Semaine 8 Flashcards

1
Q

Que sont des anticorps monoclonaux?

A
  • Anticorps qui proviennent d’un clone de cellule
  • Lignée de cellules cultivables en labo et qui produit à l’infini des anticorps de spécificité donnée
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Q

Les deux types de technologies utilisées pour produire des anticorps?

A
  • Anticorps polyclonaux (antisérums)
  • Anticorps monoclonaux
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3
Q

Que sont des anticorps polyclonaux?

A

Anticorps qui comprennent un mélange d’anticorps qui réagissent tous contre le même antigène, mais reconnaissent différentes épitotes.

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4
Q

Que sont des anticorps monoclonaux?

A

Anticorps monoclonaux d’un même mélange sont tous identiques et ne reconnaissent qu’un seul épitote.

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5
Q

Comment produit-on des anticorps polyclonaux?

A
  • Production simple
  1. Immunisation d’un animal avec l’antigène d’intérêt
  2. Prélèvement du sang de l’animal : on garde le sérum qui contient tous ces anticorps
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6
Q

Comment produit-on des anticorps monoclonaux?

A
  • Production plus complexe
  1. Immunisation d’un animal avec l’antigène d’intérêt
  2. Récolte des lymph B de la rate
  3. Fusion de ces lymph B avec une lignée de ¢ myélomateuse immortelle (permet d’immortaliser les lymph B)
  4. Mise en culture des ¢ fusionnées une à une dans des puits : génération de clones qui produisent des anticorps d’une seule spécificité par puit.
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7
Q

Lors de la production d’anticorps monoclonaux, les lymph B récoltés de l’animal sont fusionnés avec des ¢ de myélomateuses immortelles. Ça permet quoi? Comment se nomme les nouvelles ¢ fusionnées?

A
  • Permet d’immortalisation les lymph B.
  • Hybridomes
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8
Q

Avantage principal des anticorps monoclonaux?

A

Continuité de la ressource

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9
Q

Avantage principal des anticorps polyclonaux?

A

Rapidité et coût plus faible

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10
Q

Comment peut-on produire des grandes quantités d’antisérums?

A

Il faut utiliser des animaux avec un grand volume sanguin (chèvres, lapins, chevaux…)

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11
Q

Quel animal est utilisé pour la production d’anticorps monoclonaux?

A

La souris

  • La taille de l’animal n’a pas d’impact
  • L’utilisation de la souris est moins coûteuse et les techniques de fusion y sont adaptées
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12
Q

Qu’est-ce que l’immunofluorescence?

A

Technique utilisant des anticorps marqués pour détecter spécifiquement des protéines dans des ¢.

  • Possible d’utiliser anticorps spécifique (primaire) qui est directement conjugé
  • Possible d’utiliser un 2ième anticorps conjugué qui reconnaît le premier (secondaire)
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13
Q

L’immunofluorescence s’apparente à quelle technique?

A

L’immunohistochimie

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14
Q

Qu’est-ce que l’immunohistochimie?

A

Technique qui utilise une réaction colorimétrique au lieu de la fluorescence comme méthode de détection

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15
Q

Qu’est-ce que l’ELISA?

A
  • Technique qui permet de détecter une protéine en solution dans un mélange (anticorps, cytokine…).
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16
Q

Sur quoi est basé l’ELISA?

A

Basé sur la réaction entre des anticorps purifiés (mono ou polyclonaux) et des antigènes.

  • Un des anticorps dans le test est conjugué à une enzyme qui induit la formation de couleur lorsqu’il réagit avec un substrat.
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17
Q

En clinique, comment est utilisé l’ELISA?

A

Utilisé de routine
- Quantitatif (courbe d’étalonnage)
- Anticorps anti-HIV? Anticorps anti-séropositif?

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18
Q

Qu’est-ce que la cytométrie en flux? Qu’est-ce qu’on peut mesurer par exemple?

A

Permet de mesurer les caractéristiques physiques et chimiques de ¢/particules lorsqu’elles sont transportées en suspension une à une devant un laser.

  • Possible de mesurer la fluorescence à diverses longueurs d’ondes
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19
Q

Dans la cytométrie en flux, comment la lumière du laser est diffusée?

A

Diffusée en impactant les cellules

  • Lumière est recueillie dans 3 directions différentes : corrélée avec la taille et l’autre corrélée avec la complexité
20
Q

Vrai ou faux : la cytométrie en flux mesure tous les phénotypes et fonctions qui peuvent être détectés par un produit fluorescent associé aux cellules.

A

Vrai, mais les signaux de fluorescence peuvent être émis par la cellule elle-même (pas juste par anticorps couplé à un fluorochrome).

21
Q

Qu’est-ce que le tri cellulaire ajouté à un appareil de cytométrie?

A

Séparation physique de cellules/particules d’intérêts à partir d’une population hétérogène.

22
Q

Lors de la cytométrie en flux, comment les cellules sont-elles triées?

A
  1. ¢ sont aspirées de l’échantillon et injectées une par une (par une buse) dans un courant continu de solution
  2. Application d’une onde de vibration au jet = jet rompu = gouttes
  3. La lumière déviée et la fluorescence émisent (après interception cellule-faisceau) génèrent un signal qui est traité par le programme de tri afin de décider si la ¢ doit être isolée ou non
23
Q

Qu’arrive-t-il aux cellules d’intérêt qui doivent être triées lors de la cytométrie en flux?

A
  • elles sont détectées : le cytomètre donne une charge (+ ou -) à la goutte.
  • Gouttes passent entre les plaques de déflexion fortement chargées → gouttes déviées du côté de la plaque de polarité opposée et collectées
24
Q

La cytométrie est une technique qualitative ou quantitative?

A

Quantitative, chaque cellule est analysée de façon individuelle.

  • Données peuvent être représentées sous forme de graphiques à points (1 ¢ = 1 point)
25
Que permet de mesurer la cytométrie?
- Prolifération cellulaire - viabilité - phagocytose - activité mitochondriale
26
Comment peut-on effectuer un tri des cellules du sang, considérant que celles-ci sont très hétérogènes?
Possible d'utiliser un gradient de densité pour obtenir des populations enrichies. - Utilisation de Ficoll (polysaccharide naturel de haut poids moléculaire) et de la centrifugation.
27
Explique comment fonctionne la méthode de tri cellulaire utilisant Ficoll et la centrifugation.
Les lymphocytes et les monocytes ont une densité inférieure à celle du Ficoll → on peut obtenir une fraction enrichie en lymphocytes et en monocytes en centrifugeant du sang sur un coussin de Ficoll - Des propriétés différentes d'adhésion au plastique permettent ensuite de séparer les lymphocytes des monocytes.
28
Vrai ou faux : on peut utiliser des anticorps spécifiques à des molécules de surface pour retirer une population particulière d'un mélange de cellule.
Vrai, possible en fixant des anticorps au fond d'une plaque. - Les cellules ayant l'antigène reconnu par l'anticorps à leur surface seront aussi fixées lorsque le mélange sera déposé dans le puit.
29
Comment peut-on utiliser des billes magnétiques pour trier des cellules?
- Des anticorps spécifiques pour des antigènes de surface sont couplés à des billes magnétiques. - Incubation des ¢ avec les anticorps : aimant pour séparer les cellules
30
Avantages utilisation de billes magnétiques comme méthode de tri cellulaire?
Rapide et ne nécessite pas d'équipement sophistiqué - Permet de séparer lymph T du sang par exemple
31
Que sont les groupes sanguins?
Antigènes formés de sucres (glycolipidiques) à la surfaces de érythrocytes (globules rouges) - 3 groupes : A, B et O
32
Qu'est-ce que l'agglutination des globules rouges?
Quand ils se rassemblent en paquets au lieu de rester en suspension dans le sérum
33
Quand se produit l'agglutination des globules rouges? Qu'est-ce qui la cause?
Quand le sang du receveur contient des anticorps pouvant réagir avec les antigènes présents sur les érythrocytes du donneur. - C'est la structure multivalente des anticorps qui permet cela
34
Avantages et inconvénients des anticorps polyclonaux?
Avantages : - Temps et coûts de production bas - Production en grande quantité d'anticorps - Plusieurs épitotes reconnues Inconvénients : - Anticorps de spécificité mal définie - Variabilité entre les lots (à recommencer quand le lot est terminé)
35
Avantages et inconvénients des anticorps monoclonaux?
Avantages : - Production en grande quantité d'anticorps spécifiques - 1 épitote reconnues Inconvénients : - Temps et coûts de préparation élevés
36
Comment fonctionne l'ELISA?
- Permet de détecter quantitativement quelque chose, diverses utilisations - Utilisation d'anticorps conjugués avec un substrat
37
Comment fonctionne le westernblot?
- Immunobuvardage : Détection de protéines 1. Séparation des protéines d'un échantillon en fonction de la charge 2. Impaction des protéines sur une membrane 3. Blocage (avec une protéine non-spécifique pas reconnue par les anticorps) : empêche anticorps de venir se coller de façon non-spécifique à la membrane 4. Incubation avec anticorps spécifique primaire 5. Incubation avec anticorps secondaire qui se lie au premier anticorps
38
Pourquoi le westernblot est limite comme méthode quantitative?
Car il y a saturation du signal quand peu d'échantillons. Il faut s'assurer d'avoir les contrôles adéquats
39
Comment fonctionne l'immunoprécipitation?
Précipitation de plusieurs protéines avec une action immunologique - Ajout de billes qui reconnaissent la portion Fc des anticorps, ce qui permet la séparation des cellules. - Purification
40
Applications de la cytométrie en flux?
- Identification de ¢ avec marqueurs de surface - Marquage intracellulaire - Quantification d'ADN - Tri/dénombrement ¢ avec marqueur fluorescent - Tri/identification de m-o
41
Pourquoi il n'est pas possible de trier des lymphocytes avec des anticorps avec la chromatographie d'affinité?
Car les billes sont fixées aux anticorps → permet pas de séparer les anticorps, juste les antigènes car les anticorps restent dans la colonne avec les billes lors du lavage
42
Qu'est-ce que la séparation de cellules (panning)?
Fixer dans un puit de plastique les anticorps voulus et éliminer les autres avec un lavage
43
Séparation des cellules par gradient de densité?
Centrifugation!!! - Permet de séparer des cellules avec des densités variables. - Les lymphocytes sont conservés dans la partie plasmatique.
44
Un individu de groupe A possède l'antigène ___ et des anticorps anti-___?
Antigène A et anticorps agglutinant anti-B
45
Groupes sanguins : Rh?
- Groupe d'antigènes présent sur les érythrocytes - Rh+ = antigènes Rh
46
Groupes sanguins : donneur universel? Receveur universel?
O- et AB+
47
Pourquoi un anticorps bon pour le westernblot n'est pas nécessairement efficace en immunofluorescence?
Pcq WB se fait après SDS-PAGE (conditions dénaturantes) : protéines sont dénaturées et réduites. L'immunofluorescence se fait sur des cellules : protéines en forme native