inclusión que se pondrán esas muestras son resinas plásticas y epoxi. Los colorantes que se utilizan son metales pesados.

La más utilizada en el diagnóstico histopatológico.
En esta técnica la preparación teñida es traspasada por un haz de electrones, lo cual proporciona la imagen ultrafina sobre una pantalla ad hoc.

El microscopio electrónico de transmisión es capaz de generar un haz de electrones a alta tensión (80kV) y concentrarlo sobre la preparación mediante un complejo sistema de campos electromagnéticos equivalentes a las “lentes” del microscopio de luz.

La mayor utilidad de la microscopía electrónica de transmisión es en la Oncología en el diagnóstico de cáncer.

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18
Q

microscopios electrónicos de barrido

A

utilizan electrones que son forzados a salir de la superficie de la muestra y se recogen mediante y se procesan para formar una imagen de esta superficie.

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19
Q

Áreas de diagnóstico en patología de microscopia electronica

A

● En la patología renal en combinación con microscopía de luz e inmunofluorescencia.
● Ultraestructura de los tumores de histogénesis incierta.
● Estudio subcelular de los macrófagos en las enfermedades de almacenamiento.
● Para fines de investigación.
● En la patología tumoral o neoplasia para determinar la histogénesis de tumores malignos y benignos.
● Se utiliza para proporcionar información crucial de tumores de células granulares, los sonomas, histiocitosis de células de langerhans, tumores de células fusiformes o sarcomatoides, carcinomas, mesoteliomas, carcinomas de células pequeñas de diversos sitios, histogénesis conocida e incierta.

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20
Q

PRIMER MICROSCOPIO ELECTRÓNICO SE ATRIBUYE A

A

ERNST RUSKA (ALEMAN) Y SUS COLABORADORES EL CUAL FUE CONSTRUIDO ENTRE 1931 Y 1934

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21
Q

MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA [ME]

A

Esta técnica juega un papel muy importante en el estudio de las enfermedades del riñón, en particular en glomerulopatías primarias y secundarias. Junto con la inmunofluorescencia directa representan el estudio básico para llegar a un diagnóstico preciso en cada caso.

Otras aplicaciones son la identificación de partículas virales intranucleares y citoplasmáticas.

También en enfermedades metabólicas para estudiar el tipo de inclusiones o cuerpos de inclusión en las células afectadas (cómo en enfermedad de Niemann-Pick, Tay-Sachs, amiloide, etcétera).

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22
Q

Aspectos técnicos básicos de la microscopía electrónica

A

Hay una técnica que requiere instrumentos de alta complejidad y personal especializado.
Se utiliza la microscopía electrónica de transmisión o convencional y la microscopía electrónica de barrido.
Las muestras deben fijarse al tejido y llevan como método de tinción metales pesados.

  • Fijacion
  • Inclusion
  • Seleccion semifinas
  • Cortes ultrafinos
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23
Q

Fijacion en ME

A

Piezas delgadas de tejido de no más de 1 mm de espesor deben fijarse en glutaraldehído tamponado al 2-4% o en mezcla de formalina y glutaraldehido.
Posteriormente debe de fijarse en solución tamponada de tetróxido de osmio para aumentar el contraste.

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24
Q

Inclusion en ME

A

Con resina en una rejilla.

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25
Q

Selección semifinas en ME

A

Se realizan secciones o cortes semifinas de espesor de 1 micra y se tiñen con azul de metileno o azul de toluidina.

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26
Q

Cortes ultrafinos en ME

A

Se realizan cortes para ver el examen ultraestructural, los cortes ultrafinos se cortan con un bisturí de diamante lara ser más preciso en los cortes. Con el fin de aumentar la densidad de los electrones, las secciones delgadas se pueden teñir haciendo inmersión de la rejilla en una solución de citrato de plomo y urinyl acetato.

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27
Q

Las limitaciones de la microscopía electrónica:

A

● Dificultades en el muestreo, y que sólo una pequeña proporción de la
neoplasia o del tejido a procesar, puede ser estudiado.
● La escasez de características ultraestructurales verdaderamente específicas, ya que el número de orgánulos u otras estructuras que son
exclusivos de un tipo de célula o tejido es muy pequeña.
● Posible interpretación errónea de elementos no neoplásicos como pertenecientes al tumor. Ciertamente, esta posibilidad existe con cualquier técnica, pero es particularmente notable con microscopía electrónica debido a las dificultades en la evaluación de las
relaciones espaciales en una pequeña muestra de tejido.

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28
Q

usos de ME

A

Esta generalmente se ocupa en las nefropatías por IgA donde se van a ver áreas del mesangio donde se pueden observar los depósitos que se ven en el mesangio.

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29
Q

Microscopia virtual

A

Otro avance que se está haciendo actualmente es la microscopía virtual. En la cual se dan escaneados de los preparados histológicos los cuales utilizan un escáner de muestra
automatizados de alta resolución podrá crear archivos virtuales que serán evaluados por la red de computadoras para su visualización remota.

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30
Q

ESTUDIO DE CITOGENETICA

A

es un estudio de los cromosomas. Por medio de este se puede diagnosticar enfermedades en los cromosomas. En genética los 5 síndromes más importantes de trastornos cromosómicos son: síndrome de Down, trisomía 21, trisomía 18, trisomía de los cromosomas sexuales como síndrome de Klinefelter y síndrome de Turner.

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31
Q

¿Qué es el cariotipo?

A

El cariotipo es el conjunto de cromosomas de una célula.
Si cuando una célula está en metafase se realiza una preparación y se fotografían sus cromosomas y se ordenan, siguiendo determinados criterios, obtendremos el ideograma de un cariotipo.
Al observar el ideograma de un cariotipo podemos ver que los cromosomas están por pares de homólogos. Esto es, tenemos dos juegos de cromosomas (2n cromosomas). Un juego aportado por nuestra madre en el óvulo y el otro por nuestro padre en el espermatozoide.
Los cariotipos son muy útiles pues permiten detectar las mutaciones cromosómicas. Estas mutaciones pueden ser la causa de graves alteraciones o predisposiciones de cáncer.

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32
Q

¿Cómo hacer una preparación para observar el cariotipo?

A

● Se toma sangre periférica y se separan los glóbulos blancos.
● Se incuban en presencia de productos que inducen a la mitosis como
la fitohemaglutinina.
● Se detiene la mitosis en la metafase (utilizando colchicina, que
interfiere con los microtúbulos del huso).
● Se rompen las células por choque osmótico introduciéndolas en un medio hipotónico.
● Se deposita una gota de la preparación entre porta y cubre (sobre el cual se hace presión).
● Se fijan, colorean y fotografían los núcleos estallados.
● La foto se amplifica y los cromosomas se recortan y se ordenan para poder ver las bandas cromosómicas.

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33
Q

Bandas cromosómicas

A

El tratamiento de los cromosomas con determinadas sustancias revela la presencia en estos de bandas, en ciertos lugares fijos para cada cromosoma, que sirven para reconocerlos e individualizarlos.
De esta manera es más fácil ordenarlos y hacer un ideograma

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34
Q

INMUNOHISTOQUÍMICA

A

Es una técnica que se utiliza para detectar y diagnosticar metástasis tumorales, diferenciar los subtipos o diferentes estirpes tumorales y sus etapas de diferenciación, también sirve para el diagnóstico de enfermedades infecciosas, para identificar microorganismos en la
sangre y en los líquidos de los tejidos. En estudios clínicos también se ha utilizado anticuerpos monoclonales conjugados con inmunotoxinas, fármacos de quimioterapia o radioisótopos para administrar agentes terapéuticos a las células tumorales específicas en el cuerpo, como medicina de precisión.

a inmunohistoquímica (IHQ), inmunocitoquímica, cuando se realiza en un estudio frotis o en un extendido citológico, es un método para localizar antígenos específicos en tejidos o células basados en el reconocimiento antígeno-anticuerpo.
Esto corresponde a un grupo de técnicas de inmunotinción que permiten demostrar una variedad de antígenos presentes en las células o tejidos utilizando los anticuerpos marcados.

Esta técnica se basa en la capacidad de los anticuerpos de unirse específicamente a los correspondientes antígenos, y esta reacción solamente será visible si el anticuerpo está marcado con una sustancia que va a absorber o emitir luz y produce una coloración que se observará bajo el microscopio óptico.

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35
Q

Anticuerpo

A

es una molécula que tiene la propiedad de combinarse específicamente con una segunda molécula, denominada antígeno.

es una proteína de suero o inmunoglobulina que se forma en respuesta a la invasión de una sustancia ajena al cuerpo y al unirse a esta le confiere protección al organismo, ya sea una proteína extraña o un antígeno que esté dentro de nuestro cuerpo.

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36
Q

Antigeno

A

es cualquier sustancia que es capaz de inducir la formación de anticuerpos cuando se introduce en un organismo, relacionado específicamente con los anticuerpos que son formados.

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37
Q

Anticuerpo

A

es una molécula que tiene la propiedad de combinarse específicamente con una segunda molécula, denominada antígeno.

es una proteína de suero o inmunoglobulina que se forma en respuesta a la invasión de una sustancia ajena al cuerpo y al unirse a esta le confiere protección al organismo, ya sea una proteína extraña o un antígeno que esté dentro de nuestro cuerpo

38
Q

Partes de un anticuerpo

A

Los anticuerpos consisten en dos unidades básicas. Está constituido por:
● Cadenas pesadas, que pueden ser gamma, alfa, mu, delta o épsilon.
● Cadenas ligeras, que pueden ser
kappa o lambda.
Se tiene la fracción constante y la fracción variable.

39
Q

Tipos de anticuerpos usados:

A

Hay dos tipos de anticuerpos usados en la técnica de inmunohistoquímica:
● anticuerpos policlonales: son producidos por animales inmunizados.
● anticuerpos monoclonales: son producidos por líneas celulares, los
cuales van a producir un único antígeno de una proteína.

40
Q

Quieneas idearon una técnica para obtener anticuerpos monoclonales fusionaron las células de un mieloma murino y los linfocitos del bazo de un ratón inmunizado con hematíes de carnero, cultivo resultante formaron hibridomas capaces de producir inmunoglobulinas que reconocen a los antígenos empleados en la inmunización.

A

KOHLER Y MILLSTEIN (1975) `

41
Q

TIPOS DE ANTICUERPOS SEGUN KOHLER Y MILLSTEIN (1975)

A

● POLICLONALES: mezcla anticuerpos contra diferentes antígenos de una misma proteína.
● MONOCLONALES: cuando mezcla anticuerpos contra un único antígeno de una proteína

42
Q

Ventajas de la monoclonalidad

A
  • Los anticuerpos obtenidos son homogéneos
  • No se requiere de antígenos purificados para las inmunizaciones, a pesar de ello se obtienen antígenos de gran pureza.
  • Los cultivos permanentes pueden proporcionar el anticuerpo de manera ilimitada
43
Q

Técnicas de histoquímica

A

El principio está basado en la presencia de sustancias antigénicas que se albergan tanto en la membrana citoplasmática, el citoplasma, como en el núcleo celular. Dependiendo de esto nos dará una tinción específica en el tejido evaluado al momento de que se esté observando la lámina bajo un microscopio óptico.

44
Q

Básicamente es una reacción de tipo AG-AC, en donde conocemos nosotros el AC que vamos a utilizar y queremos detectar el AG con una molécula marcadora que puede ser:

A

● Fluorocromo, en la inmunofluorescencia.
● Enzima, en la inmunohistoquímica por la inmunoperoxidasa.
● Metales pesados.
● Isótopo radiactivo, lo cual le da el color característico al tejido evaluado.

45
Q

Aplicaciones de la inmunohistoquímica:

A

● Clasificación de neoplasias: linfoides/ hematológicas. Para determinar la estirpe de la neoplasia cuando no se logra reconocer simplemente,morfológicamente o por histología al evaluar una lámina teñida con hematoxilina-eosina bajo un microscopio, también para determinar si la neoplasia es un carcinoma, una neoplasia hematolinfoide, una neoplasia mesenquimal, o si es de una estirpe nerviosa.
● Identificación de neoplasias de origen primario desconocido. No se conoce el origen del cual nació o creció el tumor. Si se está evaluando un tejido metastásico y se quiere determinar el sitio primario o sitio de origen de la neoplasia, se mandan antígenos o anticuerpos específicos que nos darán una tinción en el tejido evaluado específico, y nos va a orientar que la neoplasia deriva de un órgano específico.
● Identificación de sobre-expresión de proteínas asociadas a translocaciones.
● Identificación de blancos terapéuticos. En esta era se utilizan muchos anticuerpos que están dirigidos para la inestabilidad microsatelital, la cual le sugerirá al oncólogo el tratamiento o un fármaco específico para este tipo de anticuerpo que se vio demostrado en las coloraciones de la histoquímica.
● Infecciones. Se demuestra la presencia de agentes infecciosos.
● Caracterización de sustancias extracelulares, como la presencia de amiloides que pueden ser demostrados por técnicas de
inmunohistoquímica.

46
Q

Tipos de proteínas que se pueden detectar:

A

● Proteínas estructurales:
○ Citoesqueleto: citoqueratinas (CK), proteína ácida fibrilar glial
(GFAP)
○ Uniones intercelulares (E-cadherina, B-catenina)
● Proteínas asociadas a vesículas secretoras:
○ Anticuerpo cromogranina A, sinaptofisina, CD68.
● Receptores:
○ HER2, factor de crecimiento epidérmico tipo 1(EGFR1), receptor
de estrógeno (RE), receptor de progesterona(RP)
● Factores de transcripción/ ciclo celular:
○ P53, Ki67, factor de transcripción tiroideo (TTF1), PAX5,
miogenina.

Dependiendo de la marcación que presente el anticuerpo, este se verá en el tejido preparado bajo el microscopio óptico.

47
Q

Marcación nuclear

A

En el anticuerpo CDX2 se ve que están pintados de un marrón oscuro los núcleos. En el PAX-5 se mira la presencia de la tinción y el Ki-67 es un índice de proliferación donde vamos a ver la marcación nuclear de ese tipo de anticuerpo en la técnica de inmunohistoquímica.

48
Q

Marcación de membrana

A

La E-cadherina pintará solamente el borde de la membrana con la tinción de cromógeno desde color marrón oscuro. CD30 se puede presentar en las membranas y en el aparato de Golgi cuando se está evaluando las células de Reed-Sternberg (es un linfoma de Hodgkin).

49
Q

Marcación citoplasmática

A

Se miran marcaciones de mitocondrias con cromógeno, que es depositado en las reacciones de Ag-Ac. El CD68 tiene su marcación citoplasmática generalmente en histiocitos. El citoplasma y el núcleo como la proteína S-100 se van a depositar o servir para hacer diferenciación de estirpe nerviosa.

50
Q

INMUNOFLUORESCENCIA

A

se emplea para localizar moléculas de antígeno en las células por el examen microscópico.
Esto se hace mediante el uso de anticuerpos específicos contra la molécula antigénica, formando así un complejo antígeno-anticuerpo en el sitio antigénico específico que se hace visible mediante el empleo de un fluorocromo (generalmente la fluoresceína) que tiene la propiedad de absorber la radiación en la forma de luz ultravioleta de manera que sea visible dentro del espectro de la luz en el examen microscópico y se observará del color verde característico.

51
Q

colorante más utilizado que absorberá la luz ultravioleta y dará el color verde característico de la inmunofluorescencia.

A

fluoresceina

52
Q

Componentes esenciales de la inmunofluorescencia:

A
  1. Microscopio de fluorescencia
  2. Fuente de luz
  3. Filtros
  4. Condensador
53
Q
  1. Microscopio de fluorescencia
A

Se basa en el principio de que la radiación de excitación de la luz ultravioleta de longitud de onda más corta (360 m) o la de la luz azul (Longitud de onda 400 m) provoca la fluorescencia de ciertas sustancias y posteriormente re-emite luz de una longitud de onda más larga.

● Fluorescencia primaria: sustancias fluorescentes de forma natural, también llamado autofluorescencia. Siempre se requerirá de la luz ultravioleta para visualizar el color verde característico. Ejemplo: vitamina A, porfirina, clorofila.

● Fluorescencia secundaria: se utiliza el fluorocromo, que es una molécula capaz de absorber fotones y de emitir fotones de menor energía o de mayor longitud de onda, las cuales se van a ver con la luz ultravioleta de color verde. Es la producción de fluorescencia tras la adición de colorantes o productos químicos
denominados fluorocromos.

54
Q

Fuente de luz

A

Lámparas de vapor de mercurio y gas xenón

55
Q

Filtros

A

Los utilizados son el filtro de absorción de calor, filtro de stop de luz roja, filtro excitador. La luz excitadora es removida por otro filtro llamado filtro de barrera, el cual se encuentra entre el objetivo y el observador.

56
Q

Condensador

A

Se utiliza un condensador de campo oscuro de manera que la luz no cae directamente en el objeto y en cambio da fondo oscuro que hace contraste con la fluorescencia, lo que dará el color característico verde.

57
Q

luorocromo que son frecuentemente utilizados en inmunofluoresencia

A

fluoresceína, rodamina, rojo Texas.

58
Q

Técnicas de fluorescencia

A

Metodo directo e indirecto

59
Q

Método directo:

A

Introducido por primera vez por Coons (1941). El tejido produce directamente una reacción Ag-Ac, generalmente usando inmunofluorescencia. Se utiliza un anticuerpo específico frente al antígeno, siempre conjugado con un fluorocromo, y esto nos dará la
reacción en el tejido.

60
Q

Método indirecto:

A

Se aplica para detectar autoanticuerpos en el suero
del paciente. Estos anticuerpos primarios específicos no marcados frente al antígeno humano cuando incitan la reacción, se añade después un segundo anticuerpo marcado con el correspondiente fluorocromo que reacciona de forma específica con el anticuerpo primario. Esta técnica es más sensible y permite utilizar un único anticuerpo secundario conjugado con fluorocromo frente a muchos antisueros primarios.

61
Q

Aplicaciones de la inmunofluorescencia

A

● Detección de autoanticuerpos en el suero, como en enfermedades como lupus eritematoso sistémico.
● En enfermedades renales para la detección de depósitos de inmunoglobulinas, complemento y fibrina, como en las glomerulopatías.
● En enfermedades de la piel para detectar depósitos de inmunoglobulina.
● Para el diagnóstico específico de los trastornos infecciosos, por ejemplo, el virus de la hepatitis.
detección de agentes infecciosos, como las hifas de la ● Cándida albicans, el virus de la gripe H1N1, tripanosomas y Mycoplasma pneumoniae.
● biopsias de piel, para ver depósitos de IgG
intercelular en el pénfigo vulgar, o
también pueden observarse otros
depósitos en las uniones en
dermoepidérmicas o en la dermis
superior, y así poder ver diferentes
enfermedades de la piel, haciendo la
correlación de la sustancia evaluada con un microscopio de fluorescencia.

62
Q

si se evalúa la IgG y el complemento 3 (C3), y el depósito está localizado en la epidermis intercelular, el clínico concluirá que está frente a un

A

pénfigo.`

63
Q

cuando la sustancia que se está evaluando presenta IgG, C3, IgM, IgA; y presenta un depósito de tipo granular y está depositado en la zona de la membrana basal se puede concluir que se trata de

A

LES

64
Q

TÉCNICAS MOLECULARES

A

TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN
HIBRIDACIÓN IN SITU CON FLUORESCENCIA
REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR)

65
Q

TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN

A

Es un método de biolocalización de ARN mensajero o ADN mediante la hibridación de las secuencias de interés con una sonda de nucleótidos acompañados de una secuencia complementaria.
El término hibridación describe la capacidad de las moléculas monocatenarias de ARN o ADN para interactuar o hibridar con secuencias complementarias.

66
Q

TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN APLICACIONES

A

● En neoplasias: hematológicas y no hematológicas.
● En enfermedades agentes estudios e identificación de nuevos agentes infecciosos.
● En enfermedades genéticas heredadas: Prueba de portador, diagnóstico prenatal y diagnóstico directo de la enfermedad genética.
● Determinación de identidad: trasplante de tejidos, patología forense y test de parentesco.

67
Q

HIBRIDACIÓN IN SITU CON FLUORESCENCIA

A

Siempre utilizando un cromógeno como el fluorocromo, esto permite la detección y localización de secuencias de ácidos nucleicos en estructuras biológicas morfológicamente conservadas.
En 1969, en la universidad de Yale desarrollaron un protocolo el cual llamaron hibridación in situ, y este se utilizó para la localización del ADN satélite.
El término in situ hacer referencia al lugar o en el lugar, y se refiere al hecho de que el ADN del cromosoma se mantiene en el sitio mientras se permite que reaccione con una preparación particular de ADN marcado llamado sonda de ADN que se marcó de forma reactiva y se identificó por medio de una autorradiografía.

68
Q

HIBRIDACIÓN IN SITU CON FLUORESCENCIA APLICACIONES

A

● Infecciones virales: herpes simple (HPV), Epstein Bar (EPB), virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), citomegalovirus (CMV).
● En tumores humanos (detección de la expresión de genes y oncogenes).
● Desórdenes cromosómicos.

69
Q

REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR)

A

La PCR constituye un sencillo método para la clonación in vitro de cualquier segmento de ADN, sin
necesidad de recurrir metodología convencional.

70
Q

La PCR se utiliza para:

A

● Amplificación de DNA para clonación o análisis
○ Investigaciones criminales
○ Investigación fósil
○ Secuenciación de ADN
● Pruebas para la presencia de secuencias de DNA específicas.
● Comparación de moléculas
○ Trastornos hereditarios.
○ Enfermedades genéticas adquiridas.
○ Medicina forense y legal.
○ Detección de patógenos infecciosos.
○ Enfermedades monogénicas.

71
Q

CITOMETRÍA DE FLUJO

A

Se utiliza en células aisladas para cuantificar el ADN nuclear. Esta técnica utiliza instrumentos capaces de rastrear células individuales que fluyen ante un detector en un medio líquido. Esta técnica permitirá un análisis cuantitativo rápido de una célula individual sobre la base de una medición de la luz fluorescente que está emitirá.

La técnica de citometría de flujo consiste en la medición de diversos parámetros, mientras que una suspensión de células fluye a través de un haz de luz detectores estacionarios últimos.

El instrumento se enfoca hidrodinámicamente a una suspensión de células en una cámara de muestra y pasa a las células individuales a través de una fuente de luz, generalmente un láser.

La luz dispersada en varios ángulos por las células es registrada por los detectores y se convierte en señales electrónicas, que luego son digitalizadas, almacenadas y analizadas por el ordenador para producir un histograma . Esta técnica permite el análisis de 5000-10000 células por segundo.

La citometría de flujo puede ser utilizada para analizar la ploidía del ADN.

72
Q

En función de su contenido de ADN, los tumores se dividen en

A

diploides y aneuploides.

73
Q

es la relación del contenido de ADN del pico aneuploide para el contenido de ADN del pico diploide.

A

índice de ADN (DI)

74
Q

son un subconjunto de tumores aneuploides en los que el DI es 1.9-2.1.

A

Tumores tetraploides

75
Q

es el porcentaje de células por encima del límite superior de la población diploide y constituye una medida de la fase S o fracción de proliferación de una población de células.

A

La fracción hiperdiploide

76
Q

La principal limitación de la citometría de flujo

A

es que las células necesitan estar en una única suspensión de células con el fin de ser analizado.
Este requisito se consigue fácilmente cuando la célula está en suspensión en sangre y otros fluidos. De hecho, el análisis de citometría de flujo de las leucemias y linfomas se ha convertido en rutina.

77
Q

CITOMETRIA DE FLUJO EN DIAGNOSTICO

A

Para ser justos, es preciso señalar que el papel de la citometría de flujo en el diagnóstico inicial de los tumores es bastante limitado.

Su función principal parece ser como un indicador pronóstico, ya que la vasta literatura sobre el tema indica.

La categoría de tumores que han sido evaluados con mayor intensidad son el carcinoma de mama en las técnicas de citometría de flujo, el linfoma no Hodgkin, los carcinomas de vejiga, carcinoma de próstata, neoplasias endocrinas, sarcomas de tejidos blandos, y presuntos embarazos molares.

78
Q

FINALIDADES DE LAS AUTOPSIAS

A

● Determina o corrobora la naturaleza de la enfermedad, así como su extensión.
● Investiga la causa principal o básica de muerte y aquellos procesos contribuyentes.
● Estudia los procesos secundarios o asociados y los accesorios.
● Correlaciona signos y síntomas clínicos de la enfermedad con los hallazgos morfológicos terminales.
● Comprueba los resultados de la terapéutica médica o quirúrgica.
● Investiga, en su caso, aquellas enfermedades contagiosas, hereditarias o transmisibles.

79
Q

Indicaciones de la autopsia clínica:

A

● Muertes en las que la autopsia pueda ayudar a explicar las complicaciones médicas existentes.
● Todas las muertes en las que la causa de muerte o el diagnóstico principal (padecimiento fundamental) no sea conocido con razonable seguridad.
● Casos en los que la autopsia pueda aportar a la familia o al público en general datos importantes.
● Muertes no esperadas o inexplicables tras procedimientos diagnósticos o terapéuticos, médicos o quirúrgicos.
● Muertes de pacientes que han participado en protocolos hospitalarios
● Muertes aparentemente naturales no esperadas o inexplicables, no
sujetas a la jurisdicción forense.
● Muertes por infecciones de alto riesgo y enfermedades contagiosas.
● Todas las muertes obstétricas.
● Todas las muertes perinatales y pediátricas.
● Muertes por enfermedad ambiental u ocupacional.
● Muertes de donantes de órganos en los que se sospeche enfermedad
alguna que pueda repercutir en el receptor.
● Muertes ocurridas en las primeras 24 horas del ingreso en el hospital y/o
en aquellas que pudieran estar influidas por su estancia hospitalaria.

80
Q

Hay dos tipos de autopsias:

A
  • CLINICA
  • JUDICIAL O MEDICO-LEGAL
81
Q

Autopsias clínicas:

A

Son las autopsias de pacientes que fallecen por causas naturales o por una enfermedad. La autopsia confirma o, en su caso, determina el padecimiento fundamental, las alteraciones secundarias al mismo y aquellas otras derivadas del tratamiento, describe los hallazgos accesorios asintomáticos, silentes clínicamente, e investiga la causa de muerte. Este tipo de autopsias las realiza un médico anatomopatólogo.

82
Q

Autopsias judiciales o médico-legales: l

A

Las sometidas a un proceso judicial. El principal objetivo de la autopsia judicial es establecer la causa de muerte, muchas veces en circunstancias violentas, extrañas, poco claras, sospechosas de criminalidad. Este tipo de autopsias las realiza un médico forense, y el patólogo, a instancias de aquél, puede erigirse en consultor. Este tipo de informes o estudios forman parte, pues, de los denominados genéricamente “interconsultas”.

83
Q

Técnicas de autopsias:

A
  • Letulle
  • Mata
  • Virchow
  • en T
84
Q

Consiste en la apertura oval del tórax permitiendo observar claramente las vísceras.

A

Técnica de Letulle:

85
Q

Consiste en la apertura desde la
apófisis mastoide hasta la clavícula unidas por un corte supraesternal. Por otro lado se realiza la apertura desde la cavidad torácica hasta la fosa iliaca anterosuperior.

A

Técnica de Mata:

86
Q

Consiste en la apertura del cadáver desde el mentón hasta los genitales bordeando el ombligo por la parte izquierda.

A

Técnica de Virchow:

87
Q

Consiste en realizar una incisión biacromial por la parte superior del esternón y una segunda incisión medial a la anterior.

A

Técnica en T:

88
Q

TIEMPOS DE RESPUESTA MEDIO DE LAS AUTOPSIAS

A

● Informe provisional: 48 horas.
● Informe final: 1 mes.

89
Q

Métodos de extracción de vísceras:

A

● Método de Virchow: Se basa en la extracción de órganos de forma individual lo cual requiere elevados conocimientos anatómicos.
● Método de Rokitansky: Se basa en la extracción de órganos en bloque lo cual requiere un examen previo in situ.

90
Q

Reporte de una autopsia

A

Debe de incluir portada, descripción macroscópica de los hallazgos, exámenes de laboratorio postmortem, descripción microscópica con interpretación de tinciones de histoquímica e inmunohistoquímica requeridas si el caso aplica, y por último un listado de diagnósticos anatomopatológicos.