Aktivierte Transkription Flashcards

1
Q

Wie beeinflusst chromosomaler Ort die Transkription?

A

Nahe Kernlamina: Faktoren haben besseren Zugang

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2
Q

Loop-outs: Was? Regulation?

A

hoch-aktive Teile d. Chromatin

Co-reguliert durch Insulator-Element: Insulator bindet CTCF, Cohesin stabilisiert.

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3
Q

Bindugszustände Insulator & Aktivator/Repressor: Auswirkung?

A

Insulator zw. Enhancer & Gen -> Transkriptionsblock
Insulator interagiert mit Enhancer -> Transkriptionsblock
2 Insulatoren vor & nach Enhancer -> Transkriptionsblock
bei Repressor genau umgekehrt

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4
Q

Vorraussetzung für Binden regulatorischer Elemente

A

Chromatin ist offen/locker genung für “scannen” d. DNA

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5
Q

Wie binden Transkriptionsfaktoren?

A

Erkennen responsive Element (Bindestelle) -> Konformationsänderung & spez. Bindung
Spez. Bindung über Kontakt mit Minor-/Major-Groove d. Helix

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6
Q

In welcher Form binden Regulatoren?

A

Als Dimere: Homo-/Heterodimer, je nach Typ & responsive Element

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7
Q

Mit was können responsive Elements binden? Beispiele für REs?

A
spezifische NTs auf Leit- & Gegenstrang
Zuckerphosphatgerüst
Östrogenrezeptor: ERE
Retinsäurerezeptor: RARE
Rezeptor für Max/Mad/Myc: E-Box
Glucocordikoidrezeptor: GR
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8
Q

Primär aktivierende Faktoren?

A

keine direkte DNA-Bindung: Notch-ICD

direkte DNA-Bindung: CREB, NFkB, Tp53, cMyc

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9
Q

Primär reprimierende Faktoren?

A

direkte DNA-Bindung: Mad

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10
Q

Bifunktionale Faktoren?

A

Umschalten zw. Silencer & Enhancer

direkte DNA-Bindung: CSL, Max, nucleäre Rezeptoren

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11
Q

Aktivatordomänen: Bindungskaskade

A

Aktivator bindet an spez. Bindestelle

Co-Aktivator bindet an Aktivator & TFs/Mediator

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12
Q

Repressordomänen: Bindungskaskade

A

Repressor bindet an spez. Bindestelle

Co-Repressor bindet an Repressor

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13
Q

Co-Aktivator-Komplexe: Beispiele & Enzyme

A
NCOA1/NCOA2, p300, PCAF, CBP
Histonacetyltransferasen
Lysin-De-Methylasen
ATP-abhängige Re-modeller
Ubiquitinierung
(De-)Phosphorylierung
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14
Q

Wie wirken Co-Aktivator-Komplexe?

A

Histonmodifizierung über Acetyltransferasen
bei manchen Genen/Domänen mehrere Co-Aktivatoren benötigt -> limitierender Effekt
Trans-Repression über Glucocordikoide

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15
Q

Co-Repressor-Komplexe: Beispiele & Enzyme

A

NRIP I, SMARCA4-SMARCA2, SWI-SNF-Komplexe, NCOR2-Komplexe, NCOR1-Komplexe
Histon-De-Acetylasen
Methylasen
ATP-abhängige Re-modeller

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16
Q

Wie wirken Co-Repressor-Komplexe?

A

Vor allem an Kernhistonen

bei manchen Interaktionspartnern mehrere Co-Reppressoren benötigt -> limitierender Effekt

17
Q

Chromatin-Remodelling und Histon-Modifikation in Abhängigleit des CTD

A

Phosphorylierungsgrad d. CTD: CTD phosphoryliert -> Interaktion mit Histon-modifizierenden Proteinkomplexen

18
Q

Histone: Aufbau

A

Kernhistone: 2x [H2A, H2B, H3, H4] bilden Paare -> H3 mit H4, H2A mit H2B
enthalten Histone-Fold-Motiv
Histonschwänze: Modifizierung -> Genregulation
Repressoren

19
Q

Modifizierung d. Histonschwänze & Auswirkung?

A

Acetylierung, Methylierung & Phosphorylierung
Hypermethylierung: geschlossenes Chromatin
Hyperacetylierung & Mono-Methylierung: offenes Chromatin

20
Q

Histonmodifizierung v. aktiven Genen an Promotor, Gen-Körper, Enhancer

A

Unterschiedlich
Promotor: Trimethylierung, Acetylierung
Gen-Körper: Trimethylierung, Acetylierung
Enhancer: Monomethylierung, Acetylierung

21
Q

Histonmodifizierung v. inaktiven Genen an Promotor, Gen-Körper, Enhancer

A

ähnlich bis gleich
mehrere Trimethylierungen
repressive Marks: H3K9me3, H3K27me3

22
Q

Histon-Code: Was? Ablesen? Schlüsselrolle?

A

Gesamtheit aller covalenter Modifizierungen
Ablesen durch: PhD-Finger, Bromodomänen, Chromodomänen
Schlüsselrolle: H3/H4 tragen Hauptteil d. Modifizierungen

23
Q

Proteine mit Bromodomänen: Eigenschaften, Beispiel

A

oft Teil von TFs
hohe Affinität für acetylierte Lysylreste
Bsp.: TAFII250 -> HAT-Aktivität & Ubiquitin-Transferase bindet diacetyliertes H4

24
Q

Proteine mit Chromodomänen: Eigenschaften, Beispiel

A

nicht konserviert
hohe Affinität für methylierte Lysylreste
Bsp.: HP1 -> Dimerisiert mit HP1 über Chromo-Shadow-Domäne, bindet H3K9me3 hochselektiv, Entwicklung d. Barr-Körpers

25
Q

Proteine mit PhD-Fingern: Eigenschaften, Beispiel

A

Strukturelement Cage
erkennen di-/tri-methylierter AS-Sequenz
Bsp.: BPTF -> PhD-Finger & Bromodomäne, erkennt länge d. Abstands 2 Modifikationen

26
Q

Aktivierung nucleärer Rezeptoren (ERE, PR, GRE, etc.)

A
  1. Hormon bindet an NR, NR an HSP gebunden
  2. NR löst sich v. HSP & dimerisiert in Cytoplasma
  3. Kernimport d. NR-Homodimers
  4. NR-Dimer bindet an DNA -> Rekrutieren Co-Aktivator & RNA-Pol II
  5. mRNA-Synthese & Export -> Proteinexpression
27
Q

Aktivierung d. RXR-Heterodimer (Retinsäure)

A
  1. Kernimport d. Hormons, RXR & RAR bereits als Heterodimer an DNA
  2. Hormon bindet an RAR
  3. Co-Repressor geht von RAR ab -> Assoziieren Ca-Aktivator & RNA-Pol II
  4. mRNA-Synthese & Export -> Preoteinexpression
28
Q

Repressor & Aktivator des RXR-Heterodimers

A

Repressor: NCoR/SMRT mit assoziierten HDACs
Aktivator: p160s mit assoziiertem CBP/p300-Komplex
Switch: Konformationsänderung nach Ligandenbindung Helix 12 -> nur Aktivator kann binden

29
Q

Weshalb wird Chromatin dauerhaft reprimiert?

A

Inaktivierung d. 2. X-Chromosom in Barr-Körperchen

Inaktivierung v. Genen d. Embryogenese im Erwachsenen

30
Q

Mechanismen zur dauerhaften Reprimierung v. Chromatin

A

ATP-abhängiges Remodlling (via HDACs)
Methylieren v. Cytosin-Resten an CpG-Inseln
Painting d. DNA: MeCP2 leitet Kondensierung ein -> rekrutiert Co-Repressoren