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Patho clinique > Assurance qualité > Flashcards

Assurance qualité Flashcards

1
Q

Quand peut survenir une lipémie

A

Post prandial ou pathologique (syndrome hyperlipémique)

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Q

Quel peut être l’impact de la lipémie sur la biochimie

A

Diminution Na/Cl +/- K; dilution

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Q

Quel peut être l’impact de la lipémie sur l’hématologie

A

Favorise hémolyse
Altère drastiquement morphologie cellules

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4
Q

Principales variations associées aux Greyhound

A

Augmentation paramètres érythrocytaires et VGM

Comptage plaquettaire et leucocytaire diminué

Augmentation créatinine et SDMA

Diminution T4 totale et libre

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5
Q

Qu’est-ce que les règles de WestGard

A

Basées sur calcul de la moyenne et de l’écart-type des résultats CQ
Exemple: règle 22ET
* Détection d’une non-conformité si 2 données (N=2) consécutives dépassent
2 écarts-types (L=2 ET) du même côté de la moyenne

=Détection de résultats non-conformes secondaires à une erreur analytique est importante car les résultats des échantillons de vos patients pourraient être significativement erronés
Lorsque détectés, on doit intervenir immédiatement
1. Identifier la cause
2. Procéder à une action corrective (ex: calibration/entretien de l’appareil,
formation du personnel…)
3. Analyser un 2e échantillon, documenter le dossier, aviser le propriétaire si nécessaire

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6
Q

Quoi faire lors de détection de résultats non-conformes

A

intervenir immédiatement
1. Identifier la cause
2. Procéder à une action corrective (ex: calibration/entretien de l’appareil,
formation du personnel…)
3. Analyser un 2e échantillon, documenter le dossier, aviser le propriétaire si nécessaire

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7
Q

Est-ce que faire un frottis sanguins est obligatoire?

A

NON (si en santé et paramètres normaux),
mais risque de manquer:
- léger foyer inflammatoire
- cellules/ inclusions atypiques
- microorganismes (microfilaires)

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8
Q

Quand refaire un différentiel leucocytaire?

A

Après avoir examiné 15 champs à 500x

  • présence GR nucléés
  • présence neutrophiles immatures
  • présence c. atypiques

Appareil indique l’un des changements suivants:
- leucopénie/ neutropénie
- leucocytose marquée
- ..

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9
Q

Quoi faire en présence de GRs nucléés

A

Nb GR nucléés comptabilisé séparément GBs (Nb GR/100 GB)

Comptage leucocytaire doit être corrigé si +5

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10
Q

Quand appliquer un critère de “réanalyse”

A

Résultats atypiques/ incompatibles
Détection erreur pré-analytique

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11
Q

Qu’est-ce que l’assurance qualité?

A

Ensemble des mesures mises en place par un laboratoire afin de
maximiser sa performance et de garantir l’obtention de résultats
précis et fiables
La capacité d’un appareil à effectuer un test ne garantit
pas que les résultats générés soient précis!

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12
Q

De quoi dépend la qualité d’un résultat

A
  • Qualité de l’échantillon
  • Appareil utilisé
  • Individus opérant l’appareil
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13
Q

Pourquoi l’assurance qualité est importante?

A

Majorité décisions cliniques basées
sur tests de laboratoire!
Qualité au laboratoire permet d’établir dx
et d’influencer adéquatement décision médicale = meilleurs soins

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14
Q

Quels éléments font partie de la phase pré-analytique?

A
  • Requête/sélection du test
  • Prélèvement de l’échantillon
  • Transport/réception au laboratoire
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15
Q

Quels éléments font partie de la phase analytique?

A
  • Préparation/manipulation
  • Analyse
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16
Q

Quels éléments font partie de la phase post-analytique?

A
  • Vérification résultats + rapport final
  • Interprétation -> décision clinique
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17
Q

Quelle phase est la source la plus importante d’erreurs?

A

Phase pré-analytique (jusqu’à 75%!!)

  • Sélection adéquate du test désiré et du type d’échantillon
  • Obtenir un échantillon de bonne qualité
  • Identification adéquate échantillons
  • Réception échantillon au labo
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18
Q

Quelle erreur de la phase pré-analytique peut expliquer une thrombocytopénie sévère?

Résultats de la situation?

A

Tubulure de l’appareil obstruée par un caillot
= cause fréquente de rejet d’un échantillon !

Conséquences:
Résultat erroné:
* Mauvais diagnostic
* Mauvaise décision médicale (diagnostique et thérapeutique)
* Inquiétude inutile et frustration du propriétaire
* Possible bris de l’appareil ($ à $$$)
* Impossibilité de procéder aux analyses

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19
Q

Comment prévenir la présence du caillot dans la tubulure?

A

Vérifier la présence d’un caillot dans le tube
* Vérifier la présence d’amas plaquettaires au
frottis sanguin

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20
Q

Quel tube pour biochimie?

A

Tube sec (rouge!); sans additif

(tube hépariné possible)

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21
Q

Quel tube pour hématologie?

A

Tube EDTA

(hépariné/ citrate possible)

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22
Q

Quel tube pour urine?

A

Tube sec (rouge)

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23
Q

Quel tube pour cytologie de liquide?

A

Cyto: EDTA
Biochimie, culture: tube sec

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24
Q

Quel tube pour test de coagulation

A

Tube citraté

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25
Q

Quels changements seraient causés par biochimie sur tube EDTA

A

Hyperkaliémie
Chute calcium, magnésium, ALP
(changements sévères non compatibles avec la vie)

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26
Q

Quelle serait la conséquence d’un tube sous-rempli sur les protéines?

A

Dilution liquide par EDTA = SURESTIMATION au réfractomètre
(EDTA a très haut index de réfraction)

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27
Q

Pourquoi prélever dans jugulaire

A

Rapide
Débit + élevé
Moins de risque hémolyse ou caillots

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28
Q

Comment remplir un tube (hémato)

A

Laisser se remplir, pas forcer
Mélanger en renversant 5x

Min. rempli à 50%
(sinon augmente tonicité = diminution v. cellulaire)

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29
Q

Comment préparer envoi idéal pour biochimie

A

Idéalement, sérum séparé des c. avant envoi au labo
(échantillon décanté dans tube sec)

Laisser coaguler 30 min T pièce
Centrifuger (10 min 3300 rpm)
Séparer

30
Q

Conséquence d’une coagulation incomplète (biochimie)

A

Formation fibrine soluble dans sérum:
- limite V de sérum disponible
- peut bloquer tubulures appareils

31
Q

Pourquoi utiliser tube citraté pour test coagulation
et précaution à prendre lors prélèvement?

A

Citrate = chélate calcium = empêche formation caillot

Aucun trauma tissulaire lors prélèvement !
aucun hématome sinon recommencer autre côté

Toujours bien remplir tube
Min. rempli 90%!!
sang:citrate 9:1

32
Q

Conséquence excès de citrate

A

Prolongation temps de coagulation

33
Q

Comment envoyer test de coagulation

A

Centrifuger
Prélever plasma; tube de plastique sans additif (PAS verre; active cascade de coagulation_ ; identifier plasma citraté

vérifier présence de fibrine (rejet échantillon)

Congeler immédiatement ! envoyer avec de la glace

34
Q

Comment envoyer tout échantillon au laboratoire externe

A

Contenant isolé contre gel et chaleur excessive
Liquide: glace pour garder réfrigéré
Contenant sécuritaire

Attention vapeur de formol: empêche fixation par alcool
(transporter échantillons formolés séparément autres échantillons)

35
Q

Quelles informations donner au laboratoire externe

A

Toutes informations pertinentes:
- signalement
- nature, méthode, date prélèvement
- localisation anatomique et description macro lésion
- question spécifique, ddx

36
Q

Impact délai d’analyse de biochimie:
- Glucose

A

DIMINUÉ:
- métabolisme c. = diminution 5-10% glucose/ heure à T pièce

inhibé par réfrigération

37
Q

Impact délai d’analyse de biochimie:
- Potassium, phosphore, magnésium

A

AUGMENTÉS:
Fuite électrolytes GRs en présence ou sans hémolyse

38
Q

Impact délai d’analyse de biochimie:
- Bicarbonates

A

DIMINUÉS
Diffusion CO2 vers air (limiter exposition air)

39
Q

Impact délai d’analyse de biochimie:
- Gap anionique

A

AUGMENTÉ (hyperK et moins HCO3)

40
Q

Impact délai d’analyse d’hématologie:
- Sur GR

A

AUGMENTATION VGM ET HÉMATOCRITE
DIMINUTION CGMH

Gonflement GRs

Aussi hémolyse in vitro

41
Q

Impact délai d’analyse d’hématologie:
- Sur plaquettes

A

DIMINUÉS
Dégranulation/ agrégation et gonflement

42
Q

Impact délai d’analyse d’hématologie:
Sur GB

A

DIMINUÉS (lyse cellulaire)
Différentiel c. moins précis (gonflement GB_

43
Q

Impact délai d’analyse sur frotti sanguin:

A

Formation de petits corps de Döhle (faux toxogramme)
* Dès 4h à température pièce, 8h sur glace et 24h si réfrigéré
Hyposegmentation (faux virage à gauche)
Formation cellules apoptotiques +/- vacuolisation GB
Formation échinocytes
Formation c. fantôme

*Préparer frotti rapidement et envoyer avec tube

44
Q

Quelles variables sont évaluées lors phase analytique

A
  • Appareil bien entretenu et calibré
  • Réactifs entreposés/préparés adéquatement
  • Techniques de laboratoire adéquates (ex: pipetage, homogénéisation liquides, erreur de calcul)
  • Vérifier présence substances interférentes
  • Programme de contrôle de qualité
  • Vérifie la performance des tests et la présence d’erreurs analytiques
45
Q

L’hémolyse peut causer de l’interférence. Quelles en sont les causes.

A

Fréquent !
Peut être artéfactuelle (in vitro) ou pathologique (in vivo)
* Souvent in vitro (prélèvement traumatique, congélation sang entier, délai
séparation sérum des cellules, lipémie)
* Peut être difficile à différentier (in vivo si patient anémique + hémoglobinurie)
Peut interférer avec certains paramètres biochimiques/hématologiques
* Interférence spectrale, libération contenu des GRs, effet de dilution

46
Q

Interférence de l’hémolyse sur biochimie

A

↑ Bilirubine, phosphore (si délai d’analyse), CK, AST, LDH, fer, Mg
* ↑ Potassium
* Seulement chez équin et certaines races canines asiatiques et bovines
* Contact prolongé entre GRs et sérum peut aussi faire ce changement

47
Q

Interférence de l’hémolyse sur hématologie

A

↓ comptage GR et Ht -> ↑ CGMH (calculé)
* Contenu en Hgb reste le même (Hgb reste dans le sérum)
* Protéine totale au réfractomètre difficile à lire (ligne floue)
* Cellules fantômes (in vivo ou in vitro)
* Peut causer ↑ plaquettes et VPM (CFs comptées comme plaquettes)

48
Q

Interférence de l’hémolyse sur l’Électrophorèse des protéines sériques

A

Peut causer un pic d’apparence monoclonal en région bêta

49
Q

Comment éviter hémolyse in vitro

A

Prélèvement sanguin non traumatique
* Aiguille diamètre adéquat (pas trop petit) et éviter pression négative
trop importante
* Éviter de trop mettre d’alcool au site du prélèvement
* Ne pas forcer le sang dans les tubes
* Entreposage adéquat des tubes
* Tube sec: limiter le contact entre GRs et sérum (séparer rapidement)

50
Q

Quelles sont les causes de lipémie

A

Peut être post-prandiale ou pathologique (syndrome hyperlipidémique)

51
Q

En quoi la lipémie interfère avec la biochimie?

A

↓ Na/Cl +/- K (effet dilution avec certaines méthodes, ex: potentiométrie indirecte)

52
Q

En quoi la lipémie interfère avec l’hématologie?

A

Favorise l’hémolyse
* Altère la morphologie des cellules
↑ protéine totale au réfractomètre (lipides ont haut index réfraction lumière)
* ↑ Hgb -> ↑ CGMH (interférence spectrale)
* Utiliser CHCM (mesuré directement dans GR)
* Hgb peut être calculé:
* Possible ↑ plaquettes (particules lipidiques comptées comme des plaquettes)

53
Q

Comment éviter lipémie

A

Jeûne de 8-12h, mais parfois impossible à éviter…
* Présentation aux urgences
* Lipémie associée à une maladie (ex.: diabète, hypothyroïdie)
* Ultracentrifugation du sérum permet de ↓ lipémie (14 500 rpm, 10 min)
* Sépare le sérum des lipides (couche lipidique se forme au-dessus)
* Sérum peut être réfrigéré avant
* Dosage triglycérides doit être fait avant, sinon résultat sera faussement ↓

54
Q

À quoi est associée l’ictère

A

Condition pathologique

55
Q

Comment l’ictère interfère sur biochimie?

A

Peut interférer avec certains analytes
* Ex: ↓ Protéine totale, créatinine

56
Q

Comment les corps de heinz peuvent influencer l’hématologie?

A

Grande qté CH (> 50% GRs) peut interférer avec certains paramètres
hématologiques
Hématologie
* ↑ Hgb -> ↑ CGMH (interférence spectrale)
* Utiliser CHCM et Hgb peut être calculée
* Voir section lipémie

57
Q

Quelles variables sont incluses dans la phase post-analytique?

A

Ensemble variables associées à la transmission résultats au vétérinaire:
- Transcription résultats (ex: mauvaise valeur transcrite, pas le bon patient)
- Système automatisé permet de limiter les erreurs
- Intervalle de référence adéquat pour l’espèce (… la race, l’âge) : ex. greyhound !!

58
Q

Comment contrôler les facteurs analytiques

A

Plusieurs volets doivent être intégrés
* Rédaction des procédures opérationnelles normalisées (PON)
* Formation du personnel
* Validation, maintenance et calibration des appareils
* Programme de contrôle de qualité
* Procédures statistiques
* Procédures non-statistiques (ex: validation résultats, frottis sanguin)

59
Q

Qu’est-ce qu’un PON

A

Procédure opérationnelle normalisée (PON)
Documents officiels décrivant l’ensemble des étapes à suivre afin d’effectuer
une procédure
Permet de standardiser les procédures et de s’assurer qu’elles sont adéquatement effectuées par tout le personnel
Exemple
* Comment prélever/préparer ces échantillons pour une analyse spécifique

60
Q

À quelle fréquence passer les contrôles

A

Idéalement, 1x/jour si l’appareil est utilisé quotidiennement
* Au minimum 1x/semaine
Permet de rapidement détecter un problème avant que l’on se
questionne sur la validité de résultats cliniques
Moins un appareil est utilisé, plus le CQ devient important
* On a plus de chances de détecter un problème analytique quand un
appareil est fréquemment utilisé

61
Q

Comment comptabiliser les données de contrôle qualité?

A

Graphique de Levey-Jennings
- Suivre données de façon séquentielle et
chronologique
- Résultats des contrôles comparés à une moyenne et un écarttype préalablement déterminés ou fournis par le manufacturier

62
Q

Qu’est-ce que les règles de Westgard

A

Des « règles de Westgard » sont ensuite appliquées afin de détecter
des erreurs analytiques
* Excellent moyen de détecter des résultats anormaux mêmes si
ceux-ci sont toujours dans les normes
* Détectent les erreurs systématiques (dérive progressive ou
décalage brusque) et les erreurs aléatoires

Basées sur le calcul de la moyenne et de l’écart-type des résultats CQ
Notation NL
* N: nombre de données non conformes
* L: limite statistique à respecter
Exemple: règle 22ET
* Détection d’une non-conformité si 2 données (N=2) consécutives dépassent
2 écarts-types (L=2 ET) du même côté de la moyenne

détection de résultats non-conformes secondaires à une erreur analytique est importante car les résultats des échantillons de vos patients pourraient être significativement erronés
Lorsque détectés, on doit intervenir immédiatement
1. Identifier la cause
2. Procéder à une action corrective (ex: calibration/entretien de l’appareil,
formation du personnel…)
3. Analyser un 2e échantillon, documenter le dossier, aviser le propriétaire si nécessaire

63
Q

Comment valider les données en hématologie

A

procédures de CQ « non statistiques » peuvent également
être effectuées
* Validation des paramètres érythrocytaires
* Validation du comptage plaquettaire
* Examen du frottis sanguin
* Détermination des critères de révision par un professionnel medical
* Détermination des critères de réanalyse

64
Q

Comment valider les données pour paramètres érythrocytaires

A

Comparaison de l’Ht calculé (GR x VGM/10) vs mesuré (microHt)
* Maximum 3% d’écart
* Exclure une cause non analytique (ex: agglutination)
* Réanalyse, vérifier les contrôles/faire une calibration…
MicroHt est plus précis et peut être utilisé pour calculer CGMH
Au CDVUM: contrôle microHt est fait systématiquement lors d’anémie

65
Q

Comment valider les données du comptage plaquettaire

A

Toujours valider une thrombocytopénie!
1. Exclure la présence d’un caillot dans le tube
2. Exclure la présence d’amas plaquettaires au frottis
* Jugé si le comptage est « suffisant »
* Ex: présence de ³ 3 gros amas ou de nombreux petit amas
3. Faire un comptage manuel au frottis (attention: méthode imprécise!)
* Nb Plq par champs à 1000x sur 10 champs (zone de lecture)
* Calculer la moyenne et multiplier par 20 = Nb Plq x109/L
4. En cas de doute, faire un contrôle sur un nouvel échantillon!

66
Q

Qu’est-ce qu’un frotti sanguin permet de détecter?

A

lément essentiel d’une formule sanguine complète
Doit être exécuté par une personne qualifiée (technicien ou vétérinaire)
Permet de détecter:
* Pathologies de globules rouges
* Toxogramme et virage à gauche
* Cellules atypiques
* Microorganismes
* Amas plaquettaires

Est-ce une étape obligatoire?
Non si…
* Patient en santé
* Tous les paramètres sont normaux
Cependant, risque de manquer…
* Léger foyer inflammatoire (paramètres leucocytaires peuvent être « normaux »)
* Cellules/inclusions atypiques
* Microorganisme (ex: microfilaires)

67
Q

Quand refaire différentiel leucocytaire?

A

Après avoir examiné ~15 champs à 500x
* Présence de GRs nucléés
* Présence de neutrophiles immatures
* Présence de cellules atypiques
L’appareil indique un des changements suivants:
* Leucopénie/neutropénie
* Leucocytose marquée
* Lymphocytose
* Éosinophilie
100 GBs devraient être comptés
pour chaque 10x109/L de GBs

68
Q

Quoi faire en présence de GRs nuclées?

A

Nb de GRs nucléés est comptabilisé séparement des GBs
* Façon de rapporter: Nb GRn/100 GBs
Comptage leucocytaire doit être corrigé si ≥ 5 GRs nucléés
* GRs nucléés seront identifiés comme des GBs par l’appareil
Comptage leucocytaire corrigé = GB x 100
100 + GRn

69
Q

Quels sont les critères de révision

A
  1. Arrière-plan atypique
    * Matrice extracellulaire abondante (ex: croissants de protéines)
    * Possibilité de microorganisme
  2. Critères érythrocytaires
    * Présence de pathologie érythrocytaire en quantité significative
    * Réticulocytose importante
    * Anémie modérée à sévère
    * Présence de > 10 GR nucléés/100 GB

Critères leucocytaires
* Neutropénie
* Virage à gauche sévère (> 3x109/L)
* Leucocytose sévère (> 40x109/L)
* Lymphocytose (> 10x109/L)
* Monocytose (> 4x109/L)
* Éosinophilie (> 4x109/L)
* Basophilie (> 1x109/L)
* Présence d’inclusions atypiques
* Présence de cellules atypique

Critères plaquettaires
* Thrombocytose marquée (> 900x109/L)
* Thrombocytopénie (< 100x109/L)
* Présence d’inclusions atypique

70
Q

Critères de réanalyse

A
  • Résultats atypiques/incompatibles
  • Détection d’une erreur pré-analytique

Patho clinique (6 decks)

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