Técnicas de DPN Flashcards

1
Q

Quais as técnicas de DPN e o que permite diagnosticar cada uma?

A
  • Amniocentese - anormalias cromossomais
  • Biopsia das vilosidades coriônicas - analise de enzimas e DNA, anomalias cromossomais.
  • Ultrassom - localização da placenta e detecção de malformações estruturais (membros, tubo neural, coração, entre outros)
  • Recolha de sangue de amostras fetais - talassemia e doenças relacionadas; outras doenças hematológicas e metabólicas
  • Testes bioquímicos no soro materno - β-hCG e PAPP-A (sindrome de Down entre as 11 e 14 semanas) e a-fetoproteina (tubos neurais defeituosos e sindrome de Down a partir das 14 semanas)
  • Análise de células fetais na circulação materna - biologia molecular (qPCR)
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2
Q

Quando se faz uma amniocentese?

A

Por ter um risco de aborto (0,5%), apenas se faz depois de dois testes bioquimicos positivos (β-hCG e PAPP-A) e uma ecografia positiva

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3
Q

Em que consiste a aminocentese?

A

Recolha de liquido fetal que contem células fetais (de onde depois se retira o DNA para fazer testes)

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4
Q

A amniocentese considera-se uma tecnica de diagnostico?

A

Não. A técnica em si apenas permite recolher as células, de onde depois e retirado o DNA para fazer os testes, como o de cariótipo e esse sim e um teste de diagnostico.

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5
Q

Apos a amniocentese, as células fetais são separadas do liquido amniótico através de _________.

A

Centrifugação

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6
Q

Apos a centrifugação do liquido amniótico, forma-se um pellet e um sobrenadante. Que técnicas podem ser realizadas a partir de cada um?

A

Sobrenadante: testes bioquímicos (ex: alfa-fetoproteina)

Pellet pode ter dois destinos:
* cultura de células: analise cromossomais (cariótipo) e DNA
* sem cultura de células: analise direta do DNA (FISH e PCR)

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7
Q

A biopsia das vilosidades corionicas realiza-se numa fase mais ________ que a amniocentese.

A

Inicial. O teste pode ser feito ate as 10 semanas.

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8
Q

No DPN, a citogenetica permite detetar _____________ e a biologia molecular permite detetar ___________.

A
  • anormalias cromossomais (que podem afetar vários genes)
  • risco de uma alteração genética num gene/proteína
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9
Q

Fazer uma analise direta do DNA por FISH ou PCR pode ser mais vantajoso por ser mais _________ do que analise de cariótipo através de uma cultura de células.

A

Rápido - resultados em 24-48 horas ao contrario da cultura de células que pode demorar entre 1 e 3 semanas

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10
Q

Pode-se analisar o cariótipo através de vilosidades coriônicas?

A

Não, por não existir material suficiente

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11
Q

Protocolo para analise de cariótipo:

A
  1. Recolha de sangue venoso
  2. Adiçao de fitohemaglutinina para estimular a divisao de linfocitos T
  3. Cultura de celulas a 37ºC durante 3 dias
  4. Adicionar colchichina (que vai bloquear a divisao das celulas na metafase, fase onde os cromossomas se encontram mais condensados)
  5. Adicionar uma soluçao salina, para provocar a lise das celulas, libertando o seu conteudo
  6. Fixar as celulas
  7. Espalhar as celulas numa lamina por dropping
  8. Digerir conteudo proteico com tripsina e colorar com Giemsa
  9. Analisar os cromossomas e desenhar o cariotipo.
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12
Q

Caracterizar o bandeamento G (Giemsa):

A

Utilizaçao de um molécula que se liga a zonas ricas em GC (regioes com transcricidade elevada, correspondendo a eucromatina/genes) Assim, as zonas escuras correspondem a zonas gene-rich e as zonas claras a gene-poor.

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13
Q

Caracterizar o bandeamento Q (quinacrina):

A

Marcar as regiões CG com fluorescencia.

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14
Q

O bandamento Q, em relação ao bandeamento G, é uma técnica:

A

Mais cara mas mais sensível

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15
Q

Caracterizar o bandeamento R (Reverse):

A

Os cromossomas sao desnaturados por aquecimento e depois cora-se com Giemsa. Por ja nao existirem pontes de hidrogênio, vao ser coradas as zonas AT

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16
Q

Quando se realiza o bandeamento R?

A

Quando existem duvidas relativamente ao bandeamento G

17
Q

Caracteriza o bandeamento C:

A

Tratamento de cromossomas com ácido seguido de base antes da adição do Giemsa. O centrómero e as regiões heterocromáticas que contêm sequências repetitivas são coradas preferencialmente.

18
Q

Porque se deve analisar o cariótipo de 10 a 15 celulas?

A

Para verificar se estamos perante uma situação de mosaicismo. Se se suspeitar de mosaicismo devem ser analisadas pelos menos 30 células.

19
Q

O que se pode fazer para aumentar a resolução das bandas?

A

Analisar os cromossomas ligeiramente antes da metafase (na profase ou na pro-metafase). Para isso, adiciona-se metotroxano ou timidina seguido de acido fólico e colchichina.

20
Q

Qual a base da técnica FISH?

A

Utilização de sondas fluorescentes que hibridam numa zona especifica cromossomal, permitindo identificar e localizar sequencias.

21
Q

Passos básicos para a técnica do FISH?

A
  1. Desnaturar DNA
  2. Hibridar as sondas
  3. Microscopia de fluorescencia
22
Q

Tipos de sondas (geral)

A
  1. Corantes (Painting) - coram o cromossoma inteiro
  2. centromericas (coram o centromero)
  3. especificas para sequencia
  4. telomericas
23
Q

Para que se utilizam as sondas painting?

A
  • Analise numérica de cromossomas (detetar trissomias)
  • Analisar translocações entre cromossomas
  • Analisar perda de cromossomas (perda de um X ou Y)
  • Identificar cromossomas derivativos (cromossomas que possuem material genético de outro cromossoma)
24
Q

A combinaçao de uma sonda especifica a um sequencia com uma sonda que identifique o cromossoma permitem identificar:

A
  • deleções
  • duplicações
  • translocações
  • inversões

Ex: sindrome Prader-Willi/Angelman, Williams e DiGeorge

25
Q

Tipos de combinação de sondas especificas de sequencia:

A
  • single fusion: sondas com cores diferentes para cada gene (que estão em cromossomas diferentes) envolvido na translocação; se ocorrer translocação, as sondas irão surgir no mesmo cromossoma
  • break apart: sondas com cores diferentes para as duas partes de um mesmo gene envolvido na translocação; se ocorrer translocação, as duas sondas afastam-se
26
Q

Utilizam-se sondas telomericas para identificar casos de:

A

Atraso mental idiopatico

27
Q

Porque foi desenvolvida CGH ( Comparative Genomic Hibridation)

A

Para superar a dificuldade de obter metáfases de boa qualidade em tumores sólidos.

28
Q

Descreve a técnica do CGH:

A

O DNA tumoral marcado com vermelho (Cy5) e o DNA normal marcado com verde (Cy3). Depois, numa lamina de vidro, são hibridados com cromossomas normais em metáfase, onde vão competir pela ligação aos mesmos.

29
Q

Como interpretar os resultados obtidos de CGH:

A
  • se a amostra tumoral tem mais DNA que o controlo (resultante de duplicações) há um aumento da intensidade da fluorescência vermelha
  • se o DNA tumoral tiver deleções, há mais fluorescência verde
  • se houver a mesma quantidade de DNA a fluorescência resultante é a mistura das duas – amarela (tumor sem alteração nesse gene)
30
Q

Aplicação de CGH:

A

Diagnostico pré-natal a partir de uma única célula (depois do DNA ser amplificado - são necessárias várias cópias).

31
Q

Limitações de CGH:

A
  • Resolução baixa: só deteta perdas superiores a 10 Mb e ganhos superiores a 2 Mb
  • Limitações técnicas - utilização de cromossomas
32
Q

Técnica de array-CGH:

A

Semelhante ao CGH mas utiliza-se uma placa com poços, onde em cada um dos poços estao oligonucleotidos das regioes que queremos estudar do genoma, com que vao hibridar as regioes de DNA tumoral e normal marcados com os fluoroforos (vermelho e verde, respetivamente)

33
Q

Quais as desvantagens destas ultimas técnicas (CGH e array-CGH)?

A

Requerem leitores de fluorescência e mais do que uma copia da região para garantir que o resultado é fiável. Para além disso, tem que se garantir que o DNA da amostra esta puro.