Polarité, motilité cellulaire et différenciation épithéliale Flashcards

1
Q

Existe-t-il des cellules non épithéliales polarisées ?

Les cellules épithéliales sont toutes polarisées : polarité ?

Cellules non polarisées ? (2)

A
  • Neurone, spermatozoïde
  • Cellules épithéliales sont toutes polarisées avec un pôle apical et basal, des jonctions serrées et un domaine latéral. Ici (d), cellule épithéliale du tube digestif. La polarité est aussi le fait des organites (noyau au pôle basal avec l’appareil de golgi et les vésicules d’exocytose, et à l’apex une ceinture de cytosquelette).
  • fibroblastes et cellules embryonnaires.
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2
Q

L’organisation polarisée de la cellule épithéliale permet 2 fonctions ?

A
  • Barrières de perméabilité réduite entre 2 compartiments (polarité des jonctions)
  • Transfert vectoriels (ions, molécules) entre ces 2 compartiments
  • Mouvements vésiculaires polarisés :
    * Noyau au pole basal
    * Mouvement polarisé des vésicules autour du RE et du golgi: endocytose au pole apical → circulation de vésicules intra cellulaire polarisé → exocytose au pole apical à nouveau.
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3
Q

Quelles sont ces jonctions qui déterminent la polarité ? et leurs protéines spécifiques ?

A
  • Partie plus apicale : jonctions serrées (protéines majeures : Claudine, Occludin et ZO1 typiques de ces jonctions), qui interagissent entre elles et avec le cytosquelette pour assurer l’imperméabilité),
  • Partie médiane : jonctions adhérentes (protéines majeures : cadhérine, qui interagit avec la beta-caténine, p120-caténine), capables d’interagir avec le cytosquelette d’actine, mais aussi capable de se déplacer au noyau pour induire de la signalisation intranucléaire.
  • Pôle basal: structures d’adhérence à la membrane basale (protéine : intégrine).
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4
Q

3 mécanismes de formation d’une lumière ?

A

- Perte de contact des cellules à l’intérieur de la lumière. Lorsque dans un tissu primaire des futures cellules épithéliales rentrent en contact les unes avec les autres et prolifèrent pour former un bourgeon, présence d’un mécanisme d’apoptose au centre de la masse cellulaire. Ce qui détermine la polarité c’est l’existence d’un contact avec le stroma d’un côté et l’absence de stroma de l’autre. Ce qui permet à ces cellules périphériques de survivre, c’est l’existence d’un contact d’un côté cellulaire et de l’autre avec un tissu conjonctif.

  • Autre mécanisme de formation d’une lumière : sécrétion polarisée par exocytose. La polarité est déterminée par l’extérieur (le tissu conjonctif) avec un noyau polarisé de ce côté et des organites qui vont s’organiser de la périphérie vers le centre de l’amas: vésicules d’exocytose émises vers le centre → l’origine de la lumière.
  • Troisième mécanisme (en particulier dans le développement bronchique) : systèmes de répulsion impliquant des protéines/récepteurs de la famille Robo/Slit. A la surface d’une cellule, lorsqu’il a d’un côté la présence de Robo et de l’autre du Slit, il y a un antagonisme empêchant l’adhésion, créant une lumière. Aux extrémités de ces cellules il n’y a pas de Robo/Slit mais des structures d’adhérence font la jonction.
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5
Q

EMT et MET réversible permet le passage d’une cellule avec des caractéristiques épithéliale (jonction serrée, adhérence) à des caractéristiques mésenchymateuse (cellule peut se détacher)

Cela implique entre autre une modification du cytosquelette.

A
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6
Q

Où se situe les protéines membranaires sur des cellules épithéliales cultivées en suspension ?

Quel ion est nécessaire au fonctinnement des cadhérines ? Que se passe-t-il si culture de C épithéliale sans calcium ?

A
  • Distribution non polarisée des protéines
  • Contacts extraCaire (cellules-cellules ou Cellules-MEC) => polarisation
  • Cellules de tubule rénale de chien (MDCK) cultivé sans Ca (pas de fonction des cadhérine) => Les cellules n’adhèrent alors pas les unes avec les autres mais continuent d’adhérer au substrat. En découle une polarité incomplète: les protéines normales de la base sont reparties dans toutes la cellule.

- Adhérence à la MEC => localisation rapide des protéines “apicales” sur toute la membrane à l’exclusion de la zone de contact avec le substrat
=> l’adhérence cellulaire à la MEC organise l’axe de polarité apico-basal.

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7
Q

Que se passe-t-il si uniquement contact interCaire ?

A
  • L’adhérence interCellulaire permet l’organisation du domaine baso-latérale. Mais ZO1 (jonction serrée) tout le long des zones de contact intercellulaire
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8
Q

Culture en suspension : comment est défini l’axe de polarité ?

Si culture de ces suspension sur collagène : que se passe-t-il ?

A
  • Axe de polarité par la sécrétion de collagène par les cellules (à l’intérieur des agrégats)
  • Si culture sur une MEC : inversino de polarité

Donc si on cultive des cellulles : l’axe de polarité apico-baso-latéral est seulement établi quand une MEC s’accumule d’une coté des cellules .

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9
Q

Contact extracellulaire => assemblage poalrisé des protéines du cytosquelette => réorganisation de la surgace membranaire et de l’appareil sécrétoire

A
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10
Q

4 types de lésions intercellulaires :

A

Liaisons homophiles :

  • Cadhérine - cadhérine
  • CAM - CAM

Liaisons hétérophiles :

  • Sélectrines - autres
  • Intégrines - MEC ou CAM
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11
Q

3 principales molécules d’adhérence intercellulaire ? et distribution tissulaire ?

A
  • Cadhérine E (embryon, épithélium)
  • Cadhérine P (trophoblaste)
  • Cadhérine N (cellules neuronales, coeur, muscle squelettique)
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12
Q

Structure de la cadhérine :

A
  • glycoprotéine transmembranaire
  • en extra cellulaire: interagit sous forme de dimère avec son équivalent sur la cellule opposée
  • le domaine transmembranaire est court
  • la partie intra cellulaire joue un role important → interaction protéine protéine avec les protéines cytosquelettiques → permet de relayer l’information d’un contact inter cellulaire.
    * bétaCaténine : intérgati avec alpha caténine puis actine, actinine, vinculine
    * p120catenine : interaction avec Rho GTPase
  • interaction cad cad dépend du calcium
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13
Q

De quoi sont dépendantes les cadhérines ? (2)

A
  • Calcium + glycosylation
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14
Q

De quel fonction les cadéhrines sont responsables (qui est perdu dans la cellule tumorale) ?

A
  • Inhibition de contact
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15
Q

Différence d’organisation du cytosyquelette : cellule polarisée (épithéliale) et non polarisée (mésenchymateuse) ?

A
  • Lorsque les cellules épithéliales sont en contact les unes avec les autres : les faisceaux d’actine/tubuline sont perpendiculaires à la membrane basale, ils structurent l’adhésion au pôle basal + au pôle apical présence d’ une ceinture d’actine qui comporte la zonula occludens (zone où se trouvent les jonctions serrées).
  • En cas de perte de la polarisation épithéliale, l’organisation n’est pas du tout la même : les fibres d’actine/tubuline sont parallèles au support rayonnant depuis le centrosome (zone MTOC) vers les zones de contact avec la membrane (zones d’adhésion focales), le noyau est de l’autre côté du front de migration cellulaire, le golgi est dans la direction de migration de la cellule.
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16
Q

3 conditinos pour l’expression optimale du phénotype épithéliale en culture ?

A
  • Ensemensement à forte densité cellulaire : pormotion contacts intercellulaire
  • MEC simple ou complexe : promotion contacts cellule-MEC
  • et/ou culture support semi-perméable (air d’un coté, liquide de l’autre)
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17
Q

Etapes cultures 3D à l’interface air-liquide :

A
  • Insert semi perméable
  • Collagène / fibroblaste
  • cellules épithéliales bronchiques (immortalisée après infection virale) recouvertes de milieu de culture
  • 24h d’adhésion puis on aspire lel liquide pour les laisser à l’air libre
    => polarisation respiratoire à 8-15jours
18
Q
A
19
Q

Quelques propriétés obtenues par polarisation ? (5)

A
  • Différence de pH entre pôles apical et basal
  • Mise en place d’une résistance électrique trans-épithéliale
  • Barrière
  • Adressage polarisé des protéines membranaires et protéines sécrétées
  • Ségrégation des récepteurs et de leurs ligands (erbB/HER)
20
Q

Intervention de la motilité dans des processus physiologiques (4) et pathologiques (2)

A

Physiologique :

  • Développement embryonnaire
  • Cicatrisation
  • Vascularisation
  • Inflammation

Pathologique :

  • Croissance et vascularisation tumorale
  • Métastases
21
Q

Comment passe-t-on d’une cellule normale à une cellule cancéreuse ?

A
  • Par la TEM
22
Q

TEM :

Caractéristiques d’une cellule mésenchymateuse

A
  • Pas de polarisation apico-basale
  • Pas de couches organisées
  • Rare contacts focaux entre celllules
  • Morphologie allongée
  • Plasticité très importante => mobilité
23
Q

Marqueurs épithéliaux et mésenchymateux :

A

Marqueurs épithéliaux :

  • E cadhérine
  • Plakoglobine
  • Occludines
  • Cytokératines
  • béta caténine

Marqueurs mésenchymateux :

  • N cadhérine
  • Beta caténine
  • Vimentine
  • Actine
  • Métalloprotéase
  • Fibronectine
24
Q

Rôles phsyiologiques de la TEM ? (2)

Rôle pathologiques de la TEM ? (2)

A

Rôles physiologiques :

  • embryogenèse : migration et colonisation de territoire embryonnaire
  • régénréation tissulaire : cicatrisation

Rôle pathologiques :

  • Fibrose
  • Cancders
25
Q

Structure des intégrines :

homo ou hétérodimère ?

Combien de domaine transmembranaire ?

Rôles des 2 su ?

A
  • protéines hétérodimériques transmembranaires : 1 su béta et alpha, liaison non covalente
  • 1 seul domaine transmembranaire sur chaque sous unité
  • Grand domain extracellulaire et court domaine cytosolique
  • béta dicte le grand type de ligand reconnu, alpha assure la spécificité du ligand
26
Q

Dans quelle structures retrouve-t-on les intégrines dans les cellules épithéliale fixe ? mobiles ?

A
  • hémidesmosome ou point d’adhérence focaux
27
Q

Modifications de la TEM ?

A
  • Remodelage du cystoquelette
  • Modification desinteractions intercellulaires
  • Modification des interactions avec la MEC
  • Dégradation de la MEC
28
Q

Composition d’une adhésion focale ?

A
  • Taline
  • Vinculine
  • Paxilline
  • alpha-actine
29
Q

Propriétés d’une cellule cancéreuse ?

A

Propriétés d’une cellule cancéreuse:

  • cellule immortalisée (se divise de façon infinie dans le temps)
  • perte de l’inhibition de contact
  • capacité de pousser sans adhérence
  • forme des tumeurs si injectée à une souris nude
30
Q

Comment savoir si une anomalie moléculaire mène une cellule tumorale ?

A

Quand on veut tester une anomalie moléculaire dans une cellule: on l’introduit dans la cellule normale puis on vérifie la caractère:

  • immortel de la cellule
  • la perte de l’inhibition de contact (les cellules forment des amas)
  • la capacité de pousser sans adhérence ( perte de l’anoikis)
  • si injectée à une souris immunodep: forme une tumeur.
31
Q

Quelles sont les sous familles des protéines RAS ?

A
  • Les protéines Rho (sous famille la plus importante). Protéines activées par le cytosquelette (donc indirectement par les contacts).
  • Les protéines Rab: régulent les transports vésiculaires
  • Les protéines RAC
32
Q

Comment sont activées les protéines RAS ? ou se situent-elles ?

Quelle modification dans les mutations KRAS ?

A
  • Activé par GTP (elles ont une activité GTPase)
  • Elles se situent à la membrane (plasmique pour RAS)
  • Dans les cellules cancéreuses (mutaiton K RAS): mutations de la zone de fixation des guanines → RAS est bloquée dans sa configuration active liée au GTP → elle est incapable d’hydrolyser en GDP → signal constitutif de prolifération.
33
Q

Comment fonctionne les protéines Rho ?

A

Les protéines Rho fonctionnent de la même façon mais possèdent un autre régulateur, le GDI, qui décroche la protéine Rho de la membrane et la maintient en forme inactive liée au GDP.
Il n’y a pas de mutation de Rho mais des translocations sur les facteurs d’échanges (GEF).

34
Q

Quelles sont les 4 grandes composantes de la motilité cellulaire ?

A
  • Polarisation du cytosquelette
  • Lamellipodes à l’avant
  • Etabli un point focal d’adhésion transitoire
  • Force contractile pour se rétracter

Recyclage permanent des composant nécessaires à la migration

35
Q

Quel est le rôle de Rho dans la migration ?

A

Tout ceci est régulé par les protéines Rho qui jouent un rôle majeur dans la polarisation du cytosquelette:

  • régulent la mise en place des lamellipodes à l’avant
  • la polarisation de l’actine et des microtubules
  • la contraction de l’actine/myosine.
36
Q

Quelles sont les 2 structures de la protrusion de la membrane ?

A
  • Filopode : extension fine, assemblage parallèle de filaments d’actine => sonde environnementale et initiation de la migration
  • Lamellipode : polymérisation ramifiée de filaments d’actine avec complexe focaux/podosomes => entretien de la migration
37
Q

Rho favorise ou inhibre la polymérisation ?

A
  • Les Rho GTP activent des kinases (de type ROCK1) → phosphorylation de Cofilin (facteur de dépolymérisation ) = inactivation → arrêt de la dépolymérisation de l’actine → et donc favorise la polymérisation dans cette direction.
  • A l’extrémité (+) les protéines de la coiffe l’empêchent la polymérisation.
    Après interaction avec Rho → ouverture des protéines de la coiffe → polymérisation possible.
    ⇒ Rho gouverne le sens de la migration de la cellule en gouvernant le sens de la polymérisation de l’actine.
38
Q

3 modes de migrations différents ?

A

Les modes de migration:
- la migration collective: les c migrent en restant en contact, TIP cell à la pointe qui tirent toutes les autres. Cas des cancers épithéliaux.
- la migration mésenchymale: cellule dédifférenciée, qui ressemble à un fibroblaste.
- la migration amoeboidé: au maximum de dédifférenciation, migration sans aucune résistance.
Le mode de migration depend de la densité de la matice (os …), conditionne l’utilisation des MMP.

39
Q

Comment peut-on étudier uniquement la migration pas la prolifération ?

A

En 2D : Modèle classique ou l’on génère une blessure sur un tapis cellulaire et on mesure la vitesse à laquelle la blessure se ferme, proportionnelle à la prolifération et à la vitesse de migration.
Donc si on veut n’étudier que la migration, on le fait en présence d’un inhibiteur de la prolifération : la mitomycine C.

40
Q

3 modèles d’étude de la migration ?

A
  • En 2D : Modèle classique ou l’on génère une blessure sur un tapis cellulaire et on mesure la vitesse à laquelle la blessure se ferme, proportionnelle à la prolifération et à la vitesse de migration.
  • Étude en 3D, avec un système d’insert. Sur une membrane semi-perméable on ensemence les cellules.
    On génère un gradient de facteur de croissance, les cellules vont migrer à travers la membrane et on compte sur l’autre face de la membrane le nombre de cellules qui ont migré (Migration 3D).
  • migration non polarisée avec des gouttes d’agarose où l’on met les cellules en présence d’un gradient de facteurs de croissance.
    On mesure la dispersion des cellules tumorales à partir de la goutte et leur vitesse de progression.
    Mais il y a toujours une composante prolifération, qu’on peut supprimer par mitomycine ou bien par des logiciels de vidéo-tracking.
41
Q

Grande ligne de la voie Hippo :

A

Voie Hippo :

  • Cellule épithéliale différenciée/inhibition de contact => régulateurs (RASSF1A, NF2…) => active kinase => phosphorylation YAP/TAZ => inhibition de contact
  • Cancer : mutation NF2, méthylation RASSF1A => pas d’interaction régulateurs/Kinases => YAP/TAZ -> noyau => prolifération