serie 1 Flashcards

1
Q

Génothèque d’ADN génomique

A
  • Pour les gènes uniques, il y a 1 copie par génome haploïde. Ils représentent environ 3% du génome humain.
  • D’autres éléments génétiques comme les transposons peuvent être retrouvés en plusieurs copies par génome. En fait les éléments répétés représentent plus de 50% du génome humain.
  • La taille des gènes uniques varie grandement, et peut atteindre 10,000 à 100,000 pb. Ceci est dû au fait que la plupart des gènes humains sont fragmentés (exon/intron).
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2
Q

Génothèque d’ADNc (ARNm)

A
  • Les ARNm issus de la transcription des gènes uniques ont une taille moyenne de 1,000 nt, suite à l’élimination des introns.
  • Bien que leur gène soit présent dans le génome de toutes les cellules, l’expression des ARNm peut être différente selon les tissus.
  • De plus, suite à un épissage alternatif, plusieurs isoformes peuvent être générés, à partir d’un gène unique .
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3
Q

Construction d’une molécule d’ADN recombinant.

A

Un fragment de restriction est inséré dans la coupure complémentaire faite par enzyme de restriction dans le vecteur de clonage. Les bouts cohésifs du vecteur et de l’ADN exogène s’associent et sont ensuite liés de façon covalente par la ligase, pour donner un ADN chimérique.

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4
Q

Domaines conservés, fonctionnels Famille de protéines

A

L’analyse de la séquence des protéines a révélé que les protéines pouvaient avoir une signature qui reflète la fonction de la protéine. En effet, les protéines peuvent montrer des régions qui ont une séquence similaire à d’autres protéines qui ont des fonctions similaires. On peut donc prévoir des domaines fonctionnels de la protéine.

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5
Q

Désoxyribonucléotides

A

dATP, dGTP, dCTP,TTP  Synthèse de l’ADN

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6
Q

Ribonucléotides

A

ATP, GTP, CTP, UTP  Synthèse des ARN
 Régulation de voies métaboliques (ATP, GTP)  Signalisation hormonale (AMPc, GMPc)
 Co-enzymes (nucléotides adénines)

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7
Q

Provenance des nucléotides

A

Dans les cellules, les nucléotides peuvent provenir d’au moins 3 sources:
1- la dégradation des ARN et ADN
2- la récupération des bases libres par liaison à PRPP
3- le métabolisme

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8
Q

La structure de Watson-Crick : l’ADN-B

A

L’ADN B est considéré comme la forme native de l’ADN. L’ADN B forme une spirale de pas à droite, ce qui forme une double hélice d’un diamètre d’environ 20Å. L’hélice a un pas de 10 paires de bases étalé sur 34Å. Le plan constitué par les bases est pratiquement perpendiculaire à l’axe de l’hélice. Chaque base est reliée par pont hydrogène à la base de la chaîne opposée, selon la règle de l’appariement complémentaire des bases (A - T et G - C). L’ADN B possède deux sillons extérieurs asymétriques.

En résumé:
-Les deux brins sont enroulés en une spirale droite autour d’un axe commun
-Les brins sont anti-parallèles
- Les bases sont au centre et l’ossature phosphodiester est en serpentin à la périphérie
-Les bases sont perpendiculaires à l’axe de l’hélice - Appariement des bases par ponts hydrogènes
- L’ADN dévie de la structure idéale

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9
Q

L’ADN - A

A

Lorsque l’humidité descend, l’ADN-B subit un changement de conformation réversible vers une forme appelée ADN-A. L’ADN-A forme une hélice de pas à droite plus large et plus aplatie que l’ADN-B. Il n’a été détecté jusqu’ici que dans une seule préparation biologique, soit lors de la sporulation.
Les paires de bases sont inclinées de 20° par rapport à l’axe de l’hélice.

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10
Q

L’ADN-Z

A
  • L’ADN-Z forme une hélice de pas à gauche. L’hélice a 12 pb par tour et un pas de 45Å. La formation locale de structure de type Z dans l’ADN agirait comme un déclic pouvant modifier l’expression des gènes.
  • Les paires de bases de l’ADN Z ont basculé de 180° par rapport à celles de l’ADN B à la suite de changement de conformation.
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11
Q

La liaison d’une protéine à l’ADN peut modifier la structure de l’ADN

A

Le complexe TBP-ADN.

TBP reconnait le sillon mineur de l’ADN au niveau de la séquence TATA . Ceci est facilité par le fait que les paires A:T sont plus aisément déformables pour permettre l’élargissement initial du sillon mineur.
En se liant à l’ADN, TBP plie l’ADN d’un angle d’environ 80°.

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12
Q

Motifs retrouvés dans la structure de l’ARN

A

1- La formation de tige double-brin peut se former par complémentarité de bases. La partie simple brin qui les sépare forme alors différentes structures: structures en tige-boucle, en hernie et en boucle.
2- L’appariement de 3 segments complémentaires non contigus du même ARN permet la formation de pseudo-nœuds.
3- Des paires de bases additionnelles sont permises (G:U) de même que des triplets de bases U:A:U.
4- Des tétraboucles sont visibles dans lesquelles les bases sont empilées pour stabiliser une structure particulière.

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13
Q

Structure de l’ARN double-brin

A

L’ARN peut former des tiges double-brin par appariement de bases. La structure s’apparente à celle de l’ADN A.

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14
Q

L’ARN de transfert

A

L’ARN n’est pas une molécule linéaire nue. L’ARN forme des régions double-brin par appariement de nucléotides intramoléculaire. Ceci lui procure une structure tridimensionnelle particulière qui assure sa fonction biologique.
Les régions en tige-boucle cruciales dans la structure de l’ARNt sont indiquées.
-Tous les ARNt présentent à leur extrémité 3’ la séquence 5’-CCA-3’. La base précédente permet souvent la reconnaissance spécifique de l’ARNt par les enzymes qui fixent l’acide aminé.
- L’extrémité 3’ de l’ARNt est le site de fixation de l’acide aminé correspondant.
- La tige de l’anticodon permet l’appariement avec le codon de l’ARNm. Bien faire attention au sens de la lecture des bases (toujours lire dans le sens 5’ vers 3’). A cause de la complémentarité antiparallèle des brins d’ARN, notez que la séquence du codon de l’ARNm est dessinée de 3’ vers 5’ (puisque l’anticodon est dessiné de 5’ vers 3’). La séquence du codon est bien CUG.

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15
Q

L’ARN ribosomique

A

Structures secondaire et tridimensionnelle de l’ARN ribosomique 16S. L’ARN peut s’associer à un grand nombre de protéines.

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16
Q

Des ARN non-codant peuvent contrôler l’expression des ARNm
a) Les sARN chez les bactéries

A

Activation et répression de la traduction par les sARN (small RNA) chez les bactéries. Les sARN peuvent agir en trans pour se pairer à des séquences complémentaires sur l’ARNm et interférer avec l’association de séquences et/ou de protéines régulatrices.
a) Le sARN se paire à l’extrémité 5’ de l’ARNm, ce qui libère la région de reconnaissance du ribosome et permet la traduction. b) Le sARN se paire à l’extrémité 5’ de l’ARNm pour masquer le site de reconnaissance du ribosome, inhibant ainsi la traduction.

17
Q

Des ARN non-codant peuvent contrôler l’expression des ARNm
b) Les miARN chez les eucaryotes

A

La formation des miARN à partir du gène dans le noyau. Le transcrit primaire génère le pri-miARN dans le noyau. Celui-ci est coupé par l’endonucléase Drosha. Le pre-miARN formé migre dans le cytoplasme où il sera coupé par l’endonucléase Dicer. Le court fragment double-brin de ≈21 bp sera incorporé dans le complexe RISC pour s’associer à l’ARNm cible. L’ARNm ciblé sera soit dégradé, soit inhibé au niveau de la traduction.

-Les miARNs jouent des rôles importants dans la cellule. Ils contrôlent l’expression de plusieurs ARNm dont les fonctions sont essentielles au fonctionnement de la cellule.
Dans le contrôle de la prolifération cellulaire, les miRNAs balancent l’expression de gènes qui favorisent la division cellulaire (oncogènes) et ceux qui l’inhibent (suppresseurs de tumeur). Cet équilibre permet la division contrôlée (normale) des cellules.

  • La dérégulation de l’expression de miRNA
    peut donc entraîner l’expression d’oncogènes ou l’inhibition traductionnelle de suppresseur de tumeurs.
    Dans beaucoup de cancers, l’expression de miARN qui normalement inhibent des oncogènes est réduite, ce qui entraîne l’expression de l’oncogène et le développement de tumeurs.
18
Q

La structure tertiaire de l’ARN peut moduler la fonction de la molécule
c) Les aptamères

A

Les ribocommutateurs peuvent réguler l’initiation de la transcription.

19
Q

Structure d’un ARN messager

A

Avantages:
3- ARNm
a) Structure d’un ARN messager
- protège contre la dégradation
- forme des domaines fonctionnels
- lie des protéines spécifiques
- permet une régulation post-transcriptionnelle

Fonctions:
- régulation de la traduction
- régulation de la dégradation
- régulation du transport
- régulation de la localisation
- regroupement d’ARNm fonctionnellement reliés

Des séquences et/ou structures tridimensionnelles dans l’ARNm permettent de lier des protéines de régulation et/ou créer des domaines fonctionnels.

20
Q

ARNm, Théorie du régulon fonctionnel

A

Chez les procaryotes, des protéines fonctionnellement reliées sont synthétisées à partir d’un arrangement polycistronique par lequel un ARNm codant pour plusieurs protéines différentes sert à la synthèse de ces protéines de façon coordonnée.
Chez les eucaryotes, les gènes sont monocistroniques. Une régulation post-transcriptionnelle est donc élaborée pour coordonner l’expression de protéines impliquées dans des fonctions communes. Des protéines liant l’ARNm permettent de reconnaître et de regrouper des ARNm fonctionnellement reliés et d’assurer leur expression coordonnée selon les besoins de la cellule.

21
Q

Hypothèse de l’ARNce

A

Selon l’hypothèse de l’ARN compétitif (ARNce), non seulement les miARN régulent l’expression des ARNm mais aussi les ARNm contrôlent la fonction des miARN.

Selon l’hypothèse de l’ARNce, la surexpression d’un ARNm (par exemple suite à une activation transcriptionnelle), augmente la quantité de cet ARNm et pare conséquent le nombre de sites de fixation pour un miARN. Ceci peut conduire à la dérépression d’un autre ARNm qui contiendrait les mêmes sites de fixation de miARN. A l’inverse, la sous-expression d’un ARNm pourrait mener à l’hyper-répression d’un autre ARNm suite à l’augmentation du nombre de miARN disponibles.

22
Q

Localisation de l’ARNm et traduction locale

A

-Division asymétrique
-Motilité cellulaire
-Établissement des axes embryonnaires -Apprentissage
-Mémoire à long terme

Le transport « silencieux » de l’ARNm,
sa localisation dans des sous-domaines cellulaires et sa traduction locale permettent d’exprimer les protéines dans des endroits précis selon les besoins de la cellule.