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Microbiologia > Tomada de muestras > Flashcards

Tomada de muestras Flashcards

1
Q

Cuales son los cinco pasos para el diagnostico bacteriologico?

A

1-Decision de tomada de muestra
2-Tomada de muestra
3-Transporte de muestra
4-Procesamiento de la muestra
5-Informe e interpretación de los resultados.

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2
Q

cuales son las principales causas de la perdida de la viabilidad de la muestra?

A

disminución de la temperatura, desecación y descenso de pH.

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3
Q

Cuales son los tres conceptos básicos para tomada de muestra?

A

1-sospecha de etiologia infecciosa.
2-periodo evolutivo de la enfermedad
3-Costo beneficio del estudio.

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4
Q

Que medidas se debe tener en cuenta para la recolección de muestra? (8)

A
  1. tomada en momento optimo para su recolección
    2.Representativa del foco infeccioso
    3.Adecuada cantidad de material
    4.Recogida con materiales esteriles y normas asepticas, seguindo normas de bioseguridad
    5.Recipiente estéril y adecuado
    6.Conservada correctamente
    7.Transportada rapidamente al laboratorio
    8.Remetida con resumen de historia clinica y diagnostico presuntivo.
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5
Q

Cuales son los cuatro resultados que consta en el informe microbiológico?

A

Examen microscopico, cultivo, tipificación y antibiograma.

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6
Q

Hasta cuanto tiempo de la aparición del chancro es posible encontrar el treponema pallidum en una muestra de piel por microscopia de campo oscuro?

A

menos de 15 días

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7
Q

Qué muestras tomaria en un caso de fiebre tifoidea para identificar el Salmonella Typhy en la primera, segunda y tercera semana? Explique la patogenia asociada a cada muestra

A

primera semana hemocultivos y LCR
a partir de la segunda semana coprocultivo
tercera semana tecnicas serológicas
Ingreso por vía oral, en el intestino delgado, Salmonela (Bacilo gram negativo) ingresa al espacio subepitelial: atraves de celulas M, células dendriticas o enterocitos se multiplica en la celula hospedadora y llega a la submucosa, se multiplica en las celulas mononucleares fagociticas (hemocultivo) puede atravesar la BHE causando meningitis (LCR) llega a los foliculos linfoides en hígado y bazo. En la fase septica invade tejidos y alcanza la vesícula biliar desde la circulacion a la bilis y son excretadas al intestino (2 semana coprocultivo seriado), en la tercera semana es tiempo suficiente para el organismo producir Ac

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8
Q

Qué muestras no pueden ser refrigeradas?

A

LCR, exudados y muestras bacterianas anaerobias.

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9
Q

Qué medio no nutritivo preserva la bacteria e impide el crecimiento exagerado de otra flora no deseada? Cuanto tiempo se preserva la viabilidad de la muestra?

A

Stuart, hasta 24h.

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10
Q

Cuales son las cinco areas que deben tener una orden de analise microbiologico?

A

1.Filiación y datos administrativos: nombre y apellido, sexo, edad, medico solicitante, servicio y numero de cama, el numero de la historia clinica
2.datos clínicos: diagnostico presuntivo, comorbilidades, estado inmunitario.
3.Datos de la muestra: fecha de obtención, naturaleza del producto, exacta localización de la toma y el procedimiento utilizado en la extración
4.Terapeutica del paciente: ATB administrados, tiempo desde la ultima toma o inyeccion
5.Especificar el tipo de estudio que se desea (cultivo, tincion BAAR, tinta china, gota fresca o busqueda de un organismo determinado M. tuberculosis, Myciplasma, Crryptospiridium, Dermatofitos, etc.)

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11
Q

Que muestras convienen tomar junto a la cama del enfermo?

A

hemocultivo y LCR

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12
Q

Qué muestras es preferible tomar en el laboratorio

A

exudados genitales (chancro, trichomonas vaginales, chlamydia, ureplasma)

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13
Q

Porque es necesario hacer la antisepsia de la piel?

A

Porque permite la eliminacion de los germenes que son de la flora normal y de aquellos que transitoriamente pueden colonizarla.

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14
Q

Cuando se debe tomar una muestra de un paciente que cursa un tratamiento con ATB?

A

justo antes de la administracion del ATB o tras 48h de la retirada del mismo, indicandolo en la orden de estudio.

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15
Q

Cuales muestras nunca deben ser refrigeradas?

A

LCR y sangre

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16
Q

Que informaciones se debe aclarar en el transporte de muestra?

A

1.Tipo de muestra
2.Identidad de la persona a quien pertenece
3.Sevicio o persona que solicita el estudio

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17
Q

Cual la diferencia entre bacteriemia y sepsis?

A

Bacteriemia es la presencia de bacterias en la sangre, se produce cuando un MO invade el torrente sanguineo y se multiplica a un ritmo que supera la capacidad del organismo de eliminarlo. la sepsis es la respuesta inmunitaria grave y desregulada del cuerpo ante a una inflamación, es decir el sindrome clinico que se manifesta y puede atingir multiples órganos.

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18
Q

Cuales son los 5 más frecuentes focos de bacteriemia?

A

1.tracto genitourinario
2.abcesos
3.heridas quirúrgicas
4.vía biliar
5.cateteres intravasculares
25% foco desconocido

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19
Q

Cual infección es más frecuentes gram positivos o negativos? cuales son los géneros más frecuentes?

A

gram positivos, staphylococcus, Streptococcus y enterococcus.

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20
Q

4 momentos que se debe realizarse los hemocultivos.

A

1.Antes de la administracion de la terapia antimicrobiana sistemica.
2.sospecha de sepsis, infeciones localizadas que pueden complicarse con bacteriemia
3..Ante el diagnostico clinico de fiebre de origen desconocida
4. casos de leucopenia, leucocitosis o trombopenia no relacionados a procesos hematológicos.

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21
Q

Cuales son los dos momentos optimos para la extraccion de hemocultivos?

A

Antes del inicio de los escalafrios o lo antes posible despues del inicio de la fiebre y los escalafrios.

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22
Q

En una tomada de muestra de hemocultivo cite 4 microoganismos contaminantes?

A

Staphyloscoccus coagulasa negativa, Bacillus ssp, Propionibacterium acnes, Corynebacterium ssp.

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23
Q

cual es la cantidad de muestras minima de un hemocultivo y cuando se considera positivo?

A

minimo dos y es positivo cuando un mismo germen se aisla en dos muestras.

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24
Q

en un hemocultivo que volumen de sangre se introduce en cada frasco de (anaerobico o aerobico)?

A

10-15ml en adultos y 1-5ml en niños y neonatos. Proporcion 1:10

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25
Q

Cual porcentaje de sangre que se retira de un neonato en comparación al su volumen total de sangre?

A

4,5%

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26
Q

Cual temperatura de incubacion del hemocultivo?

A

35-37C

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27
Q

Cual el tiempo maximo que una muestra de sangre puede permanecer a temperatura ambiente sin antes ser introducida en el sistema?

A

18h

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28
Q

Cual material necesario para un hemocultivo? (7)

A

1.Frasco de hemocultivo
2.lazo de goma
3.jeringa y agujas de punción intravenosa
4.Gasas esteriles
5.Guantes de latex esteriles, barbijo y antiparras
6.alcohol etilico al 70
7. Solución iodada

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29
Q

Cuales son los 11 pasos para la obtención del hemocultivo?

A

1.Lavado antiseptico de manos
2.Retirar tampones externos de los frascos
3.Desinfectar los tampones de goma con alcohol iodado o con iodoforo, dajandolo secar 1min.
4.Colocar el lazo de goma en el brazo del px.
5.Localizar por palpación la vena que se va puncionar (una vena distinta para cada extracción).
6.Desinfectar con alcohol al 70 una zona de piel de unos 10cm de diámetro. Se comenzará por el centro y se irán haciendo círculos concentricos hacia el exterior, dejando actuar por 30s,
7.Repetir el paso anterior pero con una solución iodada (tintura de yodo 1-2%) por 30 s o povidona iodada al 10 por 1min.
8.Colocarse guantes esteriles
9.Extraer sin tocar el campo desinfectado
10.Introducir la sangre en los frascos evitando que entre aire en el frasco para cultivo en anaerobiosis. mover los frascos para que la sangre y el medio de cultivo se mezclen.
11.Introducir los frascos en una estufa de 37C.

30
Q

Cuales son las tecnicas de tomadas de muestra de orina?

A

1.tecnica del choro medio
2.punción vesical
3.punción de sonda vesical

31
Q

4 condiciones previas de la tecnica del chorro medio.

A
  1. Primera orina de la mañana (más significativa por inactividad miccional)
    2.si no 3h retención
    3.no administrar ATB 72h antes
  2. 5 a 10ml de orina
32
Q

Cual material necesario para muestra de orina por tecnica de chorro medio? (4)

A

1.Gasas esteriles
2.jabón neutro
3.Recipiente de boca ancha con tapa rosa hermetico y esteril
4. Bolsa de plastico o colector esteril para niños pequeños que no controlan la micción.

33
Q

6 Pasos para la recoleccion del choro medio para mujeres.

A

1.Lavar las manos con agua y jabon y enjuagará con agua y las secará con una toalla limpia.
2.Limpiar la zona genitourinaria, tomando una gasa enjabonada y procediendo al lavado de la vulva, pasandola de delante hacia atras y repetiendo 4 veces el proceso.
3.enjuaga con agua hervida y enfriada o solucion fisiologica esteril. no usar jabones o desinfectantes.
4. mujeres adultas poner tampon vaginal para evitar la contaminacion de la flora vaginal separar labios mayores y menores en todo momento de recogido de orina.
5.desechar los primeiros 20-25ml sin interrumpir la miccion se recogerá el resto de la miccion en un frasco esteril, rotulado de boca ancha.
6.frasco no debe tomar contacto con pierna, vulva o ropa ni los dedos tocar el borde o su superficie interna.

34
Q

5 Pasos para la recoleccion del choro medio para mujeres.

A

1.Lavado de las manos con agua y jabon
2.Retraer completamente el prepucio, que se mantendrá así por todo el recogido de la orina.
3. limpiar glande con jabon neutro
4.eliminar el jabon enjuagandolo con agua hervida y enfriada
5.se pedirá al px que orine desechando los primero 20-25ml para recogerse el resto de la orina en el recipiente esteril.

35
Q

4 Pasos para la recoleccion del choro medio para niños.

A

1.Lavado cuidadoso de genitales y area perineal
2.Colocar bolsa, plastico o coletor.
3.Vigilar la bolsa a cad 30 min y tan pronto como el niño haya orinado, deben retirarse y enviarse al laboratorio.
4.si la micción no se ha realizado en una hora, se repite la operación con una nueva bolsa.

36
Q

Cuanto tiempo una muestra de orina puede se conservar sin ser refrigerada? y hasta cuanto tiempo se puede mantener refrigerada?

A

1h/48h

37
Q

Cual es la temperatura de refrigeración de la orina?

A

4-8C

38
Q

Describa el proceso de punción vesical. (7)

A

1.Asepsia y desinfección del local.
2.anestesia local
3. se punciona hasta 1,5cm de la sinfisis pubiana en línea media.
4.px en decubito supino.
5.jeringa de 10ml con aguja larga de calibre 19.
6.se envia al laboratorio con la aguja pinchada en el tampon de goma esteril.
7.Indicar en la orden procedencia de la muestra y tecnica empleada.

39
Q

Para que px está indicado la punción vesical? (4)

A

1.px con sospecha de infección urinaria por anaerobios
2.RN
3.px que no controlan esfínteres
4.px con infección urinaria que por urocultivo de otras técnicas son de bajos recuentos o dudosa interpretación.

40
Q

Que material es necesario para obtener una muestra de orina por punción de sonda vesical?

A

1.Gasas esteriles
2.Alcohol 70 o solucción iodada
3.Jeringa o aguja
4.Recipiente estéril

41
Q

Describa el procedimiento para obtener la muestra por punción vesical.

A

1.cambiar la sonda por una nueva estéril.
2.clampear la sonda en extremo distal y esperar que se llene de orina,
3. descontaminar con alcohol o iodo povidona la zona externa de la sonda
4. punzar con jeringa y aguja esteril y aspirar 5-10ml
5. poner orina en frasco estéril y remitir inmediatamente al laboratorio

42
Q

Cual cantidad de colonias debe considerarse como una muestra de orina contaminada?

A

10^5 UFC/ml de una sola especie o
menores o igual 10^4 o
hallazo de más de una colonia de distintas especies bacterianas

43
Q

Cuando se realiza una tomada de muestra de LCR?

A

Sospecha de meningitis o fiebre tifoidea.

44
Q

Donde y qué elementos de barrera son necesarios para realizar una tomada de muestra de LCR?

A

Se realiza en el quirofano y necesita camisolin, guantes esteriles, cofia, barbijo y antiparras. Riesgo de salpicaduras por hipertensión endocraneana.

45
Q

Describa la realización de una tomada de LCR.

A

1.tecnica aseptica y descontaminación de la región lumbar del 4 o 5 espacio intervertebral. antiasepsia de la piel de forma centrifuga y en 3 tiempos.
2. muestra se recoletará en 2 tubos esteriles, uno para el examen fisico-químico y otro estudio microbiológico.
3.Puede extraerse material para un tercer tubo para estudio adicional como virológico, molecular o anatopatologico.

46
Q

Que cantidad de LCR se debe remitir por tubo?

A

1,5ml

47
Q

Temperatura de conservación de LCR

A

37C para estudio bacteriológico
otros estudios se pueden refrigerarse.

48
Q

Que tipos de muestras se puede tomar del tracto respiratorio inferior? (4)

A

1.esputo
2.jugo gastrico
3.aspirado traqueobronquial simple
4.lavado bronquioalveolar

49
Q

Describa la tomada de esputo.

A

1.primera expectoración de la mañana, px en ayunas, dientes cepillados y gargarismos con agua oxigenada de 10 volúmenes diluida (una cuchara en medio vaso de agua) o soluccion de bicabornato de sodio (una cucharita en medio vaso de água)
2.Frasco esteril de boca ancha tomar la muestra 2 o 3 veces para favorecer la expectoración más profunda posible.
3. volumen adecuado es 2 a 10ml (si es insuficiente nebulización con 15ml solución fisiologica esteril por 10 min)
4.Para bacioloscopia de BAAR y cultivo mínimo 2 muestras especificando tinción de Ziehl Neelsen y cultivo para micobacterias en caso de tuberculosis sino hará solamente el gram y cultivo de germenes comunes.
5.enviar al laboratorio antes de 2h sino conservar a 4C.

50
Q

Para que pacientes está indicado la tomada de muestra del jugo gastrico? y cuando se indica.

A

niños pequeños o px que no expectoran y tragan sus esputos. En período de ayuno. cuando la muestra presenta bajo numero de microorganismo resistentes al ph gastrico como las micobacterias.

51
Q

Describa la tomada de muestra broncoalveolar.

A

consiste en instilación y aspiración de la solución fisiologica por un broncoscopio de un subsegmento pulmonar.
1.se instila el liquido en alicuotas de 20 a 50ml con jeringa.
2.se aspira con la propia jeringa (o aspiracion mecanica suave de 5cm de presion de agua varia para logra maxima cantidad de fluido sin colapsar la via y provocar fusion hemorragica submucosa)
3.El liquido recuperado (no superar 10ml en px pediatrico) (40 a 50% del intilado) debe ser translucido u opalecente a depender de la cantidad celular en suspención. si es rosa o marron indica hemorragia alveolar difusa.
4.Primera alicuota (muestra bronquial) es representativa de la celularidad, otras (muestra alveolar), segunda y tercera muestras ideales para cultivos cuantitativos. una debe enviarse al lab de anatopatologia para estudios histopatologicos.
5.Se verte el fluido en un frasco de plastico o vidrio siliconado para retardar adherencia celular.
6.Refrigerarse 4C (no más de 2h), si es enviada a otro centro debe resuspender la muestra en solucion buffer salina (de Hanks) en tubos de 50ml y refrigerarla.

51
Q

el aspirado traqueobronquial simple, qué pacientes está indicado, describa el procedimiento.

A

está indicado a niños que no expectoran, se obtiene por una sonda de aspiración y se recolecta en un tubo esteril.

52
Q

Cuando una mustras de secrecion de via aerea inferior es considerada muy diluida.

A

Cuando no presenta macrofagos.
La presencia de macrofagos es normal, con neutrofilos indica respuesta del huesped a la infección. La presencia de neutrofilos no es especifica de neumonia.

52
Q

Cuando una muestra de secreciones respiratorias de vías inferior es considerada contaminada?

A

porcentaje de celulas escamosas mayor o igual al 1% con 200-300 elementos entre macrofagos, celulas escamosas y neutrofilos. o en el cultivo se encuentran 10^4 ufc/ml de una sola especie.
(Presencia de celulas ciliadas).

53
Q

En la muestra de secrección de via aerea superior cual la porcentaje de celulas fagociticas con bacterias intracelulares?

A

2-10%

54
Q

Cuando una muestra de lavado broncoalveolar es considerada representativa? segun celulas escamosas y cultivo cuantitativo?

A

menor 1% de celulas epiteliales escamosas con 300 elementos.
10^4 cultivo cuantitativo en el caso de infección.

55
Q

Describa el procedimiento de exudado de la fauces.

A
  1. indicar el px que abra la boca, saque la lengua
    2.con baja lengua esteril y buena iluminación
  2. frotar con hisotopo esteril las fauces, amigdalas y toda area inflamada, ulceracion, exudado o pseudomembranas.
    (no se debe tocar el hisopo la lengua, carrillos, labios o saliva no se utiliza de agodon porque inhibe crecimiento de B.pertussis)
    4.Se pone el hisopo en medio de transporte
    5.Se conserva a temperatura ambiente por 24h. Se pueden colocar por algunas horas en heladera.
56
Q

Cite tres microorganismos que pueden se aislados en un exudado nasofaríngeo?

A

1.Bordetella Pertussis
2.Corynebacterium diphteriae (difteria)
3.Neisseria Meningitidis

57
Q

Describa la tomada de muestra de exudado nasofaringeo.

A

1.Introduzir un especulo nasal
2.introduzir hisopo esteril humedecido en solución fisologica
3.frotar nasofaringe y colocarlo en medio de transporte.
4.debe mantenerse a temperatura ambiente.

58
Q

Qué microoganismos suelen detectar con tomada de muestra de fosas nasales?

A

Staphylococcus aureus o Streptococcus ssp.

59
Q

Describa la tomada de muestra de secreción de fosas nasales.

A

Se introduce el hisopo esteril humedecido con solución fisiológica 2cm en la fosa nasal, se rota suavemente y se coloca en el medio de transporte.
se puede dejar a temperatura ambiente no más de 24h.

60
Q

Describa el proceso de tomada de muestra de heridas.

A

1.higienizar con abundante solución fisiologica esteril.
2.punción-aspiracion con jeringa y aguja de la zona más profunda de la herida (si no es posible hisopo)
3. remitir la jeringa o isopado al laboratorio.

61
Q

Como se debe conservar muestras provenientes de heridas profundas y superficiales?

A

Profundas temperatura ambiente
superficiales heladera 15-25 si es procesada en 2 horas o 2-8 sino y más de 24h en medios de stuart.

62
Q

Como se realiza un exudado uretral?

A

1.primer exudado matinal del px.
2.se limpia la zona con gasa esteril humedecida en solución fisiologica.
3.introduce en meato urinario un ansa esteril
4.se realiza extendidos en portaobjeto que llegara al laboratorio
5.se repite con hisopo esteril humedecido en solución fisiológica esteril rotando segundos
6.se coloca en medio de transpote o siembra en medios de cultivos
7.en el caso de secreción escasa se debe hacer la higiene externa y tomar el primer choro miccional 10ml desechar el resto.
8.Estas muestras no se refrigeran y se remeten inmediatamente al laboratorio.

63
Q

Describa la tomada de muestra de exudado vaginal.

A

1.se coloca la px en posición ginecológica.
2.se higieniza genitales externos con solucion fisiológica.
3.se coloca el especulo (sin lubricante ni desinfectante) a lo sumo humedecido con agua tibia
4.una vez visualizado el endocervix se extrae tampon mucoso con una gasa y pinza ginecologica.
5.tomam dos muestras de hisopo esteril: una del fondo del saco vaginal y otra del endocervix.
6.se ponen en medio de transporte adecuado y se envían al laboratorio el más rápido posible.

64
Q

Cuales son las condiciones previas para una tomada de muestras de heces?

A

1.antes de administración de antimicrobianos y diarreicos
2.evitar antiacidos, laxantes oleosos, bario y bismuto (examen radiologico digestivo).
3.dieta sin residuos para estudios parasitologicos.

65
Q

Cual material necesario para coprocultivo?

A

1.Recipiende limpio (no necesario esteril) de boca ancha
2.recipiente de boca ancha y cierre hermetico para enviar la muestra, espatula.

66
Q

Describa momento oportuno, recipiente, tecnicas de conservación para +18h del hemocultivo.

A

Cerca del periodo febril, dos frascos aerobio y anaerobio, estufa 37C.
Punción lumbar: -, 3 tubos: fisicoquimico, microbiologico, adicional. rapidamente laboratorio.

67
Q

Describa donde se realiza, recipiente, tecnicas de conservación para LCR. Cuales son las diferencias entre los aspectos de un LCR normal y uno con meningitis bacteriana.

A

quirofano, en el 4-5 espacio intervertebral asepsia 3 tiempos. 3 tubos: fisicoquimico, microbiologico y adicional. 37C.
LCR normal: claro (cristal de roca) (meningitis bac: turbio)
glucosa 35-100mg/dl (meningitis bac: disminui)
proteinas menos de 45mg/dl, (*meningitis bac aumenta)
rto celular menos 10cel/mm3,
Predominio de celulas mononuclear (meningitis bac: PMN)

68
Q

mencione 3 tecnicas de extracción de orina, indicaciones al paciente, materiales, conservación para +1h

A

tecnica del choro medio, punción vesical y punsión de sonda vesical.
La tecnica del choro medio utiliza recipiente esteril de boca ancha, primera orina de la mañana, limpiar manos y la zona con agua hervida y enfriada, separar labios menores, tampón vaginal o extender la zona del prepucio desechar primeros 20-25ml de orina.
recipiente hermetico esteril, tapa rosca y boca ancha.
heladera 4-8C

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