T2: aa y estructura primaria Flashcards

1
Q

Glutatión (GSH)

A

Tripéptido (Glu-Cys-Gly) que tiene un papel fundamental en el mantenimiento de los residuos cisteína en su forma reducida, evitando que se formen puentes disulfuro no deseados.

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2
Q

Hormona estimulante de los melanocitos

A

Inhibidor del apetito y estimula el gasto energético.

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3
Q

Galanina y Neuropéptido GAMMA

A

Estimulador del apetito.

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4
Q

Colecistoquinina

A

Estimula la secreción de enzimas digestivos.

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5
Q

Sustancia P y bradiquinina

A

Perceptor del dolor, actúan como mensajeros intermediarios entre el estímulo y el cerebro.

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6
Q

Características del enlace peptídico

A
  • ES POLAR: La carga negativa del grupo carbonilo y la positiva del grupo amina forman un dipolo. La presencia de estos átomos EN en la molécula favorece la formación de puentes de H entre los enlaces peptídicos.
  • TIENE CARÁCTER PARCIAL DE DOBLE ENLACE (40%): No existe rotación libre en torno al enlace C-N.
  • ES PLANO: Al no existir rotación, los 4 átomos del enlace (O-C-N-H) están en un mismo plano. No obstante, los enlaces N-Calfa y Calfa-C son enlaces simples y pueden rotar.
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7
Q

¿Dónde se sitúan los sustituyentes más voluminosos?

A

Los sustituyentes más voluminosos se colocan a cada lado del plano en conformación trans. No obstante, la prolina puede presentar conformación cis o trans, lo que permite la formación de giros beta o plegamientos en la cadena a medida que se forma la estructura secundaria y terciaria.

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8
Q

CONFORMACIÓN

A

Disposición espacial de los átomos de una proteína. No es una estructura rígida, puede intercambiarse con otras formas sin romper enlaces covalentes. De todas las conformaciones posibles, predomina la más estable.

Ej. rotación de enlaces simples, ruptura de interacciones débiles y/o formación de otras nuevas.

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9
Q

ESTRUCTURA PRIMARIA

A

Secuencia lineal de aa unidos por enlace peptídico y la localización de puentes S-S (en caso de que los haya). Es específica de cada proteína.

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10
Q

ESTRUCTURA SECUNDARIA

A

Ordenamiento espacial de los aa próximos entre sí en la estructura primaria, sumado a las interacciones que se forman entre ellos.

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11
Q

MOTIVO o ESTRUCTURA SUPERSECUNDARIA

A

Combinación específica de estructuras secundarias con una topología particular, organizados en una estructura tridimensional característica.

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12
Q

DOMINIO

A

Nivel de estructuración más complejo que el motivo. Es una región relativamente grande de una proteína que presenta diferentes combinaciones de estructuras secundarias y/o supersecundarias. Pueden tener funciones específicas y separadas dentro de la proteína.

Ej. La DNA polimerasa presenta un dominio de síntesis y otro de corrección.

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13
Q

¿Cómo determinar una secuencia de aa?

A

1- Eliminar los posibles puentes disulfuro con un agente reductor - DTT/beta-mercaptoetanol

2- Determinar la composición de aa por hidrolisis ácida con HCl (6N) a 110ºC.

3- Identificar el N-terminal con FDNB

4- Identificar el C-terminal con Carboxipeptidasa-A

5- Fragmentación de la cadena polipeptídica.

5- Determinación de la secuencia de los fragmentos

6- Ordenación de los fragmentos. (se trata la proteína con diferentes agentes de fragmentación para formar fragmentos de diferente longitud que nos permitan ordenarlos en base a sus coincidencias)

Repitiendo el proceso sin romper los puentes di sulfuro se obtienen fragmentos mucho más largo producto de la unión por ese enlace.

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14
Q

¿Cómo podemos evitar que se vuelvan a formar los puentes S-S en la determinación de una secuencia de aa?

A

Para evitar la reformación de los enlaces disulfuro los péptidos se tratan con yodoacético para alcalinizar los sulfihidrilos libres.

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15
Q

¿Qué agentes se emplean para fragmentar la cadena petídica?

A
  • TRIPSINA: Rompe el enlace peptídico que une Lys o Arg con el siguiente aa.
  • QUIMIOTRIPSINA: Rompe el enlace peptídico que une Tyr, Trp, y Phe con el siguiente aa.
  • BROMURO DE CIANÓGENO (BrCN): Rompe el enlace peptídico que une Met con el siguiente aa.
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16
Q

DEGRADACIÓN DE EDMAN

A

Permite obtener la secuencia de aa desde el extremo N-terminal. Puede aplicarse directamente a proteínas aisladas de una electroforesis SDS-PAGE o de una electroforesis bidimensional.

utiliza fenilisotiocianato para reaccionar con el residuo N-terminal en condiciones alcalinas y con ácido trifluoroacético anhidro se rompe el enlace peptídico contiguo al feniltiocarboamilo.

El resto del péptido queda intacto, por lo que la secuencia de reacciones se puede repetir hasta conseguir la secuencia completa. Sin embargo, no se pueden conseguir la secuencia completa de péptidos de más de 50aa, por lo que es necesario emplear enzimas o reactivos que fragmenten el péptido de partida.

17
Q

¿Cuáles son los 3 codones de terminación?

A

Codón ópalo: UGA

Codón ámbar: UAG

Codón ocre: UAA

18
Q

ESPECTRO DE MASAS POR ELECTROESPRAY

A

Las moléculas cargadas se introducen en un campo eléctrico y sus trayectorias a través de él varían en función de su relación masa/craga.

Una disolución de proteínas se dispersa en microgotas mediante el paso a través de una aguja. Las microgotas se evaporan y lso iones entran en el EM.

La masa de cada ión se puede determinar midiendo el tiempo requerido para atravesar la cámara.

19
Q

DETEMINACIÓN POR MALDI-TOF

A

Desorción/ionización en matriz inducida por láser (MALDI) y analizador de masas por tiempo de vuelo (TOF). Cada pico que se observa en corresponde a un ión.

20
Q

SECUENCIACIÓN DE PÉPTIDOS MEDIANTE ESPECTROSCOPÍA DE MASAS

A

Se emplea la técnica de EM en tándem:
1) La proteína se trata con una proteasa o reactivo químico para fragmentarlas.
2) Los fragmentos resultantes se inyectan en el espectrómetro de masas (MS-1) y los péptidos se separan. Solo se selecciona uno para su análisis posterior.
3) El péptido seleccionado se fragmenta de nuevo en una cámara entre los dos EM mediante impactos de elevada energía con un gas noble (He, Ar).
4) Se mide la relación masa/carga para cada fragmento en el segundo EM (MS-2).

21
Q

¿Qué información proporciona un EM?

A

Los picos representan los fragmentos peptídicos generados a partir de una muestra de un péptido pequeño. Los picos sucesivos difieren en la masa de un determinado aa, lo que permite identificar el aa que se ha perdido en cada caso. Solo existe ambiguedad entre Leu e Ile.

Al hacer el cálculo de la diferencia de masas hay que tener en cuenta que a cada aa le falta el OH en el extremo carboxilo terminal y un H en el amino terminal.

  • Confirmar semejanzas significativas entre proteínas
  • Comparar proteínas iguales en diferentes especies (vía evolutiva)
  • Sintetizar fragmentos de DNA codificantes de esa proteína.
  • Conocer las secuencia señal que dirigen a la proteína a una localización concreta de la célula.
22
Q

¿Por qué las proteínas absorben en el UV?

A

Porque los aa aromáticos son grupos indol derivados de heterociclos.

23
Q

¿Cuáles son las propiedades ácido-base de las proteínas?

A

Las proteínas son ANFÓTERAS en disolución a pH neutro, ya que, al estra ionizadas, pueden actuar como ácidos y como bases.

A pH muy ácido las moléculas están muy protonadas y conforme sube el pH se pierden los protones. El 1º que se pierde es el más ácido, el del grupo carboxilo.

Cuando el pH coincide con el pK1, el nº de moléculas protonadas y no protonadas es el mismo.

24
Q

AA MODIFICADOS

A

COLÁGENO
4-Hidroxiprolina
5-Hidroxilisina

ELASTINA:
Desmosina - 4 residuos de lisisna.

MIOSINA
N-metil-lisina

PROTROMBINA
Gamma-carboxiglutamato

25
Q

CLASIFICACIÓN DE LOS AA

A

APOLARES
- Alifáticos: Alanina, Valina, Leucina, Isoleucina, Metionina, Prolina y Glicina.
- Aromáticos: Fenilalanina, tirosina y triptófano.

POLARES
- Neutros: Serina, treonina, cisteína, asparragina y glutamina
- Ácidos: Ácido aspártico y ácido glutámico.
- Básicos: Lisina, histidina y arginina.