Purification des amplicons et Séquençage Flashcards

1
Q

Dans quel circonstance, la purification des amplicons pré-séquençage est nécessaire?

A

Lorsque la vérification sur gel d’agarose montre des bandes secondaires. La bande contenant le fragment d’ADN d’intérêt doit être découper rapidement après la migration.

Il est possible de les conservers au congélateur tel quel dans le gel.

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2
Q

Quel est le but de l’utilisation de la trousse d’extraction d’ADN à partir d’un gel d’agarose (FavorPrep) ?

A

Obtenir un échantillon d’ADN qui ne contient que les fragments d’ADN voulus pour le séquençage.

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3
Q

Pourquoi utiliser le FavorPrep, que permet-il de faire à l’échantillon ?

A
  • éliminer les composantes de la réaction de la PCR et autres contaminants potentiellement nuisibles
  • Améliorer la pureté de l’ADN
  • Augmenter la concentration de l’ADN.
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4
Q

Quel est le principe de base de la méthode de purification des amplicons par FavorPrep (3 grandes étapes)?

A

1) l’ADN en solution se lie a la membrane de silice de la colone
2) un lavage de la membrane de silice à l’aide d’un tampon à base d’éthanol permet de retirer les contaminants en gardant l’ADN attaché à la colonne
3) l’ADN est élué à l’aide d’un tampon sans sel qui brise les liens ADN-silice

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5
Q

Quel matériel est nécéssaire pour la purification des amplicons?

A
  • Trousse de FavorGen Biotech Corp: FavorPrep MicroElute Gel/PCR Purification Kit
  • Transilluminateur UV, masque de protection faciale
  • Lame de rasoir
  • Microtubes
  • Centrifugeuse
  • Bain chauffant
  • Balance
  • Micropipettes
  • Embouts
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6
Q

Décrit-moi la première étape de la purification des amplicons .

A

Étape 1:

  • Identifier sur le gel la bande d’intérêt sur le transilluminateur
  • À l’aide d’une lame de rasoir propre, découper la bande
  • Éliminer au maximum la partie de gel sans ADN

Attention aux UV! porter la visère pour ces étapes

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7
Q

Décrit-moi la 2 et 3e étapes de la purification des amplicons.

A

Étape 2:
-Transférer le morceau de gel dans un mirotube préalablement pesé

Étape 3:
-Peser le tube avec le gel. Le poids du gel ne devrait pas excéder 200 mg.

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8
Q

Décrit-moi la 4e étape de la purification des amplicons.

A

Étape 4:
-Ajouter 500 µl de tampon MF dans le microtube contenant le gel découpé.

-Le tampon MF favorise l’adsorption de l’ADN à la silice: faible pH et Force ionique élevée

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9
Q

Décrit-moi la 5e étape de la purification des amplicons.

A

Étape 5:
-Incuber 5 à 10 minutes à 55°C en agitant toutes les 2-3 minutes.

Le gel d’agarose doit être totalement dissout avant de poursuivre.
Si la couleur du tampon change du jaune au mauve, le pH doit être ajusté avec de l’acétate de sodium.

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10
Q

Décrit-moi la 6 et 7e étapes de la purification des amplicons.

A

Étape 6:
-Insérer une minicolonne MF dans un tube collecteur

Étape 7:

  • Transférer l’échantillon d’ADN dans la colonne
  • Centrifuger

l’ADN se lie a la membrane, tandis que les autres contaminants passent à travers la colonne.

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11
Q

Décrit-moi les étapes 8 à 11 de la purification des amplicons.

A

Étape 8:
-Ajouter 600 µL de Tampon de lavage TW pour éliminer les contaminants

Étape 9:
-Centrifuger 2 fois, pour bien assécher la colonne

Étape 10:
-Éluer l’ADN en ajoutant 12 µL de tampon d’élution

Étape 11:

  • Centrifuger
  • l’ADN est supposé être dans le fond du microtube

La composition du tampon d’élution n’est pas favorable à la liaison de l’ADN à la silice: pH élevé et faible force ionique

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12
Q

Après la purification de l’ADN avec la FavorPrep, quels sont les 2 méthodes d’évaluation de la concentration de l’ADN purifié ?

A

1) à l’aide d’un colorant fluorescent:
- Par électrophorèse sur gel d’agarose en présence de GelRed.

2) Au spectrophotomètre:
- Non recommandé pour un échantillon d’ADN de faible concentration.

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13
Q

Quelle est la façon la plus fondamentale d’analyser l’ADN ?

A

Quel que soit le type d’ADN, c’est toujours de déterminer sa séquence en nucléotides.

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14
Q

Quelle est la principale méthode de séquençage de l’ADN?

A

La méthode de terminaison de chaîne de Sanger.

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15
Q

Quels sont les notions de bases importantes à savoir sur la synthèse de l’ADN par une ADN polymérase?

A
  • l’ADN polymérase requière une amorce hybridée au brin d’ADN matrice pour la synthèse
  • le nouveau brin d’ADN est produit en ajoutant à l’amorce des nt complémentaire à ceux de la matrice
  • l’addition de nt au brin synthétisé se fait par la formation d’un lien covalent phosphodiester entre le phosphate en 5’ du nt à ajouter et l’hydroxyle à la position 3’ de la molécule en synthèse.
  • Une amorce qui s’hybride à un endroit spécifique sur la matrice donnera des molécules d’ADN néosynthétiser qui débuteront tous au même endroit
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16
Q

Quel est le substrat naturel de l’ADN polymérase?

A

c’est un 5’-dNTP = désoxynucléotides avec 3 phosphate en 5’ sur le 2’désoxyribose.

17
Q

Que se produit-il si on ajoute un substrat modifié en 3’ à la place du substrat naturel?

A

Il sera possible d’intérrompre la synthèse de l’ADN.

un 2’,3’-didésoxy ou ddNTP peut être incorporé à l’ADN mais aucun autre nucléotide ne peut être ajouté à la molécule d’ADN puisqu’il n’a pas de groupement OH en position 3’ = synthèse terminé

18
Q

Explique moi ce qu’il se produit dans la réaction de Sanger.

A
  • 4 réactions sont effectuées en parallèle au séquençage et chacune d’elles comporte un seul type de ddNTP en faible proportion pour arrêter la synthèse, mais tous les dNTPs.
  • au cours de la réaction, la polymérase intégrera un ddNTP de temps en temps, et cela terminera la polymérisation de ce brin.
  • un certain pourcentage de brin se termine par l’incorporation de ddNTP mais un autre pourcentage continuera sa polymérisation.
  • Au final, une série de molécules d’ADN de tailles différentes sont obtenues et toutes ces molécules se terminent par l’incorporation d’un ddNTP.
19
Q

Quel types de gel d’électrophorèse sera utiliser pour déposer les échantillons post-séquençage de Sanger et pourquoi?

A

dans un gel de polyacrylamide en condition dénaturante

ce gel permet la séparation des brins d’ADN d’après leur taille et offre une telle résolution qu’il est possible de distinguer des brins d’ADN dont la longueur ne diffère que d’un seul nucléotide

20
Q

Qu’est-ce qui est absolument essentiel d’ajouter soit au amorces ou soit au ddNTP pour être en mesure de faire la lecture du gel ?

A

Un marqueur est nécessaire.

La méthode la plus couramment utiliser est de marquer chaque ddNTP avec un fluorophore unique, ce qui facilitera grandement la lecture par la suite grâce à des détecteur de fluorescence

21
Q

Quels sont les deux composants à envoyer pour le séquençage dans une centre ?

A

Il faut envoyer un échantillon de l’ADN d’intérêt avec les amorces appropriées.
une amorce pour séquencer chaque brin de l’ADN.

22
Q

Lorsque le séquençage est complété, quel fichier recevras-tu et que devras-tu faire avec pour l’analyse?

A

Le centre retourne les fichiers contenant le chromatogramme et la séquence obtenue.

Lors de l’analyse, il faudra retirer les premières bases qui sont peu fiables, en plus de changer tous les N pour les lettres correspondantes au chromatogramme.

Le début et la fin d’un chromatogramme sont généralement mal définis, pics faibles et/ou se chevauchant… ce qui les rend peu fiable pour l’analyse

23
Q

Quelle longueur de séquence est-il réaliste d’obtenir?

A

entre 500 et 700 bases de séquence fiables

au delà de cette longueur, la qualité du chromatogramme diminue et par conséquent, la fiabilité de la séquence aussi.

24
Q

Nomme moi 6 organismes modèles eucaryotes autre que saccharomyces cerevisiae.

A
  • Arabidopsis thaliana (plante)
  • Mus musculus (souris)
  • Drosophila melanogaster (mouche)
  • Nicotiana tabacum (tabac)
  • Brachydanio rerio (poisson zèbre)
  • Caenorhabditis elegans (nématode)

Voici le lien vers la page wiki des organismes modèles:
https://fr.wikipedia.org/wiki/Organisme_modèle#cite_note-1