protein purification Flashcards

1
Q

methodes pour détruire les cellules?

A
  • congélation/décongélation
  • écrasement mécanique
  • pression/dépression brutale
  • détergents
  • ultrasons
    *lyzozyme qui détruit les mb
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2
Q

calculation of Absorbance of AA (Beer-Lambert law)

A

A = epsi * L * C

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3
Q

methods to emasure protein concentration

A
  • Bradford assay with Coomassie blue
  • BCA assay (bicinchoninic acid)
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4
Q

Bradford assay

A

Mechanism: In an acidic environment, three forces contribute to binding between Coomassie and the protein:

* ionic interactions between the sulfonic groups of Coomassie and the basic residues (lysine, histidine, and arginine) of the protein
* van der Waals forces between the aromatic residues (tyrosine, phenylalanine, and tryptophan) of the protein and Coomassie
* hydrophobic forces

Binding to protein causes a spectral shift in the absorbance of Coomassie from a maximum at 465nm (red/brown in color) to a maximum at 595 nm(blue/purple in color

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5
Q

BCA assay

A

Cu2+ + protein -> cu1+ + oxidized protein
cu1+ + BCA -> BCA-cuivre complex, absorbance at 562 nm

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6
Q

purification methods for protein

A
  • ammonium sulfate precipitation
  • ion exchange chromatography
  • size exclusion chromatography (gel filtration column)
  • affinity gel chromatography
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7
Q

1 unité d’activité enzymatique U =

A

quantité d’enzyme qui produit 1 µM de produit en 1 minute

dans des conditions données ex: 70°C, pH = 7

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8
Q

Electrophorèse

A

séparation basé sur la charge

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9
Q

force dans un champ electrique =

A

Z (charge) * E (champ électrique)

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10
Q

vitesse d’une protéine dans un champ

A

Z*E / f

f = friction

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11
Q

défauts de native gel electrophorèse

A
  • Friction dépend de la forme de la protéine
  • Les protéines se déplacent dans 2 directions
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12
Q

rôle et formule de SDS

A

*sodium dodecyl sulfate CH3 (CH2)11 O SO3
* déplie les protéines en se fixant à la protéine

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13
Q

quels agents reducteurs et quel role?

A
  • Beta ME et DTT (dithiotreitol)
  • Réduction des liaisons covalentes S-S avant SDS-Page
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14
Q

formule acrylamide

A

CH2=CH-CONH2

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15
Q

quelles réactions permettent de former du polyacrylamide

A
  1. radical polymérisation avec persulfate
  2. crosslink des chaînes avec Bis-acrylamide
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16
Q

quels colorants dans un gel de polyacrylamide pour visualiser les protéines?

A
  • Bleu de coomassie -> 100ng
  • Réaction argentique -> 20ng
  • coloration Zn
17
Q

comment évolue la mobilité des protéines en gel selon la masse des protéines?

A

Rf = -alpha*log(Mw)

Rf = mobilité, Mw= molecular weight

18
Q

Méthodes de séparation des protéines par électrophorèse

A
  1. Electrophorèse sur gel non dénaturant
  2. polyacrylamide gel electrophorosis SDS-PAGE
  3. isoélectric focusing electrophoresis (IEF)
  4. 2 dimensional gel electrophoresis
19
Q

3 choses importantes sur IEF

A
  • Le gel comporte un gradient de pH, et des électrodes à chaque extrêmité
  • La migration dépend du pH isolectrique de la protéine (pI)
  • C’est une méthode à haute résolution
20
Q

Principe de 2D GE

A
  1. IEF normale
  2. utiliser le gel IEF en entrée de SDS-PAGE
21
Q

quel procédé permet de visualiser le front de migration de SDS-PAGE?

A

Bromophénol (bleu) est ajouté au fond du puit, créant un front de migration bleu

22
Q

quelle vitesse de centrifugation concentre les noyaux dans le culot?

23
Q

quelle vitesse de centrifugation concentre les mitochondries dans le culot?

24
Q

quelle vitesse de centrifugation concentre les microsomes (ribsomes et mb) dans le culot?

A

100 000 g pendant 2h