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EMBRYO > Semaine 1 > Flashcards

Semaine 1 Flashcards

1
Q

premiere semaine dev =

A

développement pré-implantatoire

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Q

1ere sem dev correspond a

A
  • La fécondation et l’activation ovocytaire
  • La formation du zygote et la restauration de la diploïdie
  • La transformation morphologique et la migration de l’œuf
  • Le contrôle génétique et épigénétique
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3
Q

dure cb de temps

A

Suite à la fécondation de l’ovocyte par un spermatozoïde, le développement pré-implantatoire
débute -> Il dure 6 jours

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4
Q

migration

en gros

A

: l’ovocyte fécondé va migrer de l’ampoule tubaire vers la cavité utérine

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5
Q

transfo morpho

en gros

A

parallèlement à cette migration tubaire, l’ovocyte fécondé va
se transformer en blastocytes par le biais de divisions cellulaires successives

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6
Q

eclosion implantation

en gros

A

au terme du 6e jour qui suit la fécondation, le blastocyte éclot afin de
s’implanter dans l’endomètre ( muqueuse tapissant la cavité utérine)

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7
Q

activation ovocytaire
est une quoi
depend de quoi
amene quoi

A

L’activation ovocytaire est une cascade d’évènements sous la dépendance de la PLC ζ spermatique
▪ L’élévation de la concentration en calcium intra-cytoplasmique :
- Exocytose des granules corticaux et bloc à la polyspermie
- Reprise et achèvement de la Méiose II ovocytaire.
Expulsion du 2nd GP
- Formation des pronoyaux : 1 mâle et 1 femelle

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8
Q

stade zigote

quand

A

16-22h post-

fécondation

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9
Q

stade zigote

PN femelle

A

▪ Après l’expulsion du 2nd GP, la télophase ovocytaire se
décondense et s’entoure d’une enveloppe nucléaire
▪ Le pronoyaux femelle est formé
▪ Il est haploide : 23 chromosomes à 1 chormatide (1n,1c)
▪ Il est localisé en regard du 2nd GP

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10
Q

stade zygote PN male

A

▪ Dans le cytoplasme ovocytaire, le noyau spermatique perd son
enveloppe. Les chromosomes se décondensent, une enveloppe
nucléaire se renouvelle
▪ Le PN mâle est formé
▪ Il est haploide : 23 chromosomes à 1 chromatide (1n. 1c)
▪ Il est localisé en regard du point de fusion
▪ Les mitochondries et l’axonème sont dégradés

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11
Q

stade zygote spermaster

A

▪ Le spermaster (1/2 fuseau mitotique) se met en place à partir du centriol spermatique
proximal
▪ Il permet le rapprochement des pronucléi au centre de l’ovocyte

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12
Q

LA RESTAURATION

DE LA DIPLOIDIE

A

▪ Le centrosome de division à partir du centriol proximal paternel
▪ Phase S du cycle cellulaire :
- Synthèse de l’ADN : 1n,2c dans chacun des pronoyaux
- Duplication du centrosome
▪ Disparition des membranes nucléaires, condensation de l’ADN
▪ Chromosomes pater et mater sur la plaque métaphasique :
amphixie et restauration de la diploïdie

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13
Q

Segmentation

A 
▪ Série de mitoses successives :  
o Symétriques  
o Réductrices 
o Volume constant ( environ 120-150 micron)  
o Asynchrones : stades 3,5,7 cellules  
o Plan de clivages  
▪ Cellules filles = blastomères  
o Non polarisées  
o Totipotentes  
▪ Rôle protecteur et cohésif de la ZP
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14
Q

1ere division
de
segmentation

A

▪ 30-36h après la fécondation
▪ Selon un plan méridional = perpendiculairement à l’équateur et
dans l’alignement avec les 2 globules polaires
▪ En résultent 2 blastomères de taille égale
▪ Puis, les clivages s’enchainent toutes les 20h environ

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15
Q

2e division de

segmantation

A

▪ Légère asynchronie entre les 2 blastomères (parfois embryon a 3
cellules)
▪ Le premier qui se divise le fait selon un plan perpendiculaire à
l’équateur (IIa)
▪ Le second le fera selon un plan passant par l’équateur (IIb)
à Orientation pyramidale caractéristique des blastomères du
stade 4 cellules = disposition tétraédrique

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16
Q

Division
ultérieures
juqu’au stade 16
cellules

A

▪ Au stade 16 cellules : Morula ( aspect de « Mûre »)
▪ Blastomères sphériques non encore polarisés
▪ Adhérences ponctuelles de type desmosomes entre 2
blastomères
▪ Mb plasmique présentant des microvillosités
▪ Cellules totipotentes

17
Q

Compaction

A

▪ A partir du stade de 16-32 cellules
▪ Modification morphologique de la morula :
- Aplatissement des blastomères non-individualisables -> compaction

18
Q

compaction mécanisme mis en jeu

A
  1. Création de jonctions intercellulaires différentielles : face interne concave/ face
    externe convexe
  2. Polarisation des blastomères périphériques
  3. Orientation du fuseau mitotique des cellules externe
19
Q

JONCTION
ADHÉRENTES
structure et role

A
  • Structure moléculaire :
    ▪ Structure : cadhérine ( E-cad) , beta et/ou gamma caténine,
    alpha caténine
    ▪ Localisation : latéro-basale, cellule externe
  • Rôle :
    ▪ L’E-cadhérine est un initiateur de la compaction, il permet l’adhésion cellulaire en présence de calcium
20
Q

JONCTION SERREES

structure et role

A

Structure moléculaire :
▪ Structure : occludine, protéines Zona Occludens ( ZO1 et ZO2), cinguline
▪ Localisation : région apico-latérale, cellules externes

  • Rôle :
    ▪ Établissement d’une polarité cellulaire
    ▪ Barrière quasi étanche/ milieu extérieur
    ▪ Signe l’initiation d’une différenciation cellulaire au sein de l’embryon
21
Q

JONCTION COMMUNICANTE

structure et role

A
  • Structure moléculaire :
    ▪ Structure : connexines dont connexines 43 (
    hexamères : x6)
    ▪ Localisation : région latérale, cellules externes
  • Rôle :
    ▪ Passage des molécules < 1000 Da
22
Q

POLARITÉ CELLULAIRE
concerne qui
different type

A
  • Concerne uniquement les cellules les plus externes
  • Cellules centrales sont apolaires
    -> asymétrie embryonnaire
  • Différents type :
    ▪ Polarité cytoplasmique : organisation du cytosquelette actine et microtubules, redistribution des organites
    ▪ Polarité membranaire : système de jonction serrées, microvillosités limitées aux surfaces cellulaires libre à apex
23
Q 
ORIENTATION DU FUSEAU MITOTIQUE DES CELLULES EXTERNES 
conditionne quoi 
demontré chez qui et quand 
divisions 2 types
conditionne quoi d'autre
A
  • Conditionne le plan de clivage
  • Démontré chez la souris au stade 8 cellules
  • Divisions symétriques : 2 cellules externes
  • Division asymétrique : 1 cellules externes et 1 cellules interne
  • Conditionne la polarité et le devenir des cellules :
    ▪ Cellules polarisées et externes
    ▪ Cellules apolaires et internes
24
Q

SÉGRÉGATION DE LIGNAGE
LES COMPOSANTES SUBJECTIVES
cellule externe polaire

A 
Aplaties à « épithélium de 
surface »  
- Jonction serrées apico-latérales  
- Jonction adhérentes et 
communicantes latérales  
-> Futur trophoblaste (TB)  
-> Placenta  
-> Expression préférentielle du génome 
paternel
25
Q

SÉGRÉGATION DE LIGNAGE
LES COMPOSANTES SUBJECTIVES
cellule interne apolaire

A 
- Arrondies, en amas, plus 
volumineuses  
- Jonctions communicantes et 
desmosomes  
-> Future masse cellulaire interne (MCI) 
-> Embryon (CSE)  
-> Pluripotente  
-> Expression préférentielle du génome 
materne
26
Q

SÉGRÉGATION DE LIGNAGE

COMPACTION

A
  • Perte de totipotence

- Ségrégation de lignage (MCI et TB)

27
Q

CONTROLE GÉNIQUE DE LA SÉGRÉGATION DE LIGNAGE

hormone qui regule TB

A
  • Expression des gènes Cdx2 et Eomes

- Répression des gènes Oct4 et Nanog

28
Q

CONTROLE GÉNIQUE DE LA SÉGRÉGATION DE LIGNAGE

hormone qui regule MCI

A

Expression des facteurs de pluripotence Oct3/4, Nanog et Sox2

29
Q

CAVITATION

mécanisme

A

• Expression d’une pompe NA+/K+ ATPase par les blastomères ext. : échange actifs et gradient osmotique entre ext/int
• Passage de Na+ et d’eau par osmose de l’ext ( oviducte) vers l’int (embryon) au travers de la ZP
• Passage d’eau contrôlé par les aquaporines ( diffusion)
• Imperméabilité intercellulaire due aux jonctions serrées
-> formation de lacunes intercellulaires fusionnant pour constituer une grande cavité liquidienne : le blastocèle

30
Q

Cavitation evolution blastocyte

A

• Mise en place du blastocèle à individualisation des deux lignées cellulaires : masse cellulaire interne ( MCI) et Trophoblaste
• Augmentation de la taille du blastocyte
o Mitose : TB festonné, MCI compactée
o Augmentation du volume du blastocèle
o Affinement

31
Q

Eclosion

sous l’effet de

A
  • De l’augmentation du volume du blastocèle
  • Des contractions d’expansion du blastocyste
  • D’une digestion enzymatique de la ZP (sécrétion par les cellules du trophectoderme de protéase de type trypsine)
32
Q

Eclosion keskese

A

Rupture de la ZP au niveau du pôle anti-embryonnaire (au niveau de la MCI)
Libération du blastocyste pouvant interagir directement avec la muqueuse
utérine (endomètre) en vue de son implantation

33
Q

MIGRATION
TUBAIRE DE
L’ŒUF

A

• Parallèlement à son développement, l’embryon migre de
l’ampoule tubaire à la cavité utérine
• Migration progressive de J1 à J5 ( cf : schéma)
o Péristaltisme tubaire facilité par :
▪ La contraction des cellules musculaires lisses de la musculeuse
▪ Les mouvements ciliaires des cellules
épithéliales
▪ Les sécrétions des glandes muqueuses de l’endomètre

34
Q

Activation du génome embryonnaire

A 
- Les 1ers jours, absence de transcription du genome embryonnaire dit "silencieux
traduction du stock d’ARNm ovocytaires
- Début de transcription du génome
embryonnaire :
o stade 8 cellules (J3) 
o allèles paternels et maternels de
chaque gène sont actifs et s’expriment
35
Q

Empreinte parentale

A

• Régulation de l’expression de l’allèle d’un gène en fonction de son origine paternel ou
maternel : gène soumis à l’empreinte
• Cette empreinte conduit à une expression mono-allélique du gène, dépendante de
l’origine parentale
• L’allèle non exprimé est inactivé. Mécanisme d’inactivation le plus courant :
méthylation de l’ADN
• En fonction des gènes : inactivation de l’allèle paternel ou maternel

36
Q

EMpreinte parentale qui exprime quoi

A

▪ Expression préférentielle du génome paternel dans les cellules du TB
▪ Expression préférentielle du génome materne dans les cellules de la MCI

• Le développement d’un embryon de mammifère requiert la présence des deux génomes maternel et paternel (différent de parthénogenèse : genese sans fecondation)

37
Q

ANOMALIE 1ere SEMAINE DEV

A

• Arrêt du développement = fausse couche très précoce ( avant retard de règle)

  • Anomalie génétique : aneuploïdies chromosomiques +++
  • 50% des produits de conception sont éliminés au cours de la première semaine

• Jumeaux

  • Monozygotiques (vrais jumeaux) : division précoce de l’œuf
  • Dizygotes (faux jumeaux) : fécondation de 2 ovocytes

EMBRYO (16 decks)

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